Summary
该协议提出了一种优化的分离叶生物测定系统，用于评估昆虫病原真菌（EPF）对孤雌生殖昆虫芥菜蚜虫（Lipaphis erysimi （Kalt.））的有效性。该方法概述了培养皿实验期间的数据收集过程，使研究人员能够始终如一地测量EPF对芥菜蚜虫和其他孤雌生殖昆虫的毒力。
Abstract
芥菜蚜虫（L. erysimi）是一种害虫，会侵扰各种十字花科作物并传播植物病毒。为了实现环保的害虫管理，昆虫病原真菌（EPF）是控制这种害虫的潜在微生物控制剂。因此，在现场应用之前，有必要在培养皿条件下对EPF分离株进行毒力筛选。然而，芥菜蚜虫是一种孤雌生殖昆虫，因此在培养皿实验中很难记录数据。为了解决这个问题，开发了一种改进的分离叶生物测定系统，使用微型喷雾器将分生孢子接种到蚜虫上，并通过促进孢子悬浮后的空气干燥来防止溺水。在整个观察期间，该系统保持较高的相对湿度，叶盘保持新鲜十天以上，使蚜虫得以孤雌生殖繁殖。为了防止后代堆积，实施了每天使用画笔去除的过程。该方案展示了一种稳定的系统，用于评估EPF分离株对芥菜蚜虫或其他蚜虫的毒力，从而能够选择潜在的分离物进行蚜虫控制。
Introduction
芥菜蚜虫（L. erysimi）是一种臭名昭著的害虫，它侵扰各种十字花科作物，造成重大经济损失1。虽然已经推荐了几种系统性杀虫剂来对抗蚜虫侵扰，但这些杀虫剂的频繁使用引起了人们对杀虫剂耐药性的担忧2,3。因此，在环境友好型害虫管理方面，昆虫病原真菌（EPF）可以作为一种合适的替代防治策略。EPF 是一种昆虫病原体，能够通过穿透宿主的角质层来感染宿主，使其成为控制蚜虫和其他吸食植物的昆虫的有效药物4.此外，EPF 已被证明是一种可行且可持续的害虫管理技术，具有植物病原体拮抗和促进植物生长等益处5.
EPF可以通过昆虫土壤诱饵获得，也可以从野外的昆虫尸体中分离出来6,7。然而，在进一步使用真菌分离株之前，有必要进行致病性筛查。已经对 EPF 对蚜虫的有效性进行了几项研究，蚜虫是可造成严重损害的重要作物害虫 8,9。芥菜蚜虫，在各种蚜虫中，已经测试了对几种菌株的易感性，包括Beauveria spp.、Metarhizium spp.、Lecanicillium spp.、Paecilomyces spp.，甚至链格孢菌，它主要被称为腐生和植物病原真菌，但对芥菜蚜虫显示出一些致命的作用10,11,12。
为了评估EPF在实验室条件下对蚜虫的有效性，生物测定可分为两个主要部分：接种室和真菌接种。目前的方案描述了接种室的构造，其中蚜虫可以使用各种方法进行维护，例如用湿棉花包裹叶柄的切除叶片，带有衬有湿滤纸的培养皿的切除叶盘，直接维护盆栽植物，或切除的叶盘嵌入培养皿或容器10中的水琼脂中，11,13.常见的真菌接种方法包括分生孢子喷洒、蚜虫浸泡到分生孢子悬浮液中、叶片浸入分生孢子悬浮液中以及植物内生菌接种11、14、15、16。虽然存在各种接种方法，但生物测定应模拟现场应用条件。例如，在叶浸法12,17的情况下，可以评估EPF的效率，但由于蚜虫侵扰了装载真菌的叶子，因此蚜虫的背侧是一个优先的渗透部位，通常不会暴露于真菌。
为了评估EPF在实验室条件下的杀蚜作用，该方案建议使用Yokomi和Gottwald18描述的分离叶方法进行一些修改，然后使用微型喷雾器接种分生孢子。该方法在生物测定室中保持约100%的湿度至少七天，而无需额外补充水18,19。此外，将蚜虫限制在一个表面上可确保它们暴露于分生孢子喷洒并促进观察20.然而，蚜虫在接种室内移动时可能会卡在暴露的琼脂表面。此外，在培养皿实验中记录芥菜蚜虫的数据，芥菜蚜虫是孤雌生殖昆虫，由于它们的快速发育和繁殖，可能具有挑战性。如果不移除，很难区分接种的成虫及其后代。如何进行这一步的细节很少提及，一些不一致的因素，如叶片消耗面积，需要优化。
该方案展示了一种稳定的系统，用于筛选EPF分离株对芥菜蚜虫的毒力，从而能够从广泛的EPF库中选择针对各种蚜虫物种的潜在分离物。可以鉴定现场收集的蚜虫，并且可以建立足够的芥菜蚜虫实验室种群，以使用简单可行的方法评估各种真菌分离株的杀蚜效果，并具有一致的结果。蚜虫在应对农业生态系统中强烈和反复的人为压力时发展出多种进化机制，对粮食安全构成挑战9.因此，所描述的方法可以扩展到评估针对各种蚜虫物种的潜在EPF分离株。
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Protocol
注意： 完整的流程图如图 1 所示。
1.芥菜蚜虫的收集与维护
- 芥菜蚜虫的收集
- 翻转叶子，目视检查田间十字花科作物上是否有芥菜蚜虫侵扰。
- 记录采样地点信息（即GPS）和寄主植物，并与农民确认使用杀虫剂的历史。
- 使用昆虫吸痰器或精细画笔（见 材料表）从田间十字花科作物中收集约50个芥菜蚜虫到50mL离心管中，并在3小时内将样品带到实验室。
- 准备一个临时维护培养皿，底部有切除的十字花科叶子和渗水的滤纸。
