Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Cancer Research

Sentinel Lymfkörtel mappning och biopsi för endometriecancer i tidigt skede med laparoskopi

Published: August 19, 2021 doi: 10.3791/63044

Summary

Detta protokoll beskriver identifiering och samband av sentinel lymfkörtlar för att göra operationen så enkel och minimalt invasiv som möjligt.

Abstract

Sentinel lymfkörtel (SLN) mappning och biopsi är en lovande teknik för att visualisera och utvärdera lymfkörteln status i cancer. Detta tillvägagångssätt har rekommenderats för patienter med låg risk för endometriecancer (EG) genom auktoritativa internationella riktlinjer, men det har inte utförts brett i Kina och över hela världen. Detta arbete syftar till att beskriva detaljerade SLN-kartläggnings- och biopsiförfaranden för att främja den kliniska tillämpningen. SLN mappning och postoperativa patologiskt ultrastaging genomfördes i en patient med låg risk EC med hjälp av indoocyanin grön (ICG) färgämne för att spåra SLNs under laparoskopi och resecting dem helt för ultrastaging. Sammanfattningsvis beskriver detta protokoll detaljer om ICG injektion och SLN mappning och biopsi i EC patienter baserat på de erfarenheter som erhållits under klinisk praxis.

Introduction

Endometriecancer (EG) är en av de vanligaste sjukdomarna inom gynekologisk onkologi, och dess incidens ökar1,2. Kirurgi är första linjens behandling för tidigt stadium AV EC3,4. Utvärderingen av lymfkörteln metastasering är en viktig del av kirurgiska iscensättning i EG. Gynecologic Oncology Group (GOG) studie 33 visade att lymfkörteln metastaser är associerade med dålig prognos5.

Som en ny och viktig teknik för utvärdering av lymfkörtelmetastaser har sentinel lymfkörtel (SLN) kartläggning och biopsi dykt upp under de senaste åren och har rekommenderats att användas för patienter med uppenbar livmoder-begränsad EG enligt National Comprehensive Cancer Network (NCCN) riktlinjer för livmodercancer6,7,8,9,10. SLN-kartläggning har också tillämpats i stor utsträckning i tumörer som bröstcancer11,lungcancer12,sköldkörtelcancer13och melanom14. Patologisk ultrastaging har uppnått god prestanda vid kolorektal och gynekologisk cancer15,16,17 och rekommenderas av de auktoritativa europeiska riktlinjerna18. Även om principerna för SLN-kartläggning för EG-iscensättning har tillhandahållits i internationella riktlinjer10,19, finns det inga detaljerade manipuleringar av kirurgi i andra nuvarande verk.

Detta arbete presenterar protokollet för detaljerad SLN mappning och biopsi med ICG i en 28-årig kvinna som hade diagnostiserats kliniskt med tidigt skede EC, vilket förbättrar och främjar diagnos av patienter.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Alla kirurgiska ingrepp relaterade till patienten som beskrivs här godkändes av etikkommittéerna för obstetrik & gynekologisjukhus vid Fudan University i Shanghai, Kina. Informerat samtycke inhämtades från patienten.

1. Indikationer för SLN-kartläggning med ICG hos EC-patienter

  1. Se till att patienter diagnostiseras kliniskt med primär EC begränsad till livmodern med lågriskfaktorer (grad 1 eller 2 endometrioid carcinom, prekirurgisk endometrie lesion ≤2 cm och myometrie invasion <50%).
  2. Se till att patienterna inte är allergiska mot utvecklaren (ICG).
  3. Se till att patienter inte har upplevt retroperitoneal lymfkörtel dissekering av någon anledning före sjukdomen.
  4. Se till att patienterna förstår SLN:s kirurgiska ingrepp och har undertecknat formulären för kirurgiskt samtycke.
  5. Se till att patienterna inte kan utföra systematisk lymfadenectomy men SLN mappning för kirurgiska iscensättning av någon anledning.
  6. Se till att patienterna är inskrivna i den kliniska prövningen i SLN-kartgruppen om de har medelhög risk EC.

