-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
نمذجة عدوى فيروس زكى من وضع الدماغ البشري في المختبر باستخدام الخلايا الجذعية المشتقة من...
نمذجة عدوى فيروس زكى من وضع الدماغ البشري في المختبر باستخدام الخلايا الجذعية المشتقة من...
JoVE Journal
Neuroscience
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
Modelling Zika Virus Infection of the Developing Human Brain In Vitro Using Stem Cell Derived Cerebral Organoids

نمذجة عدوى فيروس زكى من وضع الدماغ البشري في المختبر باستخدام الخلايا الجذعية المشتقة من أورجانويدس الدماغي

Full Text
11,005 Views
09:18 min
September 19, 2017

DOI: 10.3791/56404-v

Max R Salick*1, Michael F Wells*2,3, Kevin Eggan2,3, Ajamete Kaykas1

1Department of Neuroscience,Novartis Institutes for BioMedical Research, 2Stanley Center for Psychiatric Research,Broad Institute of MIT and Harvard, 3Department of Stem Cell and Regenerative Biology and Harvard Stem Cell Institute,Harvard University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a protocol to model Zika virus infection in the developing human brain utilizing stem cell-derived organoids. Researchers aim to investigate which cells are susceptible to infection and the proteins involved in the infection pathway, providing insights into mechanisms of Zika virus infection and its link to microcephaly.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Virology
  • Stem Cell Biology

Background

  • Zika virus can lead to severe neurological disorders such as microcephaly in infected embryos.
  • Understanding the infection mechanisms is crucial for developing therapeutic interventions.
  • Stem cell-derived cerebral organoids serve as an effective model for early human brain development.
  • This study explores the advantages of high throughput assays and genetic techniques like CRISPR.

Purpose of Study

  • To model Zika virus infection in the developing human brain.
  • To identify infected cell types and explore the infection pathway.
  • To develop a platform for drug screening and understanding neurological impacts.

Methods Used

  • The study employs stem cell-derived cerebral organoids as the primary platform.
  • Stem cell lines are manipulated to produce organoids for infection studies.
  • No multiomics workflows are mentioned; focus is on cellular infection dynamics.
  • Key steps involve preparing organoid cultures, maintaining growth, and introducing viral infection.
  • Regular medium changes are performed to ensure optimal growth conditions throughout the experimental timeline.

Main Results

  • The protocol allows for observation of Zika virus infection mechanisms in organoids.
  • Initial assessments highlight cell infection pathways and response mechanisms.
  • Insights into cell differentiation and vulnerability to viral factors are gained.
  • The study provides foundational insights for future therapeutic evaluations against Zika virus.

Conclusions

  • This study enables detailed exploration of Zika virus impact on developing brains.
  • Understanding of infection mechanisms may inform future therapeutic strategies to combat viral effects on brain development.
  • Implications extend to broader investigations into neurodevelopmental disease models.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using stem cell-derived organoids?
Stem cell-derived organoids closely mimic human brain development and enable the study of virus interactions in a controlled environment, enhancing the relevance of findings.
How is Zika virus infection implemented in the organoid model?
Zika virus is introduced to the organoids after they have reached a specific growth stage, allowing researchers to study the infection process and its effects on brain development.
What types of data can be obtained from this study?
Researchers can gather data on cell viability, infection rates, and changes in molecular markers associated with Zika virus infection.
How can this method be adapted for drug screening?
The organoid model can be utilized to assess the efficacy of potential antiviral drugs that target Zika virus pathways by monitoring protective effects against infection.
What are some limitations of this study?
Limitations may include the complexity of mimicking the entire human brain environment and the potential variability in organoid responses to infection.
What implications does this study have for neuroscience?
This research enhances the understanding of viral impacts on brain development and could lead to improved therapeutic approaches for neurodevelopmental disorders.

ويصف هذا البروتوكول تقنية تستخدم لنموذج زكى الإصابة بعدوى الفيروس من الدماغ البشري. استخدام wildtype أو خطوط الخلايا الجذعية هندسيا، قد الباحثين استخدام هذه التقنية للكشف عن مختلف الآليات أو العلاجات التي قد تؤثر على الإصابة المبكرة بالدماغ وصغر الرأس الناتجة في الأجنة المصابة بالفيروس زكى.

الهدف العام من هذا الإجراء هو نمذجة عدوى فيروس زيكا في الدماغ البشري النامي باستخدام العضيات الدماغية المشتقة من الخلايا الجذعية. يمكن أن تساعد هذه الطريقة في الإجابة على الأسئلة الرئيسية في مجال علم الأحياء مثل الخلايا التي يمكن أن تصاب بالعدوى والبروتينات التي تشارك في مسار العدوى. تتمثل المزايا الرئيسية لهذه التقنية في أنها تحاكي العدوى البشرية المبكرة ، ويمكن استخدامها في فحوصات عالية الإنتاجية ويمكن دمجها مع التقنيات الجينية المركزة مثل كريسبر.