- 将五只蚜虫置于室温（25±2°C）下，相对湿度为70%，12：12小时（光：暗）光周期为14天，以确认蚜虫没有天敌，然后再进一步饲养。
注意：为确保田间收集的蚜虫没有寄生蜂或昆虫病原真菌等天敌，在进行进一步饲养之前确认不存在这些生物至关重要。
- 芥菜蚜虫的维护
注意：要保持芥菜蚜虫，请使用不含农药（包括生物农药）的十字花科叶子。- 提供稳定和充足的十字花科叶子供应（约 25 cm2）。
注意：从市场上获得十字花科的叶子或种植植物。在长期大规模饲养芥菜蚜虫之前，可以测试几种不同种类的十字花科植物，以找到合适的十字花科植物。一旦十字花科叶子的种类固定，就不要改变它。在这项研究中，使用了6-7叶期的小松（Brassica rapa var. perviridis）（见 材料表）。此外，处理掉 2-3 片最老的叶子。 - 在底部的滤纸完全干燥之前加水。
- 每天观察芥菜蚜虫的种群密度。7 天后，人口应增长到 2-3 倍。
- 当蚜虫数量增加时，将原来用芥菜蚜虫切除的叶子切成4-6块小块，并将每片带有芥菜蚜虫的小叶片放入一个培养皿中，培养皿中装有新鲜切除的叶子和浸水的滤纸。
- 将培养皿置于25°C的培养箱中，具有12：12小时（光：暗）的光周期，并每天观察芥菜蚜虫的种群密度。
- 在原始叶子腐烂之前，大多数蚜虫迁移到新鲜的切除叶子后，去除原始切除的叶子。
- 提供稳定和充足的十字花科叶子供应（约 25 cm2）。
2.芥菜蚜虫的分子鉴定
注：为了确认田间采集的芥菜蚜虫的种类，使用两种分子标记进行分子鉴定：Lu等人设计的基于扩增区（SCAR）的A05Le的序列表征21，以及芥菜蚜虫的细胞色素氧化酶亚基1（COI）区域。
- 芥菜蚜虫基因组DNA的提取
- 在 1.5 mL 离心管中收集约 50 只蚜虫。
注意：用于分子鉴定的蚜虫应为单个蚜虫的后代，并且各个阶段也可以汇集在同一管中进行DNA提取。 - 用沉淀杵匀浆蚜虫，并按照制造商的说明使用 Gene-Spin 基因组 DNA 分离试剂盒提取 DNA（参见 材料表）。
- 用 50 μL 预热的无核酸酶水洗脱基因组 DNA。
- 在 1.5 mL 离心管中收集约 50 只蚜虫。
- PCR扩增和DNA测序
- 使用PCR预混液（2x）扩增蚜虫基因组DNA中的靶DNA序列，引物对A05LeF / A05LeR和LeCO1F / LeCO1R（表1）具有不同的PCR程序21。
注：总体积为 20 μL 的 PCR 反应由 2 μL 蚜虫基因组 DNA 模板、1 μL 正向和 1 μL 反向引物、10 μL PCR 预混液（参见 材料表）和 6 μL ddH2O 组成。 - 使用以下程序在热循环仪中进行PCR（参见 材料表）：94°C5分钟，94°C循环25次，持续45秒，61°C（对于A05LeF / A05LeR）和58°C（对于LeCO1F / LeCO1R）45秒，72°C持续1分钟，然后最终延长72°C5分钟。
- 通过1%琼脂糖凝胶电泳分析PCR产物，以确认芥菜蚜虫的身份（图2）。
注：如果引物对 A05LeF/A05LeR 成功扩增了 DNA 片段的正确大小，则它已令人信服地将现场收集的蚜虫鉴定为芥菜蚜虫21。引物对列于 表2中。 - 按照制造商的说明（参见 材料表），使用市售的凝胶/PCR试剂盒纯化芥菜蚜虫COI扩增子的PCR产物，并使用商业测序服务对PCR产物进行测序。
- 使用PCR预混液（2x）扩增蚜虫基因组DNA中的靶DNA序列，引物对A05LeF / A05LeR和LeCO1F / LeCO1R（表1）具有不同的PCR程序21。
- 序列分析
注：根据Lu等人21，A05Le的DNA弯曲是芥菜蚜虫特异性DNA片段;因此，A05Le PCR产物不需要进一步测序。- 获得LeCO1序列后，通过Chromas软件（见 材料表）检查读取质量。
- 通过打开 fasta（或 txt）文件并直接删除低质量读取来修剪上游和下游低质量读取。
- 使用默认参数将修剪后的序列提交到 NCBI web BLAST （https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi）。
注：如果 A05Le 和 LeCO1 引物组的扩增子大小正确，理论上，针对 NCBI 标准数据库的序列原始搜索必须与芥菜蚜虫匹配。
3.昆虫病原真菌的制备
注：本研究中使用的EPF列于 表1中。
- 从真菌库中回收EPF
- 从-80°C冰箱中解冻保存的真菌原液（悬浮在30%甘油中的分生孢子）。
- 将少量（约10μL）分生孢子悬浮液转移到6cm 1/4 Sabouraud葡萄糖琼脂（SDA）平板（0.75g Sabouraud葡萄糖肉汤，每100mL ddH2O含1.5g琼脂）中，并在层流罩中使用细胞扩散器均匀分布。
- 用石蜡膜密封培养皿，并在25°C的黑暗中孵育10-14天。
- 通过在1/4SDA平板上划线真菌团并将真菌在25°C的黑暗中孵育10-14天，在收获分生孢子22之前重新培养真菌分离物。