2. Patientförberedelse

  1. Preoperativ tarmberedning
    1. Ge laxermedel för tarmpreparat och lavemang till patienter som har genomgått flera bäcken- och bukoperationer.
      OBS: Intestinala preparat krävs inte för patienter utan tarmkirurgi historia.
  2. Preoperativ kostberedning
    1. Undvik fast föda i 8 timmar före operationen, förhindra en halvflytande diet i 6 timmar före proceduren och sluta dricka i 2 timmar före proceduren.
  3. Anestesi
    1. Använd intravenösa medel (t.ex. propofol) för att producera medvetslöshet och tillsätt vissa neuromuskulära blockerare genom inandning eller intravenösa vägar för att uppnå det nödvändiga anestesidjupet. Använd en kombination av administrering för bedövningsmedel för att säkerställa att patienten är medvetslös och helt avslappnad med stabila vitala tecken under hela operationen.
      OBS: Användningen av bedövningsmedel kommer att följa reglerna för anestesiologiavdelningen i varje center.
  4. Position
    1. När patienten är sövd, låt patienten vara i litotomi position med Trendelenburg position.
  5. Förbered huden på operationsstället. Utför hudberedning med ett antiseptiskt preparat (t.ex. povidone-jod) på ett organiserat sätt från den avsedda platsen för snittet som strålar ut till kanterna av det avsedda hudexponeringsområdet, med den övre gränsen för platt xiphoidprocess, sidokanter av mid-axillärlinjer och nedre gränsen för övre låret(figur 1).

3. Fluorescerande färgberedning

  1. Indocyyaningrön (ICG) förberedelse
    1. Lös upp 25 mg ICG i 20 ml sterilt vatten för en slutlig koncentration på 1,25 mg/ml och skaka försiktigt.

4. ICG injektion

  1. Använd en 2 ml-spruta (med nålstorleken 0,6 mm x 32 mm TW LB) för att injicera 0,5 ml beredd ICG klockan 3 och 9 på ektocervix vid den ytliga (2-3 mm) respektive djupa (1-2 cm) livmoderhalsen (figur 2).
    OBS: I vissa fall kan ectocervix-positionerna klockan 6 och 12 också väljas. ICG bör undvikas när injiceras i Nesslers cysta.

5. Intraoperativ SLN-identifiering

  1. Förberedelse före utveckling
    1. Ta tag i huden runt navelsträngen med två handdukstork för att höja bukväggen. Gör ett snitt på ca 10 mm brett i navelsträngens hud och genom fascia och bukhinnan.
    2. Sätt in en 10 mm trocar genom navelsträngen och producera pneumoperitoneum med intraperitonealt tryck på ca 13-14 mmHg. Sätt in ett laparoskop (med ljuskälla och kameror) via trobilen.
    3. Gör tre andra små snitt på ~ 5 mm breda i underlivet och sätt in 5 mm trocars genom bukväggen i håligheten. Sätt in instrument för manipulering via de övriga tre 5 mm trokarna (figur 1).
    4. Identifiera äggledarna under laparoskopi. Greppa och lyft rören nära fimbriae och knyt en ligatur runt röret med en 2-0/T silkessyst.
      OBS: Detta steg används för att förhindra endometrietumörceller från att komma in i bukhålan längs äggledarna från livmoderhålan.
    5. Ta peritonealtvätten med 100 ml normal saltlösning innan någon betydande hantering eller manipulering av livmodern. Samla tvättvätskan för cytologi.
    6. Öppna fluorescensläget för det endoskopiska fluorescenssystemet (se steg 5.2). Lyft ensidiga bäckenhålorna infundibulum ligament och livmodern för att avslöja laterala bukhinnan och leta efter fluorescens lymfatiska fartyg.
      OBS: Om det inte finns några fluorescens lymfkärl identifierade, är det tillåtet att injicera ICG upprepade gånger.
  2. SLN-mappning
    1. Endoskopisk fluorescensavbildningssystem förberedelse (PINPOINT).
    2. Justera fluorescensläget till nära infraröd laser (excitationsljus, 805 nm) för bästa synfält.
      OBS: Det endoskopiska fluorescenssystemet har flera lägen, såsom HD (High definition) vitt ljus, SPY fluorescens, PINPOINT fluorescens och SPY CSF-läge, och kirurgen kan byta till ett annat läge om det behövs.
  3. Identifiera SLN under en fluorescens laparoskopi.
    1. Håll en ultraljud skalpell och tandlösa tångar med varje hand (utförs av kirurgen).
      OBS: Assistenten tar tag i tandlösa tångar för att samarbeta med kirurgen.
    2. Lyft och öppna bukhinnan, separera sub-peritoneal fett och bindväv för att avslöja de nödvändiga strukturerna, inklusive urinröret, inre iliaca kärl och obturator nerver enligt indikationen av grön fluorescens lymfatiska linjer, samt för att skydda dem från skada.
      OBS: En ultraljud skalpell med aktivering används för att skära vävnaderna, medan en inaktiverad skalpell kan användas för trubbig dissekering.
    3. Observera SLN som täcks av bukhinnan ca 5-10 min efter ICG injektion.
      OBS: Vanligtvis presenterar SLNs tillsammans med fluorescens lymfkärlen från båda sidor av livmoderhalsen till åtminstone höjden av det gemensamma iliaca blodkärlet. Ibland dyker SLNs upp bredvid bukaortan. PINPOINT-utrustning har flera lägen, inklusive vitt ljus, fluorescens och svartvita lägen. Att växla mellan flera lägen hjälper till att bestämma platsen för SLN.

