-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
المعالجة الموحدة لضوابط الكيمياء الهيستولوجية المناعية لحبيبات الخلايا المثبتة بالفورمالين والبار...
المعالجة الموحدة لضوابط الكيمياء الهيستولوجية المناعية لحبيبات الخلايا المثبتة بالفورمالين والبار...
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
Standardized Processing for Formalin-Fixed, Paraffin-Embedded Cell Pellet Immunohistochemistry Controls

المعالجة الموحدة لضوابط الكيمياء الهيستولوجية المناعية لحبيبات الخلايا المثبتة بالفورمالين والبارافين

Full Text
9,699 Views
06:43 min
July 27, 2022

DOI: 10.3791/64276-v

Charles Havnar1, Kathy Hotzel1, Carmina Espiritu1, Amy Lo1, Joshua D. Webster1

1Department of Pathology,Genentech

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents a detailed protocol for generating formalin-fixed, paraffin-embedded cell pellet controls specifically for immunohistochemistry assays. The methodology is crucial for ensuring accurate characterization of binding specificity during new assay development.

Key Study Components

Research Area

  • Immunohistochemistry
  • Assay development
  • Biomarker characterization

Background

  • Importance of well-defined positive and negative controls in assay development
  • Use of fixed cell pellets to evaluate antibody specificity
  • Role of controls in therapeutic area research and biomarker discovery

Methods Used

  • Formalin fixation and paraffin embedding of cell pellets
  • Human 293T cell line
  • Immunolabeling and hybridization assays

Main Results

  • Successfully created standardized controls with uniform cell distribution
  • Demonstrated varying expression levels of the TEAD transcription factor
  • Facilitated comparative evaluation of controls using microarrays

Conclusions

  • Establishes the protocol as a reliable method for creating controls in immunohistochemistry
  • Enhances assay accuracy in evaluating minimally characterized proteins

Frequently Asked Questions

What are cell pellet controls used for?
Cell pellet controls are used to assess the specificity and reliability of immunohistochemistry assays.
How does fixation affect the quality of cell pellets?
Proper fixation ensures adequate preservation and distribution of cells, crucial for accurate assay results.
Can this protocol be applied to other cell lines?
Yes, the protocol can be adapted for different cell lines for various biomarker studies.
What is the significance of using both positive and negative controls?
Positive and negative controls help validate the specificity and efficacy of the assay being developed.
At what temperature should the agarose gel be mixed?
The hydroxyethyl agarose gel should be heated to 40 degrees Celsius before mixing with the cell pellet.
How can these cell pellet controls improve therapeutic development?
They provide a reliable standard for assessing biomarker expression, aiding in therapeutic discovery and validation.
Are there any applications outside immunohistochemistry?
Yes, these controls can also be utilized in NC2 hybridization assays and other similar applications.

يظهر هنا بروتوكول لتوليد ضوابط بيليه خلوية ثابتة بالفورمالين ومضمنة بالبارافين للكيمياء الهيستولوجية المناعية.

تعتبر ضوابط حبيبات الخلايا الإيجابية والسلبية المميزة جيدا مع مستويات محددة من البروتين أو التعبير النصي ضرورية لتطوير فحوصات الكيمياء الهيستولوجية المناعية. يصف هذا البروتوكول عملية لإنشاء ومعالجة أدوات التحكم في حبيبات الخلايا الثابتة المضمنة بالبارافين. يمكن استخدام هذه الضوابط لتوصيف خصوصية الربط أثناء تطوير مقايسة جديدة للكيمياء المناعية.

تعد فحوصات IHC ضرورية لجهودنا في الاكتشاف وتطوير العلامات الحيوية عبر المجالات العلاجية ، كما أن تطوير ضوابط تم التحقق من صحتها أمر ضروري لتطوير هذه المقايسات. من الضروري تسخين الجل القائم على هيدروكسي إيثيل أغاروز إلى 40 درجة مئوية على الأقل قبل إضافته إلى حبيبات الخلية. يجب خلط الجل جيدا مع الخلايا قبل التصلب.

ابدأ تثبيت حبيبات 293T-cell بإضافة 30 ملليلتر من الفورمالين المحايد بنسبة 10٪ إلى حبيبات خلية ثلاثة ملليلتر لإنشاء نسبة 10 إلى واحد مثبت إلى خلية. أعد تعليق الخلايا عن طريق قلب الأنبوب المغطى بإحكام سعة 50 ملليلتر بشكل متكرر ، واتركها تستقر طوال الليل في درجة حرارة الغرفة. لتحسين التثبيت ، قم بزيادة نسبة السطح إلى الحجم عن طريق قلب الأنبوب في اليوم التالي وإعادة تعليق الخلايا.