注意：真菌培养物应在接种蚜虫前约10天使用。不建议将超过 14 天的 EPF 培养用于毒力试验。
- 分生孢子悬浮液的制备
- 加入2-3mL 0.03%吐温80后，通过接种环从10-14天龄的真菌培养物上刮除10-14天龄真菌培养物的分生孢子（参见 材料表）。
- 将真菌悬浮液收集到离心管中。
- 以最高速度涡旋溶液，在光学显微镜下使用血细胞计数器计数分生孢子的数量，并将分生孢子悬浮液的浓度调节至108 分生孢子/ mL。
- 将分生孢子悬浮液转移到紫外线灭菌的微型喷雾器中。
注意：在转移分生孢子悬浮液之前再次涡旋分生孢子悬浮液，因为分生孢子容易沉淀。使用前，微型喷雾器应在层流罩中暴露于紫外线辐射 30 分钟。
4. 针对芥菜蚜虫的毒力筛查
- 新成虫的准备
- 将有翅（无翅）和有翅（有翅）的成虫从培养皿中移到新鲜切除的叶子上，以繁殖同龄的新后代。24小时后取出成虫以避免过度拥挤，并尽量减少后代的产生23,24。在进一步的实验中，只有适配的成虫才会被使用。
- 将后代培养到成虫阶段，并在48小时后去除未发育到成虫阶段的后代（图3），以防止蚜虫之间的年龄差异进行实验。此外，删除有缺陷的成虫。
- 接种室的准备
注意：建议先准备直径为9厘米的十字花科叶子，以便在凝固前将叶盘嵌入水琼脂中。- 用自来水清洁十字花科的叶子，去除污垢和残留物，以及任何其他节肢动物（如果有）。
- 用纸巾擦去多余的水，并使用立体显微镜检查十字花科叶子表面是否有任何其他节肢动物。移除任何节肢动物（如果存在）。
- 通过将底部培养皿直接压在叶子上作为模具或使用剪刀来切割直径为9厘米的叶盘。
注意：如果叶子直径小于 9 厘米，请合并几片切除的叶子。 - 通过使用微波将450mg琼脂（参见 材料表）加热并溶解在30mL ddH2O中，为每个培养皿制备1.5%水琼脂。
注意：1.5%水琼脂的量可以根据实验规模进行调整。 - 在层流罩中固化之前，将30mL的1.5%水琼脂倒入9cm培养皿中，然后等待琼脂冷却至~40°C，直到琼脂表面半固化。
注意：通过轻轻水平摇动培养皿来检查表面是否半凝固。 - 将叶盘，轴面朝上，放在水琼脂上，将叶盘嵌入琼脂中。
注意：尽量减少琼脂表面的暴露。 - 水琼脂完全凝固后，关闭培养皿的盖子。
注意： 如果盖子上有大量液滴凝结，请立即打开盖子进行水汽化。 - 将 20 只适配的成虫放在叶盘上。
注意： 建议在立体显微镜下操作，以防止损坏其口器。
- EPF接种和观察
- 打开接种室的盖子，将0.3mL分生孢子悬浮液（来自步骤3.2）直接喷洒到叶盘上方约15cm处的蚜虫和叶盘上。
注意：喷洒前再次涡旋分生孢子悬浮液。应在实验前测试喷涂区域，因为它们可能因不同的喷雾器而异。在这种情况下，建议使用 0.3 mL，距离为 15 cm。喷洒区域应覆盖整个叶盘，叶盘应覆盖一层薄薄的分生孢子悬浮液。如果液滴在叶子上汇聚成积水，则应减少接种量。接种前和使用不同分离株之间用70%乙醇清洁桌子。 - 等待分生孢子悬浮液干燥，然后盖上盖子，防止芥菜蚜淹死。
注意：在实验过程中，蚜虫很少四处游荡;然而，确保蚜虫不会逃脱仍然是必要的。 - 用石蜡膜密封接种室以保持高相对湿度，并将接种室置于25°C的培养箱中，光周期为12：12小时（光：暗）。
- 打开接种室的盖子，每12小时在立体显微镜下计算死亡率，持续5天。
- 用纸巾擦去粘附在盖子上的蜜露，用细画笔去除新出现的蚜虫。每 24 小时用自来水清洁盖子。
注意：根据成虫的寿命，不同种类的蚜虫的观察期可能会有所不同。 - 将尸体放在叶盘上进行真菌病，以确认接种成功。
- 打开接种室的盖子，将0.3mL分生孢子悬浮液（来自步骤3.2）直接喷洒到叶盘上方约15cm处的蚜虫和叶盘上。
- 分生孢子萌发率的确认
注意：此步骤是可选的。在进行毒力筛选时，要确认分生孢子的萌发率，以确保分生孢子的活性。- 将一滴 5 μL 分生孢子悬浮液滴在 1/4 SDA 上，重复 3 次。
- 18小时后，用光学显微镜计算发芽率。在单个液滴中随机计数至少 100 个孢子，以确认真菌萌发率。
注：通常，实验中使用的分离株的发芽率应高于90%。
5. 选定的EPF分离株的生物测定
注：从步骤4中选出显示出高毒力的EPF分离株，使用四种浓度的分生孢子悬浮液（范围为104 至107 分生孢子/ mL）对芥菜蚜虫进行生物测定。
- 分生孢子悬浮液的制备
- 重复步骤 3.1 以恢复选定的 EPF 分离株。
- 重复步骤3.2制备四种浓度的分生孢子悬浮液，包括104、105、106 和107 分生孢子/ mL。
- 新成虫的准备
- 重复步骤 4.1 以准备新出现的成虫。
- 接种室的准备
- 重复步骤 4.1。准备接种室。
- EPF接种和观察
- 重复步骤 4.3。分别用四种浓度的分生孢子悬浮液进行EPF接种和观察。
6. 统计分析
- 校正死亡率的计算
- 使用 Abbott 公式25 计算校正死亡率，如下所示：
校正死亡率 （%） = [（MT− M C） × 100%] / （100− MC）
MT 代表治疗组的死亡率，MC 代表对照组的死亡率。