6. Intraoperativ SLN-biopsi

  1. Leta reda på SLN, den första kartlagda lymfkörteln längs dräneringen från parametrium i varje hemi-bäcken, och använd flera lägen för att bekräfta det. Exponera SLN:erna för fullständig omfördelning(bild 3).
  2. Förstå och höja SLN med tandlösa tångar och utför en fullständig samband av lymfkörteln längs lymfkörtelns periferi i vitt ljus.
    OBS: Undvik skador på lymfkörteln, vilket kan orsaka kontaminering med tumörceller.
  3. Placera de borttagna SLN i obturator fossa eller lägg dem i en liten, enkel påse. Efter livmodern är helt borttagen och tas ut genom slidan, bilaterala SLNs tas ut helt genom slidan snarare än genom 5 mm trocar öppning för att undvika fragmentering.
  4. Skicka de borttagna lymfkörtlarna till patologiavdelningen för patologisk ultrastaging.
  5. Under operationen, resect de förstorade eller misstänkta lymfkörtlarna samtidigt och skicka dem för patologisk undersökning.
  6. Registrera platserna för SLN på standardiserade intraoperativa datainsamlingsformulär.
  7. Om SLN mappning misslyckas på en eller båda sidor, utför sidospecifik lymfadenectomy enligt NCCN riktlinjer.
    OBS: Om det inte finns någon fluorescerande nod i hemipelvis, fortsätt att söka den kartlagda noden längs lymfkärlen tills den para-aorta regionen på grund av möjligheten att kartlägga på oväntade platser. En misslyckad SLN-kartläggning på vardera sidan innebär att varje fluorescerande grön nod inte är synlig med eller utan fluorescerande gröna lymfkärl under fluorescenssystemet laparoskop på vardera sidan bäckenet och para-aortaregionen.
  8. Utför en total hysterektomi plus bilaterala salpingectomy.
    OBS: Eftersom detta var en 28-årig patient med tidiga endometrioid cancer som hade en stark önskan om fertilitet bevarande och normala utseende äggstockscancer och hade ingen uppenbar familjehistoria av bröst/äggstockscancer eller Lynch syndrom, äggstockscancer bevarande kunde övervägas.
  9. Indwell ett dräneringsrör för potentiell restvätska i bäckenet.
  10. Ta bort laparoskopet och släpp ut gasen från buken. Stäng snitten i navelsträngen och underlivet med en enda stygn med 2-0/T silkess sutur.