بعد 24 ساعة من التثبيت ، قم بطرد الأنبوب بالطرد المركزي عند 930 مرة G عند خمس درجات مئوية لمدة 10 إلى 15 دقيقة. تأكد من أن حبيبات الخلية مرئية, وقم بإزالة المثبت عن طريق صبها أو شفطها بعناية باستخدام ماصة نقل معقمة. أضف الجل القائم على هيدروكسي إيثيل أغاروز المنصهر عند 40 إلى 60 درجة مئوية إلى الحبيبات بنسبة واحد إلى أربعة هلام إلى بيليه خلية.

استخدم مسبارا نظيفا بطرف 5 بوصات وملليمترين مع شطف العين بماء الصنبور لتحريك محتوى الأنبوب المخروطي سعة 50 ملليلتر برفق ، مما يخلق تعليقا متساويا للخلايا الثابتة في الجل المنصهر في الأسفل. بعد تعليق الخلايا الثابتة بالتساوي في الجل المنصهر ، قم بتغطية أنبوب الوقائع وضعه على الثلج الرطب لمدة خمس إلى 10 دقائق. بمجرد أن تصلب حبيبات الجل, ضع بعناية ملعقة دقيقة نظيفة على طول جانب الأنبوب, واستفد من الحبيبات برفق دون ثقبها.

ضع الحبيبات الصلبة على ورق الخزعة. باستخدام ملعقة مجهرية نظيفة ، قم بقص حبيبات الخلية إلى شرائح بسمك أربعة إلى خمسة ملليمترات لتلائم شريط مناديل 26 ملم × 26 ملم × خمسة ملليمترات. ضع شرائح حبيبات الجل الفردية في وسط قطعة من ورق الخزعة.

قم بطي الوجهين المتقابلين ، ولف الشريحة بالورق قبل وضعها في علبة مناديل مقاس 26 × 26 × خمسة ملليمترات. أغلق الغطاء. ضع كاسيت الحبيبات ذو الخلايا المشذبة في معوجة معالج الأنسجة المملوءة بالفورمالين المخزن المحايد بنسبة 10٪ ، وقم بتشغيله وفقا لجدول معالجة قصير.

لتضمين حبيبات الخلية, ضع الكاسيتات المعالجة في منطقة الاحتفاظ بمركز التضمين. افتح غطاء كاسيت الأنسجة ، وافتح ورق الخزعة بعناية. ضع حبيبات الخلية في قالب تضمين صغير يمكن التخلص منه مقاس 15 × 15 ملم في جانب مقطوع لأسفل.

أثناء إمساك حبيبات الخلية برفق في قاع القالب بالملقط, أضف 62 درجة مئوية من تسلل الأنسجة أو تضمين البارافين في القالب, تغطية بيليه الخلية. انقل القالب إلى كتلة باردة لتصلب البارافين. اضبط حبيبات الخلية أثناء تصلب البارافين ، وقم بإصلاحه في الموضع المناسب في الجزء السفلي من القالب.

قم بإزالة الغطاء من الكاسيت. ضع الجانب السفلي من الكاسيت لأسفل أعلى قالب التضمين ، وأضف المزيد من البارافين المنصهر لتغطية الكاسيت. عندما يتم ملء البارافين فوق كاسيت الأنسجة ، أعد القالب إلى الكتلة الباردة للتصلب.

التقط أقسام البارافين المحضرة باستخدام الميكروتوم الدوار من حمام التعويم على شرائح موجبة الشحنة. ضع القسم الأول في الجزء العلوي من الشريحة داخل زلة الغطاء وحدود التلوين ، ثم ضع الأقسام التالية بشكل متسلسل كواحد أسفل الآخر. بمجرد الانتهاء من ذلك ، جفف الشرائح مبدئيا عند 23 درجة مئوية لمدة 24 ساعة ، ثم عند 60 درجة مئوية لمدة 30 دقيقة.

أظهرت حبيبات الخلية المدمجة التي تم إعدادها باستخدام هذه الطريقة توزيعا متساويا للخلايا في جميع أنحاء القسم ، مع الحد الأدنى من تكتل الخلايا والتفاعلات في الحبيبات. عندما تم تصور الوسم المناعي باستخدام ثنائي أمينو البنزين البني ، لوحظ الكروموجين وثلاثة خطوط خلوية مستويات مختلفة من تعبير عامل النسخ TEAD في النواة ، تتراوح من لا ، إلى ضعيف ، إلى التعبير القوي. سمح دمج كريات الخلية في مصفوفة دقيقة بتقييم عناصر التحكم بمستويات تعبير مختلفة في نفس الشريحة دون اختلاف في الإجراءات.