注意：对照组的死亡率不应高于20%。 - 打开SPSS软件平台（见 材料表），创建包括“治疗”和“cor_mor”（代表校正死亡率）在内的变量，并输入同一时间点以相同接种浓度接种不同菌株的计算结果。
- 在 SPSS 中选择分析、 比较均值和比例、独立样本 t 检验以进行独立 t 检验 分析。
- 在 SPSS 中，在“分组变量”框中输入 处理 ，然后在“测试变量”中 cor_mor 。按不同的真菌分离株定义组。按 OK 进行分析。
- 使用 Abbott 公式25 计算校正死亡率，如下所示：
- 中位致死时间（LT 50）和中位致死浓度（LC50）的计算
- 打开 SPSS，创建变量“total”、“response”和“duration”/“concentration”，并将记录的结果输入电子表格。
- 在 SPSS 中选择分析、回归、概率以计算 LT 50 和/或 LC50。
注意：如果累积死亡率最终不超过 50%，则无法估计 LT 50 和/或 LC50。 - 在“观察到的总量”框中输入 总 值，在“响应频率”框中输入 响应，在 “协变量”框中输入 持续时间/浓度 。按 OK 进行分析。
注意：通常，按“选项”并将 “ 使用异质性因子的显著性水平”设置为 0.05。
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Representative Results
所呈现的流程图说明了芥菜蚜虫从田间采集到毒力筛选的稳定状态。通过田间采集对蚜虫的维护确保了蚜虫群落的稳定增加和充足的食物供应。通过使用分子标记（包括PCR扩增子大小和LeCO1测序）将现场收集的蚜虫确认为芥菜蚜虫。使用分离叶法进行的毒力筛查显示，芥菜蚜虫的存活率一致，对照组的存活率为85%（图4）。
在毒力筛选过程中，Cc-NCHU-213表现出最快的蚜虫杀灭能力，在接种后3天和4.5天（d.p.i.）分别导致50%和90%的死亡率（图4）。然而，在5种 B. bassiana 分离株中观察到不同的蚜虫杀灭能力。Bb-NCHU-141、-143 和 -153 表现出缓慢的蚜虫杀灭能力，即使排除 0.03% 吐温 80 或其他致死因素的影响，在 3 d.p.i. 时死亡率仅为 5%（图 4）。因此，采用校正后的死亡率公式对控制死亡率进行归一化。除Pl-NCHU-152外，大多数针对芥菜蚜虫的EPF分离株在5 d.p.i.内表现出高于70%的校正死亡率（表3）。在这些EPF分离株中，Bb-NCHU-286的死亡率最高，为100%（表3）。此外，在毒力筛查期间，在感染 Metarhizium spp.、 Beauveria spp.、 Purpureocillium lilacinum和 Cordyceps cateniannulata 的芥菜蚜虫尸体上观察到EPF真菌病，表明该系统的有效性（图5）。
根据毒力筛选结果，选取两种EPF分离株Mb-NCHU-197和Cc-NCHU-213，具有快速杀虫活性（3 d.p.i.时死亡率分别为40%和50%），用于对芥菜蚜虫的生物测定。结果表明，Mb-NCHU-197 和 Cc-NCHU-213 在 3 和 4 d.p.i. 时，接种 107 分生孢子/mL 时校正死亡率显着不同（图 6）。在LT50测定中，与其他处理相比，用107分生孢子/mL Cc-NCHU-213处理的持续时间明显缩短（表4）。此外，Cc-NCHU-213的LC50值（9.32×104）低于Mb-NCHU-213的LC50值（2.30×10 5），表明Cc-NCHU-213对芥菜蚜虫具有更大的毒力（表5）。
图1：筛选EPF毒力的实验流程图。 （一）建立芥菜蚜虫饲养制度。（B） 公积金的编制。（C）真菌接种。（四）统计分析。请点击这里查看此图的较大版本.
图 2：用 A05Le 和 Le CO1 引物组扩增的芥菜蚜虫基因组 DNA 的电泳。 在1%琼脂糖凝胶上进行电泳。M = 100 bp DNA 分子量标准;bp = 碱基对。红色星号表示PCR扩增的目标弯曲。 请点击这里查看此图的较大版本.
图3：无龄四龄若虫与成年芥菜蚜虫的差异 。 （A） 四龄若虫。（B） 成人。四龄若虫后腿的胫骨是白色的（用红色箭头标记）。在毒力测试中，用细骆驼刷清除新出现的蚜虫。比例尺 = 1 mm. 请点击这里查看此图的较大版本.
图 4：通过分离叶法对芥菜蚜虫的 13 个 EPF 分离株的死亡率热图。 请点击这里查看此图的较大版本.
图 5：13 株 EPF 分离株的真菌真菌病观察。 Mepe-NCHU-2 = Metarhizium pemphigi; Mp-NCHU-11 = 平海间根茎; Mb = 宝山菊（Metarhizium baoshanense）;cc = 冬虫夏草;Ba = Beauveria australis;Bb = Beauveriabassiana;Pl = 紫紫 薇。 比例尺 = 1 mm. 请点击这里查看此图的较大版本.