7. Postoperativ SLN ultrastaging20

  1. Skär SLN längs den maximala diametern och mikrosektionerade 50 μm isär för att få tre hematoxylin-eosin (H&E) diabilder och en immunohistokemi (IHC) glidbild med anti-cytokeratinantikropp (AE1/AE3).
    OBS: Ultrastaging innebär tunn seriell sektion av brutto SLN. Cytokeratin IHC är inte nödvändigt. Inget standardprotokoll är för ultrastaging.
  2. Lymfkörtelmetastaser beskrevs som makrometastaser (>2 mm), mikrometastaser (0,2-2,0 mm) eller isolerade tumörceller (ITCs) enligt klassificeringen av American Joint Committee on Cancer (AJCC)21.
  3. Rapportera postoperativa patologi med detaljer om tumör storlek, histologic typ och kvalitet, myometriemässiga invasion, lymfaskulära utrymme engagemang, massundersökning stromal engagemang, antal och status per lymfkörtlar och cytologin av peritoneal tvättning.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Patienten i detta fall var en 28-årig kvinna med oregelbundna vaginala blödning i 2 år, och hon diagnostiserades med en onormala endometrium 4 månader sedan. Transvaginal ultraljud undersökning visade en heterogena endometrie tjocklek med en adnexal massa. Abdominopelvic magnetic resonance imaging (MRI) visade en 51 mm x 56 mm x 88 mm massa med en tydlig gräns inom livmoderns hålighet under en hög T2WI signal i ett lokalt sjukhus. Sedan utvärderades hon av hysteroskopi och endometrie lesion dissekerades. De patologiska resultaten visade grad 1 livmodercancer cancer. Denna patient kom till sjukhuset för ytterligare behandling med ett starkt fertilitetskrav. Efter en omfattande utvärdering (inklusive en annan MRI undersökning som visade en oregelbunden signal av endometrium på sjukhus, figur 4) och underteckna informerat samtycke, upplevde hon fertilitet bevarande behandling. Den andra hysteroskopi i sjukhuset visade dock ytliga myometrie invasion, en kontraindikation av fertilitet bevarande. Slutligen, efter patienten informerades om hennes tillstånd, bestämde hon sig för att genomgå en total hysterektomi + bilaterala salpingectomy + SLN mappning.

Livmoderhalsen injicerades med utspädd ICG vid 3 och 9 positioner ytligt respektive djupt (figur 2). Sedan var lymfkärlen och SLN:er fluorescerande märkta, vilket gjorde det möjligt att känna igen dem under olika färglägen (grönt för fluorescensläge och blått och rött för färgsegmenterat läge) i pinpoint endoskopiskt fluorescensavbildningssystem(figur 3). Därefter utförde patologi avdelningen H&E och IHC färgning av SLN (figur 5 och figur 6) och ultrastaging av SLN. Iscensättning resultaten visade en negativ metastasering produktion.

Figure 1
Figur 1: Antiseptisk beredning av SLN-kartläggning i EG med laparoskopi. Den svarta pilen anger mittaxlar. De numrerade röda cirklarna indikerar platserna för fyra trokar på bukväggen. Cirkel nr 2 är för 10 mm trocar. Resten av cirklarna är för 5 mm trocars. Avståndet mellan cirklarna 2 och 3 är runt fyra fingerbreadths. Klicka här för att se en större version av den här figuren.

Figure 2
Figur 2: Illustration av SLN-kartläggningen i EG. (A) Anatomiskt diagram över SLN i bäckenet. Den mörkgröna linjen representerar riktningen för lymfatisk dränering. Pilar indikerar SLN lymfkörtlar i detta fall (gul pil presenterar lymfkörteln som ligger mellan höger yttre och inre iliaca fartyg, brun pil visar SLN i vänster obturator foramen och svart pil visar förstorad lymfkörtel på vänster iliaca ven). Blå platt linje anger klockriktningar. b)Injektionsställen i livmoderhalsen. ICG = indocyyaningrön. Gröna prickar indikerar injektionsfläckarna. Den blå rutan visar ectocervix 3 och 9-positionerna. (C) Förstorat livmoderhalsdiagram: gröna prickar indikerar ytliga och djupa massinjektioner. Klicka här för att se en större version av den här figuren.

Figure 3
Figur 3: Intraoperativ avbildning av SLN i EC. (A) Fluorescensläge. Den gröna pilen anger SLN under fluorescensläge. (B) Färgsegmenterat fluorescensläge. Den gula pilen anger lymfkörteln under färgsegmenterat läge. c)Florescence-läge för indikatorlymfkörtlar i detta fall. (D) Färgsegmenterat fluorescensläge för sentinellymfkörtlar i detta fall. HD: Högupplöst; CSF: Färgsegmenterad fluorescens. Klicka här för att se en större version av den här figuren.