يمكن أن توفر هذه الطريقة نظرة ثاقبة حول آلية العدوى بفيروس زيكا. يمكن أيضا تطبيقه على أنظمة أخرى مثل شاشات الأدوية والتنميط الزائف للفيروسات. باستخدام طرق صيانة الخلايا الجذعية المنتظمة ، اجعل المزارع بين 50٪ و 70٪ ملتقية.

افحص الثقافات باستخدام الفحص المجهري للمجال الساطع بتكبير من 10 إلى 20 ضعفا وتأكد من أن المستعمرة لديها مورفولوجيا صحية بدون تمايز يمكن اكتشافه. قم بإحضار وسائط صيانة الخلايا الجذعية الخالية من xeno إلى 37 درجة مئوية في حمام ماء ساخن وقم بإذابة ملليلترين من كاشف الانفصال الأنزيمي وقارورة سعة 50 ميكرولتر من مثبط الصخور في درجة حرارة الغرفة. بعد ذلك، قم بإعداد لوحة بئر U السفلية 96 منخفضة للغاية وماصة p200 متعددة القنوات وخزان كاشف سعة 25 ملليلتر.

بعد ذلك ، قم بنقل 45 مل من الوسائط في أنبوب مخروطي سعة 50 مل. أضف 45 ميكرولترا من مثبط الصخور واخلطها في المثبط جيدا عن طريق ثلاثية الخليط ، متبوعا باثنين إلى أربعة في الإصدارات. قم بشفط بئرين من ستة آبار تحتوي على خلايا جذعية وأضف بسرعة ملليلترا واحدا من كاشف الانفصال الخالي من الإنزيم إلى كل بئر ، ثم احتضن اللوحة عند 37 درجة مئوية لمدة أربع دقائق.

بعد ذلك ، قم بشفط الآبار المعالجة بالفراغ وأضف ملليلترا واحدا من كاشف الانفصال الأنزيمي إلى كل بئر. بعد حضانة لمدة خمس دقائق عند 37 درجة مئوية ، قم بإزالة اللوحة من الحاضنة. اضغط برفق على اللوحة لتفتيت أي خلايا مجمعة.

بعد ذلك ، افحص الخلايا تحت المجهر. إذا كانت مجموعات الخلايا الكبيرة لا تزال مرئية ، فقم باحتضان اللوحة لمدة دقيقتين إضافيتين عند 37 درجة مئوية. كرر الخطوة حتى تختفي العناقيد بالعين المجردة.

بمجرد تفكك الخلايا بشكل صحيح ، أضف ملليلترا واحدا من وسائط صيانة الخلايا الجذعية الخالية من xeno إلى كل بئر ، لتعطيل إنزيمات التفكك. اسحب معلق الخلية إلى أنبوب مخروطي سعة 50 مليلتر وخذ كمية صغيرة لعد الخلايا. أثناء الطرد المركزي ، عد الخلايا وحدد حجم إعادة التعليق اللازم لتحقيق 60،000 خلية لكل تعليق مليلتر.

قم بإزالة المادة الطافية بعناية وأعد تعليق الخلايا عند 60،000 خلية لكل مليلتر في الوسائط التي تحتوي على مثبط الصخور. باستخدام ماصة سعة خمسة ملليلتر، امزج الخلايا برفق من خمس إلى 10 مرات لضمان تعليق خلوي موحد. أضف تعليق الخلية على الفور إلى خزان الكاشف واستخدم ماصة p200 متعددة القنوات لنقل 150 ميكرولترا إلى كل بئر من ملحق منخفض للغاية في أسفل لوحة البئر 96.

بعد ذلك ، قم بالطرد المركزي للوحة عند 150 × جم لمدة دقيقة واحدة ثم ضع اللوحة في حاضنة 37 درجة مئوية. لا تزعج اللوحة لمدة 48 ساعة. بدءا من اليوم الثاني ، قم بإعداد 17 مل من الوسائط التي تحتوي على 17 ميكرولترا من مثبط صخور المخزون في أنبوب مخروطي سعة 50 مل.

سخني الخليط إلى 37 درجة مئوية في حمام ماء ساخن. خذ الصفيحة العضوية من الحاضنة وباستخدام ماصة p200 متعددة القنوات ، اسحب ببطء 75 ميكرولترا من الوسط من حواف الآبار في الصف الأول. بعد ذلك ، قم بطرده بسرعة مرة أخرى في البئر لرفع الخلايا السائبة والعضيات.