图 6：真菌分离株 Mb-NCHU-197 和 Cc-NCHU-213 对芥菜蚜虫的校正死亡率。 误差线表示标准偏差 （SD）。使用独立 t 检验比较 Mb-NCHU-197 和 Cc-NCHU-213 在相同接种浓度的同一时间点的死亡率，发现标有星号的死亡率差异有统计学意义 （p < 0.05）。 请点击这里查看此图的较大版本.
| 隔离 | 物种 | 主机或源* | 位置 |
| MP-NCHU-2型 | 天疱疮 | 土 | 宜兰 |
| ML-NCHU-9型 | Metarhizium lepidiotae 鳞茎草 | 土 | 宜兰 |
| MP-NCHU-11型 | 平海根茎（Metarhizium pinghaense） | 土 | 宜兰 |
| 钡-NCHU-113 | Beauveria australis（南博维氏菌） | 土 | 台中 |
| BB-NCHU-141型 | Beauveria bassiana | Hypothenemus hampei | 嘉义 |
| BB-NCHU-143型 | Beauveria bassiana | Hypothenemus hampei | 嘉义 |
| PL-NCHU-152型 | 紫花紫薇 （Purpureocillium lilacinum） | 状苔藓瘤 | 嘉义 |
| BB-NCHU-153型 | Beauveria bassiana | 铁犀（Rhynchophorus ferrugineus） | 中华 |
| BB-NCHU-157型 | Beauveria bassiana | 铁犀（Rhynchophorus ferrugineus） | 中华 |
| MB-NCHU-196型 | 宝山菊（Metarhizium baoshanense） | 土 | 台中 |
| MB-NCHU-197型 | 宝山菊（Metarhizium baoshanense） | 土 | 台中 |
| CC-NCHU-213型 | 冬虫夏草 | 土 | 台中 |
| BB-NCHU-286型 | Beauveria bassiana | 天牛科 | 台中 |
表 1：本研究中使用的 EPF 分离株。
| 引物名称 | 序列 （5' - 3'） | 产品尺寸 （bp） | 参考 | |
| A05乐 | F-GGGTCTTGGATGGTGTGGTG | 953 | Lu 等 [21] | |
| R-AGGGGTCTTGTCGCCATTTT | ||||
| 碳酸1 | F-CTTTTCCCATGATCAATTTT | 593 | 本研究 | |
| R-ACGTAGTGGAAATGAGCAAC | ||||
表2：用于芥菜蚜虫分子鉴定的引物对。
| 隔离 | 物种 | 校正死亡率 （%） |
| MP-NCHU-2型 | 天疱疮 | 76.47 |
| ML-NCHU-9型 | Metarhizium lepidiotae 鳞茎草 | 82.35 |
| MP-NCHU-11型 | 平海根茎（Metarhizium pinghaense） | 76.47 |
| 钡-NCHU-113 | Beauveria australis（南博维氏菌） | 82.35 |
| BB-NCHU-141型 | Beauveria bassiana | 88.24 |
| BB-NCHU-143型 | Beauveria bassiana | 88.24 |
| PL-NCHU-152型 | 紫花紫薇 （Purpureocillium lilacinum） | 35.29 |
| BB-NCHU-153型 | Beauveria bassiana | 82.35 |
| BB-NCHU-157型 | Beauveria bassiana | 88.24 |
| MB-NCHU-196型 | 宝山菊（Metarhizium baoshanense） | 76.47 |
| MB-NCHU-197型 | 宝山菊（Metarhizium baoshanense） | 88.24 |
| CC-NCHU-213型 | 冬虫夏草 | 94.12 |
| BB-NCHU-286型 | Beauveria bassiana | 100.00 |
表 3：接种后 5 天 13 种针对芥菜蚜虫的 EPF 分离株的校正死亡率 （d.p.i.）。
| 隔离 | 物种 | 浓度（分生孢子/mL） | N* | LT50 （天数† | 95% 置信限 | 坡度 （SE） | 倍2 （df）‡ |
| MB-NCHU-197型 | 宝山菊（Metarhizium baoshanense） | 104 | 60 | 3.816 安培 | 3.61–4.05 | 0.60 (0.05) | 15.64 (28) |
| 105 | 60 | 3.112 BD | 2.95–3.28 | 0.72 (0.05) | 14.61 (28) | ||
| 106 | 60 | 2.908 字节 | 2.76–3.06 | 0.85 (0.06) | 15.04 (28) | ||
| 107 | 60 | 2.549摄氏度 | 2.40–2.69 | 0.90 (0.06) | 24.31 (28) | ||
| CC-NCHU-213型 | 冬虫夏草 | 104 | 60 | 3.948 安培 | 3.71–4.23 | 0.53 (0.05) | 8.81 (28) |
| 105 | 60 | 3.237 天 | 3.07–3.41 | 0.72 (0.05) | 22.86 (28) | ||
| 106 | 60 | 2.414摄氏度 | 2.28–2.54 | 1.08 (0.07) | 28.30 (28) | ||
| 107 | 60 | 2.132 东 | 2.02–2.25 | 1.41 (0.10) | 28.96 (28) | ||
| *观察到的昆虫数量。 | |||||||
| †用不同字母标记的 LT50 值被认为存在显着差异，因为它们的 95% 置信限不重叠。 | |||||||
| ‡X2， Pearson拟合优度检验中的卡方值;df， 自由度 | |||||||
表4：不同分生孢子浓度下真菌分离株Mb-NCHU-197和Cc-NCHU-213对芥菜蚜虫的LT50 值。 *观察到的昆虫数量。†用不同字母标记的 LT50 值被认为存在显着差异，因为它们的 95% 置信限不重叠。‡X2， Pearson拟合优度检验中的卡方值;df， 自由度。
| 隔离 | 物种 | N* | LC50 （分生孢子/mL）† | 95% 置信限 | 斯波 （SE） | 倍2 （df）‡ |
| MB-NCHU-197型 | 宝山菊（Metarhizium baoshanense） | 240 | 2.30 × 105 安 | 8.63 × 104–5.70 × 105 | 0.43 (0.08) | 10.14 (10) |
| CC-NCHU-213型 | 冬虫夏草 | 240 | 9.32 × 104 安 | 4.97 × 104–1.62 × 105 | 0.76 (0.09) | 4.33 (10) |
| *观察到的昆虫数量。 | ||||||
| †用不同字母标记的LC50值被认为存在显著差异，因为它们的95%置信限不重叠。 | ||||||