Figure 4
Figur 4: MRT av EC-patient. (A) Oregelbunden signal av livmoderslemhinnan som ligger i nedre livmoderhålan (pilar) på T1WI. b)Oregelbunden signal från endometrium (pilar) på T2WI. Klicka här för att se en större version av den här figuren.

Figure 5
Figur 5: H&E-färgning av EG- och IHC-färgning av SLN. A) H&E-färgning av myoinvasion i EC.( B) H&E färgning av SLN. C)IHC-färgning av AE1/AE3 (AE1/AE3 kan färga myofibroblaster och glatta muskelceller och indikera de kvarvarande tumörcellerna) i SLN. 2,5x och 5x avser förstoringen under mikroskopet. Klicka här för att se en större version av den här figuren.

Figure 6
Figur 6: IHC-färgning av EC-patienter. (A) IHC färgning av östrogenreceptor (ER) med fem förstoringar. (B)IHC färgning av progesteronreceptor (PR). c)IHC-färgning av P53. D)IHC-färgning av Ki67. e)IHC-färgning av MLH1. f)IHC-färgning av MSH2. g)IHC-färgning av PMS2. h)IHC-färgning av MSH6. Alla bilder är tagna med 5x förstoring. Klicka här för att se en större version av den här figuren.

Tabell 1: Jämförelse mellan spårämnen av blått färgämne, ICG och Tc99. Klicka här för att ladda ner den här tabellen.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

SLN-kartläggning och biopsi är en mer selektiv och skräddarsydd lymfkörtel dissekeringsmetod som har tillämpats i kliniken i nästan 20 år. Inom EG har SLN-kartläggning och biopsi i allt högre grad rekommenderats av flera riktlinjer på grund av deras höga diagnostiska effektivitet i början av EG, vilket uppnår övergripande och bilaterala detektionsnivåer på 89%-95% respektive 52%-82%, med en känslighet på 84%-100% och negativt prediktivt värde på 97%-100%22. Den aktuella studien rapporterar en typisk EC patient som utförde SLN mappning och beskrev SLN protokollet i detalj från ICG injektion till SLN biopsi.

SLN-kartläggning är möjlig med olika färgämnen. Tidigare forskning om lymfkörtel iscensättning av bröst- och endometriecancer tillämpade blått färgämne (vanligtvis metylenblått eller isosulfanblått (ISB), radiokolloid eller båda23,24,25,26), som når god prestanda och noggrannhet. Som visas i vitt ljus har de blå färgämnena som nämns ovan använts i stor utsträckning på grund av deras bekvämlighet och det minst komplexa utrustningskravet. ICG-färgämnet hade dock högre SLN-detektionsgrad (83%) än ISB (64%)26. Således anses ICG vara ett bättre alternativ för framgångsrik upptäckt. Jämförelse mellan olika färgämnen anges i tabell 1 enligt SGO-konsensus27.

Förutom trackerfärgämnen påverkar injektionspositioner också detektionshastigheten för SLN-kartläggning. Färginjektion i livmoderhalsen kan inte helt återspegla lymfatisk dränering, även om förfarandet är relativt enkelt och populärt i kliniska prövningar28,29. En hysteroskopisk injektion kräver mer skicklighet och ligger nära tumör lesion. Myometriesidan är utmanande att komma åt intraoperativt, vilket resulterar i en låg negativ prediktiv hastighet på 87,50% och en falskt negativ frekvens på 33,30%30. I studier med cervikal injektion var känslighetsområdet 62, 5% - 97, 5%, medan myometriuminjektion var 66,70%-94, 10%31. En systematisk genomgång med 55 kvalificerade studier visade att en total detektionsgrad på 81% (95% konfidensintervall är från 77 till 84)32. Dubbel detektion fungerar bättre än enkel detektion, oavsett injektionsstället33. I den pågående kliniska studien (NCT04276532), där 92 EG-patienter inkluderades, var SLN-kartläggningsdetekteringsgraden så hög som 91,3%, med en total känslighet på 73,3%. Kombinationen av massundersöknings- och fundusinjektioner nådde en högre para-aorta detektionsgrad (40, 4%) än enbart cervikala injektioner (4, 4%), vilket indikerar att den kombinerade injektionen är effektivare.