كما هو موضح في هذا المثال ، يمكن رؤية التحكم السلبي في الخلايا الجذعية الجنينية للفأر PEG 10 والتحكم الإيجابي في 293 خلية تائية تفرط في التعبير عن PEG 10. إن ضمان تثبيت الخلايا بشكل كاف وتوزيعها بشكل متجانس في جميع أنحاء حبيبات الهلام يخلق تحكما موحدا موحدا في المقايسة. يمكن استخدام كريات الخلايا كعناصر تحكم في الكيمياء المناعية النهائية ومقايسات تهجين NC2 مع طرق استرجاع المستضد ووضع العلامات القياسية.

مكنت ضوابط الحبيبات الخلوية من تطوير العديد من فحوصات الكيمياء الهيستولوجية المناعية ، خاصة بالنسبة للبروتينات الجديدة أو ذات الحد الأدنى من المواصفات. إنها بمثابة ضوابط محددة جيدا يمكن أن تساعد في توصيف خصوصية الأجسام المضادة.

Explore More Videos

علم الأحياء العدد 185

Related Videos

الحفاظ على أنسجة البارافين المدمجة بالفورمالين (FFPE): طريقة لدراسة مورفولوجيا الأنسجة

04:17

الحفاظ على أنسجة البارافين المدمجة بالفورمالين (FFPE): طريقة لدراسة مورفولوجيا الأنسجة

Related Videos

4.4K Views

العزلة من الدم والأوعية المشتقة متعددة القدرات السلائف من العضلات الهيكلية البشرية

10:52

العزلة من الدم والأوعية المشتقة متعددة القدرات السلائف من العضلات الهيكلية البشرية

Related Videos

12.2K Views

تحديد مستوى التعبير البروتين في الخلايا المستزرعة إيمونوسيتوتشيميستري في كتل الخلايا جزءا لا يتجزأ من البارافين

09:06

تحديد مستوى التعبير البروتين في الخلايا المستزرعة إيمونوسيتوتشيميستري في كتل الخلايا جزءا لا يتجزأ من البارافين

Related Videos

12.1K Views

إيمونوبلوتينج كمية من خطوط الخلايا كمعيار للتحقق من صحة الفلورة للتحديد الكمي للعلامات البيولوجية البروتينات في عينات الأنسجة الروتينية

09:58

إيمونوبلوتينج كمية من خطوط الخلايا كمعيار للتحقق من صحة الفلورة للتحديد الكمي للعلامات البيولوجية البروتينات في عينات الأنسجة الروتينية

Related Videos

9.3K Views

إعداد الأنسجة وتلطيخ المناعة من أنسجة الفئران القحفية والعظام غير الصائق

10:03

إعداد الأنسجة وتلطيخ المناعة من أنسجة الفئران القحفية والعظام غير الصائق

Related Videos

13.5K Views

ضوابط المستضدات الاصطناعية للكيمياء النسيجية المناعية

09:30

ضوابط المستضدات الاصطناعية للكيمياء النسيجية المناعية

Related Videos

3K Views

تحليل صورة التشفير الشريطي المتعدد للتنميط المناعي وتوصيف الخرائط المكانية في تحليل الخلية الواحدة لعينات أنسجة البارافين

08:18

تحليل صورة التشفير الشريطي المتعدد للتنميط المناعي وتوصيف الخرائط المكانية في تحليل الخلية الواحدة لعينات أنسجة البارافين

Related Videos

2.2K Views

تلطيخ الكيمياء الهيستولوجية المناعية المتعددة لأنسجة سرطان الرئة المضمنة في البارافين

05:00

تلطيخ الكيمياء الهيستولوجية المناعية المتعددة لأنسجة سرطان الرئة المضمنة في البارافين

Related Videos

2.9K Views

بروتوكول محسن للرولز السويسرية المعوية وتلطيخ الفلورسنت المناعي للأنسجة المدمجة في البارافين

08:25

بروتوكول محسن للرولز السويسرية المعوية وتلطيخ الفلورسنت المناعي للأنسجة المدمجة في البارافين

Related Videos

7.2K Views

Sectioning رقيقة من الاستعدادات لشريحة المناعية

08:12

Sectioning رقيقة من الاستعدادات لشريحة المناعية

Related Videos

33.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code