| ‡X2， Pearson拟合优度检验中的卡方值;df， 自由度 | ||||||
表5：真菌分离株Mb-NCHU-197和Cc-NCHU-213对芥菜蚜虫的LC50 值。 *观察到的昆虫数量。†LC50 用不同字母标记的值被认为存在显着差异，因为它们的 95% 置信限不重叠。‡X2， Pearson拟合优度检验中的卡方值;df， 自由度。
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Discussion
十字花科植物是一组蔬菜，经常被多种蚜虫侵染，包括芥菜蚜（L. erysimi）和卷心菜蚜虫（Brevicoryne brassicae）26。这两个物种在台湾已有报道 27，它们有可能在采集地点共存。为了区分密切相关的蚜虫种类，本研究采用多重引物组21的分子鉴定技术。通过从芥菜蚜虫COI基因片段中设计分子标记，我们成功地鉴定了芥菜蚜虫，从而证实了分子标记A05Le的可靠性21。
观察结果显示，在没有经验的情况下，仅根据芥菜的大小或形态来区分四龄若虫和成年芥菜蚜虫是具有挑战性的。然而，一个关键的区别特征是后腿的胫骨，它在四龄若虫中呈白色，但在成虫中则不然（图3）。先前对 L. attenuatum、B. bassiana 对棉蚜虫和 M. brunneum 对绿桃蚜虫的研究表明，蜕皮可以成为避免感染的策略28,29,30。因此，错误识别蚜虫阶段会导致毒力评估错误，因为蜕皮会影响 EPF28,29,31 的有效性。为了解决这个问题并确保毒力评估的准确性和精确度更高，除非故意使用蚜虫若虫，否则排除后腿胫骨上有白色部分尚未达到成虫阶段的蚜虫。这些蚜虫尚未完全成熟，可能会经历蜕皮，这可能使它们逃脱EPF的感染过程。此外，建议每 12 小时进行一次观察和数据记录。12 小时间隔更可取，用于证明具有相似蚜虫杀灭能力的多个有前途的分离株之间的差异，并有助于精确计算 LT50。但是，可以根据其他昆虫物种的不同生命周期来调整时间间隔，也可以通过小规模的预测试来确定。
虽然分离叶的方法可能会在叶盘上留下最少的蜜露，但由于叶盘非常接近，大部分蜜露会粘附在培养皿盖上。在观察期间可能会被擦拭或冲走。然而，当蚜虫入侵时，蜜露无疑存在于作物栽培的实际环境中32.接种室中存在的蜜露可能在某种程度上模拟了EPF接种到田间蚜虫中的情况。蚜虫角质层主要含有蜜露，蜜露是真菌的营养来源，并可能刺激 EPF16 的发芽。因此，EPF应用和蚜虫生产蜜露的结合可能是有利的。
为了确认蚜虫死亡是由于感染，通常将尸体从EPF接种室转移到潮湿的滤纸或培养基中，以观察真菌生长11,14,33,34。然而，在这项研究中，在接种室中使用水琼脂来保持高湿度，使蚜虫尸体能够留在叶子上，而无需移动以观察真菌生长。尽管分离叶法提供了关于EPF分离株的杀蚜作用的信息，但它仍然有局限性。用于维持叶盘状态的水琼脂会导致蚜虫在接种室中移动时卡住。为了解决这个问题，水琼脂的百分比增加到3%，为俄罗斯小麦蚜虫（Diuraphis noxia）提供了足够坚固的表面，可以在20上行走。在这个实验中，芥菜蚜虫能够在浓度为1.5%至3%的水琼脂表面上舒适地移动。然而，随着观察期的进行，一些蚜虫被倒挂在腿上，不得不被救回叶盘。这可能是由于蚜虫大小或迁移率的差异，表明仅增加琼脂浓度可能无法解决问题。因此，通过使用更贴合培养皿大小的叶子，确保叶盘完全覆盖琼脂表面，这有助于缓解这个问题。与 Yokomi 和 Gottwald18 描述的分离叶片方法相比，本研究通过使用与培养皿大致吻合的叶子大小，在一个方面进行了改进。这允许对食物消耗进行相对量化，并最大限度地减少暴露的琼脂表面。此外，叶子需要“嵌入”在半固化的水琼脂中，而在原始参考文献中，它被描述为“放置”在水琼脂18上。将叶盘嵌入水琼脂中可降低蚜虫粘附在琼脂表面的可能性，并便于观察，因为蚜虫被限制在一侧。
该协议提供了有关如何进行分离叶方法和EPF接种的详细说明，以及一些有助于操作，观察和一致结果的修改。它还建立了一种标准化方法，用于在实验室条件下选择EPF分离物来对抗植物吸食害虫。此外，对于EPF分离株的未来商业化，可以对已知的有效或市售产品进行标准检查。
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Disclosures
作者声明这项工作不涉及利益冲突。
Acknowledgments
这项研究得到了科学技术部 （MOST） 的 109-2313-B-005 -048 -MY3 的支持。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 10 μL Inoculating Loop | NEST Scientific | 718201 | |
| 100 bp DNA Ladder III | Geneaid | DL007 | |
| 2x SuperRed PCR Master Mix | Biotools | TE-SR01 | |
| 50 mL centrifuge tube | Bioman Scientific | ET5050-12 | |
| 6 cm Petri dish | Alpha Plus Scientific | 16021 | |
| 6 mm insect aspirator | MegaView Science | BA6001 | |
| 70 mm filter paper NO.1 | Toyo Roshi Kaisha | ||
| 70% ethanol | |||
| 9 cm Petri dish | Alpha Plus Scientific | 16001 | |
| Agar | Bioman Scientific | AGR001.1 | Microbiology grade |
| Agarose | Bioman Scientific | PB1200 | |
| BioGreen Safe DNA Gel Buffer | Bioman Scientific | SDB001T | |
| Chromas | Technelysium | ||
| GeneDoc | |||
| GenepHlow Gel/PCR Kit | Geneaid | DFH300 | https://www.geneaid.com/data/files/1605861013102532959.pdf |
| Gene-Spin Genomic DNA Isolation Kit | Protech Technology | PT-GD112-V3 | http://www.protech-bio.com/UserFiles/file/Gene-Spin%20Genomic%20DNA%20Kit.pdf |
| Hemocytometer | Paul Marienfeld | 640030 | |
| Komatsuna leaves (Brassica rapa var. perviridis) | Tai Cheng Farm | 1-010-300410 | |
| Microsprayer | |||
| MiniAmp Thermal Cycler | Thermo Fisher Scientific | A37834 | |
| Mustard aphid (Lipaphis erysimi) | |||