Det finns många möjliga orsaker till otillräcklig SLN-identifiering. Anatomiskt påverkar Naboth cysta och postsurgical onormal bäckenet mappning noggrannhet. Överdriven fettvävnad nära livmoderhalsen och livmoderhalscancer stenos på grund av att åldrande leder också till misslyckad kartläggning. Faktorer som BODY Mass Index (BMI), ISB-färganvändning och förstorade noder är associerade med SLN-mappningsfel34. Kontroversiellt, en prospektiv studie inklusive 110 EC patienter rapporterade att fetma och förekomsten av lymfkörteln metastaser inte var associerade med detektion misslyckande35. Lymfovaskulära rymd invasion kan leda till misslyckande av SLN mappning samt.

Internationella riktlinjer betraktar SLN-kartläggning och biopsi som nödvändiga procedurer10,18. Det finns dock diskussioner om huruvida SLN-kartläggning ska genomföras hos patienter med medelhög risk i EG. Patienter med svår carcinom, klarcellskarcinom och carcinosarkom har en högre risk för nodmetastasering36. Tvärtom har vissa studier fastställt att SLN-kartläggning är ett säkert alternativ till systematisk lymfaddenktomi på grund av lägre komplikationsförekomst37,38 och motsvarande total överlevnad37. Mer högkvalitativa kliniska prövningar krävs för att bestämma de optimala inklusionsstandarderna.

Sammanfattningsvis är SLN mappning och biopsi bättre alternativ än systematiska lymphadenectomy att göra operationen så enkel och minimalt invasiv som möjligt. Det kan till och med förbättra sjukdomens patologiska stadium genom att använda en patologisk ultrastaging-metod för att vägleda den postoperativa adjuvantterapin mer exakt. För att maximera specificiteten och känsligheten hos SLN-detektering ger detta protokoll tips för SLN-kartläggning och biopsi för att säkerställa ett bättre resultat av operationen.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Författarna har inget att avslöja.

Acknowledgments

Detta arbete stöddes delvis av bidrag från National Natural Science Foundation of China (81772777), Shanghai Science and Technology Commission Medical Guidance Project (18411963700), Clinical Research Plan of SHDC (No. SHDC2020CR4079). Shanghai Pujiang Talents Project (17PJ1401400). Vi tackar den lägliga hjälpen från Fenghua Ma från radiologiavdelningen för MR-bilder och Chao Wang från patologiavdelningen för patologiska bilder från Obstetrics and Gynecology Hospital of Fudan University.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
2-mL syringe Becton, Dickinson and Company, USA 301940
Coagulation forceps Shanghai Medical Instrument (Group) Co., Ltd. Surgical Instrument Factory D0A010
Fluorescence microscope Olympus IX73
Harmonic scalpel Soering GmbH SONOCA190
Hematoxylin-eosin staining Beyotime Biotechnologies Corporation,CN C0107
Immunohistochemical cytokeratin staining MXB Biotechnologies Corporation, CN Kit-0020
Indocyanine green (ICG) Dandong Medical Innovation Pharmaceutical Corporation. 3599-32-4
Pararaffin Sangon biotech Co., Ltd. A601889
Pinpoint Endoscopic Fluorescence Imaging system Novadaq Technoloies Bonita, Springs, FL NA
Propofol Injection Fresenius Kabi Deutschland GmbH D-61346 Bad Homburg v.d.H., Germany H20030124
Silk Braided non-absorbable suture Shanghai Ethicon SA854G
Silk thread Beijing AKIN AIEN International Medical Technology Co.,Ltd. VCPP71D
Suction-Irrigation Tube Shanghai SMAF YX980D
Toothless forceps Shanghai Medical Instrument (Group) Co., Ltd. Surgical Instrument Factory J41010
Trocar ETHICON Co,. Ltd, USA B10LT, B5LT