كرر عملية التشتت هذه لكل صف. انتظر لمدة 15 ثانية للتأكد من أن العضيات قد غرقت في قاع كل بئر ثم قم بشفط 75 ميكرولترا من الوسط ببطء وبعناية من كل بئر باستخدام ماصة p200 متعددة القنوات وقم بتوزيعها في خزان النفايات. بعد ذلك ، قم بنقل الوسائط التي تحتوي على مثبط الصخور إلى خزان كاشف ، وقم بتوزيع 150 ميكرولتر من الوسائط في كل بئر عضوي ثم احتضان الخلايا عند 37 درجة مئوية.

قم بتسخين 17 مل من الثقافة الطازجة المتوسطة إلى 37 درجة مئوية ، هذه المرة بدون أي مثبط للصخور. باستخدام ماصة p200 متعددة القنوات مضبوطة على 100 ميكرولتر، كرر عملية التشتت الموضحة سابقا وانتظر 15 ثانية للتأكد من أن العضيات قد غرقت في قاع آبارها. بعد ذلك ، قم بشفط 125 ميكرولترا من الوسط بعناية من كل بئر واستبدلها ب 150 ميكرولتر من الوسائط الدافئة.

ضع اللوحة في حاضنة 37 درجة مئوية. قم بإعداد الوسيط وفقا للوصفة الموضحة هنا ثم قم بتصفية المحلول المختلط المعقم في مرشح سعة 500 مل. من اليوم الرابع حتى تصاب الخلايا في حوالي اليوم 24 ، قم بإجراء صيانة دورية كل يومين باستخدام وسيط الحث العصبي.

بمجرد التصفية ، قم بتسخين 17 مل من وسط الحث العصبي إلى 37 درجة مئوية وقم بتخزين الباقي عند أربع درجات مئوية. باستخدام ماصة p200 متعددة القنوات، مضبوطة على 100 ميكرولتر، قم بتفريق جميع آبار الصفيحة العضوية التي تم عرضها سابقا. انتظر 15 ثانية للتأكد من أن العضيات قد غرقت في قاع آبارها.

استنشق بعناية 125 ميكرولتر من الوسط من كل بئر واستبدلها ب 125 ميكرولتر من وسط الحث العصبي الجديد. كرر هذا العمل الفذ التحريضي العصبي كل يومين حتى تصبح العضيات جاهزة للعدوى بفيروس زيكا. أحضر محلول الملح المتوازن 1x من إيرل ، و 1x PBS ووسط الحث العصبي إلى 37 درجة مئوية في حمام ماء ساخن.

بعد ذلك ، قم بتخفيف فيروس زيكا بتركيز معروف في محلول إيرل 1x إلى التعدد المستهدف للعدوى ، والذي يتراوح عادة بين 0.1 و 10. باستخدام ماصة p200 ، قم بإزالة كل الوسائط بعناية من كل بئر عضوي. بعد ذلك ، اغسل العضيات بسرعة باستخدام 200 ميكرولتر من 1x PBS الدافئ.

عند إزالة الوسائط من كل بئر ، من الأهمية بمكان ألا يلمس المرء العضوي أو يمتصه في الماصة. هذا يمكن أن يسبب أضرارا لا يمكن إصلاحها للعضوية. إذا حدث هذا ، فمن الأفضل التخلص من العضوية.

بعد ذلك ، قم بإزالة كل السائل المتبقي بعناية من كل بئر عضوي باستخدام ماصة p200 أحادية القناة. بعد ذلك ، أضف بسرعة 50 ميكرولترا من محلول إيرل 1x لعدوى وهمية أو محلول فيروس زيكا لكل بئر. تأكد من غمر كل مادة عضوية بالكامل عند الانتهاء ، ضع اللوحة مرة أخرى في حاضنة 37 درجة مئوية لمدة ساعتين.

بعد اكتمال التعرض الفيروسي ، اغسل كل بئر من العضيات ب 200 ميكرولتر من PBS. اسمح للعضويات بالاستقرار لمدة 15 ثانية ثم قم بإزالة PBS باستخدام ماصة p200 أحادية القناة. أخيرا ، أضف 200 ميكرولتر من وسط الحث العصبي الطازج إلى كل بئر وضع اللوحة مرة أخرى في الحاضنة.