| Painting brush | Tian Cheng brush company | 4716608400352 | |
| Parafilm M | Bemis | PM-996 | |
| Pellet pestle | Bioman Scientific | GT100R | |
| Sabouraud Dextrose Broth | HiMedia | MH033-500G | |
| SPSS Statistics | IBM | ||
| TAE buffer 50x | Bioman Scientific | TAE501000 | |
| Tween 80 | PanReac AppliChem | 142050.1661 |
References
- Ghosh, S., Roy, A., Chatterjee, A., Sikdar, S. R. Effect of regional wind circulation and meteorological factors on long-range migration of mustard aphids over indo-gangetic plain. Scientific Reports. 9, 5626 (2019).
- Dhillon, M. K., Singh, N., Yadava, D. K. Preventable yield losses and management of mustard aphid, Lipaphis erysimi (Kaltenbach) in different cultivars of Brassica juncea(L.) Czern & Coss. Crop Protection. 161, 106070 (2022).
- Huang, F., Hao, Z., Yan, F. Influence of oilseed rape seed treatment with imidacloprid on survival, feeding behavior, and detoxifying enzymes of mustard aphid, lipaphis erysimi. Insects. 10 (5), 144 (2019).
- Mannino, M. C., Huarte-Bonnet, C., Davyt-Colo, B., Pedrini, N. Is the insect cuticle the only entry gate for fungal infection? insights into alternative modes of action of entomopathogenic fungi. Journal of Fungi. 5 (2), 33 (2019).
- Bamisile, B. S., Akutse, K. S., Siddiqui, J. A., Xu, Y. Model application of entomopathogenic fungi as alternatives to chemical pesticides: prospects, challenges, and insights for next-generation sustainable agriculture. Frontiers in Plant Science. 12, 741804 (2021).
- Scorsetti, A. C., Humber, R. A., Garcia, J. J., Lopez Lastra, C. C. Natural occurrence of entomopathogenic fungi (Zygomycetes: Entomophthorales) of aphid (Hemiptera: Aphididae) pests of horticultural crops in Argentina. Biocontrol. 52, 641-655 (2007).
- Liu, Y. C., Ni, N. T., Chang, J. C., Li, Y. H., Lee, M. R., Kim, J. S., et al. Isolation and selection of entomopathogenic fungi from soil samples and evaluation of fungal virulence against insect pests. Journal of Visualized Experiments. 175, e62882 (2021).
- Francis, F., Fingu-Mabola, J. C., Fekih, I. B. Direct and endophytic effects of fungal entomopathogens for sustainable aphid control: a review. Agriculture. 12 (12), 2081 (2022).
- Simon, J., Peccoud, J. Rapid evolution of aphid pests in agricultural environments. Current Opinion in Insect Science. 26, 17-24 (2018).
- Ujjan, A. A., Shahzad, S. Use of Entomopathogenic Fungi for the Control of Mustard Aphid (Lipaphis erysimi) on canola (Brassica napus L). Pakistan Journal of Botany. 44 (6), 2081-2086 (2012).
- Sajid, M., Bashir, N. H., Batool, Q., Munir, I., Bilal, M., Jamal, M. A., et al. In-vitro evaluation of biopesticides (Beauveria bassiana, Metarhizium anisopliae, Bacillus thuringiensis) against mustard aphid Lipaphis erysimi kalt. (Hemiptera: Aphididae). Journal of Entomology and Zoology Studies. 5 (6), 331-335 (2017).
- Paschapur, A. U., Subbanna, A. R. N. S., Singh, A. K., Jeevan, B., Stanley, J., Rajashekara, H., Mishra, K. K., Koti, P. S., Kant, L., Pattanayak, A. Alternaria alternata strain VLH1: a potential entomopathogenic fungus native to North Western Indian Himalayas. Egyptian Journal of Biological Pest Control. 32, 138 (2022).