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Siegel, R. L., Miller, K. D., Jemal, A. Cancer statistics, 2019. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 69 (1), 7-34 (2019).
  2. Bray, F., et al. Global cancer statistics 2018: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 68 (6), 394-424 (2018).
  3. Morice, P., Leary, A., Creutzberg, C., Abu-Rustum, N., Darai, E. Endometrial cancer. Lancet. 387 (10023), London, England. 1094-1108 (2016).
  4. de Boer, S. M., et al. Adjuvant chemoradiotherapy versus radiotherapy alone for women with high-risk endometrial cancer (PORTEC-3): final results of an international, open-label, multicentre, randomised, phase 3 trial. The Lancet. Oncology. 19 (3), 295-309 (2018).
  5. Creasman, W. T., et al. Surgical pathologic spread patterns of endometrial cancer. A Gynecologic Oncology Group Study. Cancer. 60 (8), 2035-2041 (1987).
  6. Bodurtha Smith, A., Fader, A., Tanner, E. Sentinel lymph node assessment in endometrial cancer: a systematic review and meta-analysis. American Journal of Obstetrics Gynecology. 216 (5), 459-476 (2017).
  7. Rossi, E. C., et al. A comparison of sentinel lymph node biopsy to lymphadenectomy for endometrial cancer staging (FIRES trial): a multicentre, prospective, cohort study. The Lancet. Oncology. 18 (3), 384-392 (2017).
  8. Holloway, R. W., et al. Sentinel lymph node mapping and staging in endometrial cancer: A Society of Gynecologic Oncology literature review with consensus recommendations. Gynecologic Oncology. 146 (2), 405-415 (2017).
  9. Gezer, S., et al. Cervical versus endometrial injection for sentinel lymph node detection in endometrial cancer: a randomized clinical trial. International Journal of Gynecological Cancer. 30 (3), 325-331 (2020).
  10. McMillian, N., Motter, A. NCCN Clinical Practice Guidelines in Oncology of Uterine Neoplasms 2021 v1. , Available from: www.nccn.org (2021).
  11. Manca, G., et al. Sentinel lymph node biopsy in breast cancer: Indications, contraindications, and controversies. Clinical Nuclear Medicine. 41 (2), 126-133 (2016).
  12. Digesu, C. S., Weiss, K. D., Colson, Y. L. Near-infrared sentinel lymph node identification in non-small cell lung cancer. JAMA Surgery. 153 (5), 487-488 (2018).
  13. Garau, L. M., et al. Sentinel lymph node biopsy in small papillary thyroid cancer. A review on novel surgical techniques. Endocrine. 62 (2), 340-350 (2018).
  14. Gonzalez, A. Sentinel lymph node biopsy: Past and present implications for the management of cutaneous melanoma with nodal metastasis. American Journal of Clinical Dermatology. 19, Suppl 1 24-30 (2018).
  15. Levenback, C. F., et al. Lymphatic mapping and sentinel lymph node biopsy in women with squamous cell carcinoma of the vulva: a gynecologic oncology group study. Journal of Clinical Oncology. 30 (31), 3786-3791 (2012).
  16. Protic, M., et al. Prognostic effect of ultra-staging node-negative colon cancer without adjuvant chemotherapy: A prospective national cancer institute-sponsored clinical trial. Journal of the American College of Surgeons. 221 (3), 643-651 (2015).
  17. Price, P. M., Badawi, R. D., Cherry, S. R., Jones, T. Ultra staging to unmask the prescribing of adjuvant therapy in cancer patients: the future opportunity to image micrometastases using total-body 18F-FDG PET scanning. The Journal of Nuclear Medicine. 55 (4), 696-697 (2014).
  18. Concin, N., et al. ESGO/ESTRO/ESP Guidelines for the management of patients with endometrial carcinoma. Virchows Archiv: An International Journal of Pathology. 478 (2), 153-190 (2021).
  19. FIGO Committee on Gynecologic Oncology. FIGO staging for carcinoma of the vulva, cervix, and corpus uteri. International journal of gynaecology and obstetrics: the official organ of the International Federation of Gynaecology and Obstetrics. 125 (2), 97-98 (2014).
  20. Barlin, J. N., et al. The importance of applying a sentinel lymph node mapping algorithm in endometrial cancer staging: beyond removal of blue nodes. Gynecologic Oncology. 125 (3), 531-535 (2012).
  21. Amin, M. B., et al. AJCC Cancer Staging Manual, 8th edition. , Springer. (2017).