يمكن الجمع بين التلوين باستخدام DAPI و phospho-vimentin و TBR2 و MAP2 لإظهار الهياكل القشرية التي تتشكل داخل العضيات. تشمل هذه الهياكل المنطقة البطينية والمنطقة تحت البطينية والمنطقة المتوسطة والصفيحة القشرية داخل كل وردة. إن زراعة العضيات حتى اليوم 108 ، تسمح للمرء بمراقبة المراحل اللاحقة من التطور.

في حين أن الطبقات القشرية ليست بارزة في هذا النوع من العضيات ، إلا أن التحول الطبيعي إلى تكوين الخلايا الدبقية يحدث تماما كما يحدث في الجسم الحي. بعد ثلاثة أيام من الإصابة بفيروس زيكا ، يصبح الاختلاف في الحجم العضوي واضحا. يعتمد حجم هذا الاختلاف على تعدد الفيروسات للعدوى التي يتم تطبيقها على العضيات.

سيزداد هذا الاختلاف في حجم العضوية خلال الأسبوع التالي حتى تبدأ العضيات المصابة في التفكك. بعد ثلاثة أيام ، ستكون هناك أيضا زيادة في الحطام الخلوي في الآبار المصابة مقارنة بالآبار الوهمية. أثناء محاولة هذا الإجراء ، من المهم اتباع الممارسات المختبرية الآمنة حيث يتم استخدام المواد المعدية القابلة للحياة.

بعد هذا الإجراء ، يمكن إجراء طرق أخرى مثل الكيمياء المناعية أو RNAC من أجل الإجابة على أسئلة إضافية حول البيولوجيا التي تنطوي عليها عدوى فيروس زيكا النمائي العصبي.

Explore More Videos

علم الأعصاب العدد 127 Zika الفيروسات زيكف صعل أورجانويدس الدماغية والخلايا الجذعية والخلايا العصبية السلف النماء العصبي Axl و فيروسات مصفرة

Related Videos

طريقة في المختبر لتوليد عضيات الدماغ البشري

03:33

طريقة في المختبر لتوليد عضيات الدماغ البشري

Related Videos

776 Views

تطوير نموذج في المختبر لعدوى فيروس زيكا في العضيات الدماغية

02:47

تطوير نموذج في المختبر لعدوى فيروس زيكا في العضيات الدماغية

Related Videos

606 Views

إنشاء نموذج للتنكس العصبي الناجم عن فيروس زيكا في فأر بالغ

03:10

إنشاء نموذج للتنكس العصبي الناجم عن فيروس زيكا في فأر بالغ

Related Videos

479 Views

عدوى فيروس زيكا للخلايا الجذعية العصبية الجنينية

02:21

عدوى فيروس زيكا للخلايا الجذعية العصبية الجنينية

Related Videos

457 Views

زيكا الفيروسات نظام المعدية خلية الثقافة و في المختبر وقائية تأثير الانترفيرونات

09:11

زيكا الفيروسات نظام المعدية خلية الثقافة و في المختبر وقائية تأثير الانترفيرونات

Related Videos

21.4K Views

جيل المستمدة IPSC-Organoids الدماغ البشري لنموذج اضطرابات النمو العصبي في وقت مبكر

07:40

جيل المستمدة IPSC-Organoids الدماغ البشري لنموذج اضطرابات النمو العصبي في وقت مبكر

Related Videos

21.5K Views

إنشاء نماذج الماوس للاضطرابات العصبية التي يسببها فيروس Zika استخدام استراتيجيات حقن Intracerebral: الأجنة والأطفال حديثي الولادة والكبار

09:39

إنشاء نماذج الماوس للاضطرابات العصبية التي يسببها فيروس Zika استخدام استراتيجيات حقن Intracerebral: الأجنة والأطفال حديثي الولادة والكبار

Related Videos

9.1K Views

العدوى بفيروس زكى من الخلايا الجذعية العصبية في مخ الجنين البشري مثقف لتحليل إيمونوسيتوتشيميكال

10:27

العدوى بفيروس زكى من الخلايا الجذعية العصبية في مخ الجنين البشري مثقف لتحليل إيمونوسيتوتشيميكال

Related Videos

7K Views

توليد عضوي الدماغ من الخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات في المفاعلات الحيوية المصغرة المصنوعة منزليا

10:16

توليد عضوي الدماغ من الخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات في المفاعلات الحيوية المصغرة المصنوعة منزليا

Related Videos

6.6K Views

الحقن المجهري المستهدف والتثقيب الكهربائي للعضويات الدماغية الرئيسية للتعديل الوراثي

11:44

الحقن المجهري المستهدف والتثقيب الكهربائي للعضويات الدماغية الرئيسية للتعديل الوراثي

Related Videos

5K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code