- Miohammed, A. A. Lecanicillium muscarium and Adalia bipunctata combination for the control of black bean aphid, Aphis fabae. Biocontrol. 63, 277-287 (2018).
- Thaochan, N., Ngampongsai, A., Prabhakar, C. S., Hu, Q. Beauveria bassiana PSUB01 simultaneously displays biocontrol activity against Lipaphis erysimi (Kalt.) (Hemiptera: Aphididae) and promotes plant growth in Chinese kale under hydroponic growing conditions. Biocontrol Science and Technology. 31 (10), 997-1015 (2021).
- Mseddi, J., Farhat-Touzri, D. B., Azzouz, H. Selection and characterization of thermotolerant Beauveria bassiana isolates and with insecticidal activity against the cotton-melon aphid Aphis gossypii (Glover) (Hemiptera: Aphididae). Pest Management Science. 78 (6), 2183-2195 (2022).
- Butt, T. M., Ibrahim, L., Clark, S. J., Beckett, A. The germination behaviour of Metarhizium anisopliae on the surface of aphid and flea beetle cuticles. Mycological Research. 99 (8), 945-950 (1995).
- Ullah, S., Raza, A. B. M., Alkafafy, M., Sayed, S., Hamid, M. I., Majeed, M. Z., Riaz, M. A., Gaber, N. M., Asim, M. Isolation, identification and virulence of indigenous entomopathogenic fungal strains against the peach-potato aphid, Myzus persicae Sulzer (Hemiptera: Aphididae), and the fall armyworm, Spodoptera frugiperda (J.E. Smith) (Lepidoptera: Noctuidae). Egyptian Journal of Biological Pest Control. 32, 2 (2022).
- Yokomi, R. K., Gottwald, T. R. Virulence of Verticillium lecanii Isolates in Aphids Determined by Detached-leaf Bioassay. Journal of Inbertebrate Pathology. 51, 250-258 (1988).
- Vu, V. H., Hong, S. I., Kim, K. Selection of entomopathogenic fungi for aphid control. Journal of Bioscience and Bioengineering. 104 (6), 498-505 (2007).
- Vandenberg, J. D. Standardized bioassay and screening of beauveria bassiana and paecilomyces fumosoroseus against the russian wheat aphid (homoptera: aphididae). Journal of Economic Entomology. 89 (6), 1418-1423 (1996).
- Lu, W. N., Wu, Y. T., Kuo, M. H. Development of species-specific primers for the identification of aphids in Taiwan. Applied Entomology and Zoology. 43 (1), 91-96 (2008).
- Liu, Y. C., et al. Isolation and selection of entomopathogenic fungi from soil samples and evaluation of fungal virulence against insect pests. Journal of Visualized Experiments. 175, e62882 (2021).
- Menger, J., Beauzay, P., Chirumamilla, A., Dierks, C., Gavloski, J., Glogoza, P., et al. Implementation of a diagnostic-concentration bioassay for detection of susceptibility to pyrethroids in soybean aphid (hemiptera: aphididae). Journal of Economic Entomology. 113 (2), 932-939 (2020).
- Zhang, R., Chen, J., Jiang, L., Qiao, G. The genes expression difference between winged and wingless bird cherry-oat aphid Rhopalosiphum padi based on transcriptomic data. Scientific Reports. 9, 4754 (2019).
- Abbott, W. S. A method of computing the effectiveness of an insecticide. Journal of Economic Entomology. 18, 265-267 (1925).
- Liu, T. X., Sparks, A. N. Jr Aphids on Cruciferous Crops: Identification and Management. , Texas A&M AgriLife Extension Service. 9-11 (2001).
- Kuo, M., Chianglin, H. Temperature dependent life table of brevicoryne brassicae (l.)(hemiptera: aphididae) on radish. Formosan Entomologist. 27, 293-302 (2007).
- Im, Y., Park, S., Lee, S. Y., Kim, J., Kim, J. J. Early-Stage defense mechanism of the cotton aphid aphis gossypii against infection with the insect-killing fungus beauveria bassiana JEF-544. Frontiers in Immunology. 13, 907088 (2022).
- Kim, J. J., Roberts, D. W. The relationship between conidial dose, moulting and insect developmental stage on the susceptibility of cotton aphid, Aphis gossypii, to conidia of Lecanicillium attenuatum, an entomopathogenic fungus. Biocontrol Science and Technology. 22 (3), 319-331 (2012).
- Reingold, V., Kottakota, C., Birnbaum, N., Goldenberg, M., Lebedev, G., Ghanim, M., et al. Intraspecies variation ofMetarhiziumbrunneumagainst the green peach aphid,Myzus persicae, provides insight into thecomplexity of disease progression. Pest Management Science. 77, 2557-2567 (2021).
- Ortiz-Urquiza, A., Keyhani, N. O. Action on the Surface: entomopathogenic fungi versus the insect cuticle. Insects. 4, 357-374 (2013).
- Knodel, J. J., Beauzay, P., Boetel, M., Prochaska, T., Chirumamilla, A. 2022 North Dakota Field Crop Insect Management Guide. , 23 North Dakota State University Extension Publication: North Dakota, USA. (2021).
- Yeo, H., Pell, J. K., Alderson, P. G., Clark, S. J., Pye, B. J. Laboratory evaluation of temperature effects on the germination and growth of entomopathogenic fungi and on their pathogenicity to two aphid species. Pest Management Science. 59 (2), 156-165 (2003).
- Erdos, Z., Chandler, D., Bass, C., Raymond, B. Controlling insecticide resistant clones of the aphid, Myzus persicae, using the entomopathogenic fungus Akanthomyces muscarius: fitness cost of resistance under pathogen challenge. Pest Management Science. 77 (11), 5286-5293 (2021).