  22. Eriksson, A. G. Z., et al. Update on sentinel lymph node biopsy in surgical staging of endometrial carcinoma. Clinical Medicine. 10 (14), (2021).
  23. Kelley, M. C., Hansen, N., McMasters, K. M. Lymphatic mapping and sentinel lymphadenectomy for breast cancer. The American Journal of Surgery. 188 (1), 49-61 (2004).
  24. Sakorafas, G. H., Peros, G. Sentinel lymph node biopsy in breast cancer: what a physician should know, a decade after its introduction in clinical practice. European Journal of Cancer Care. 16 (4), 318-321 (2007).
  25. Niikura, H., et al. Tracer injection sites and combinations for sentinel lymph node detection in patients with endometrial cancer. Gynecologic Oncology. 131 (2), 299-303 (2013).
  26. Backes, F. J., et al. Prospective clinical trial of robotic sentinel lymph node assessment with isosulfane blue (ISB) and indocyanine green (ICG) in endometrial cancer and the impact of ultrastaging (NCT01818739). Gynecologic Oncology. 153 (3), 496-499 (2019).
  27. Holloway, R. W., et al. Sentinel lymph node mapping and staging in endometrial cancer: A Society of Gynecologic Oncology literature review with consensus recommendations. Gynecologic Oncology. 146 (2), 405-415 (2017).
  28. Ballester, M., et al. Detection rate and diagnostic accuracy of sentinel-node biopsy in early stage endometrial cancer: a prospective multicentre study (SENTI-ENDO). The Lancet. Oncology. 12 (5), 469-476 (2011).
  29. Rossi, E. C., et al. A comparison of sentinel lymph node biopsy to lymphadenectomy for endometrial cancer staging (FIRES trial): a multicentre, prospective, cohort study. The Lancet. Oncology. 18 (3), 384-392 (2017).
  30. Mayoral, M., et al. F-FDG PET/CT and sentinel lymph node biopsy in the staging of patients with cervical and endometrial cancer. Role of dual-time-point imaging. Revista Espanola de Medicina Nuclear e Imagen Molecular. 36 (1), 20-26 (2017).
  31. Lecointre, L., et al. Diagnostic accuracy and clinical impact of sentinel lymph node sampling in endometrial cancer at high risk of recurrence: A meta-analysis. Journal of Clinical Medicine. 9 (12), (2020).
  32. Bodurtha Smith, A. J., Fader, A. N., Tanner, E. J. Sentinel lymph node assessment in endometrial cancer: a systematic review and meta-analysis. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 216 (5), 459-476 (2017).
  33. Bonneau, C., Bricou, A., Barranger, E. Current position of the sentinel lymph node procedure in endometrial cancer. Bulletin du Cancer. 98 (2), 133-145 (2011).
  34. Tanner, E. J., et al. Factors associated with successful bilateral sentinel lymph node mapping in endometrial cancer. Gynecologic Oncology. 138 (3), 542-547 (2015).
  35. Ianieri, M. M., et al. Sentinel lymph node biopsy in the treatment of endometrial cancer: Why we fail? Results of a prospective multicenter study on the factors associated with failure of node mapping with indocyanine green. Gynecologic and Obstetric Investigation. 84 (4), 383-389 (2019).
  36. Naoura, I., Canlorbe, G., Bendifallah, S., Ballester, M., Daraï, E. Relevance of sentinel lymph node procedure for patients with high-risk endometrial cancer. Gynecologic Oncology. 136 (1), 60-64 (2015).
  37. Schiavone, M. B., et al. Survival of patients with uterine carcinosarcoma undergoing sentinel lymph node mapping. Annals of Surgical Oncology. 23 (1), 196-202 (2016).
  38. Soliman, P. T., et al. A prospective validation study of sentinel lymph node mapping for high-risk endometrial cancer. Gynecologic Oncology. 146 (2), 234-239 (2017).

Tags

Cancerforskning nummer 174 sentinel lymfkörtel kartläggning biopsi endometriecancer laparoskopi
Sentinel Lymfkörtel mappning och biopsi för endometriecancer i tidigt skede med laparoskopi
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Wang, B., Xue, Y., Wang, Q., Xu, Y., More

Wang, B., Xue, Y., Wang, Q., Xu, Y., Chen, X., Wang, C. Sentinel Lymph Node Mapping and Biopsy for Endometrial Cancer at Early Stage with Laparoscopy. J. Vis. Exp. (174), e63044, doi:10.3791/63044 (2021).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter