RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ar
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/64276-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
This article presents a detailed protocol for generating formalin-fixed, paraffin-embedded cell pellet controls specifically for immunohistochemistry assays. The methodology is crucial for ensuring accurate characterization of binding specificity during new assay development.
يظهر هنا بروتوكول لتوليد ضوابط بيليه خلوية ثابتة بالفورمالين ومضمنة بالبارافين للكيمياء الهيستولوجية المناعية.
تعتبر ضوابط حبيبات الخلايا الإيجابية والسلبية المميزة جيدا مع مستويات محددة من البروتين أو التعبير النصي ضرورية لتطوير فحوصات الكيمياء الهيستولوجية المناعية. يصف هذا البروتوكول عملية لإنشاء ومعالجة أدوات التحكم في حبيبات الخلايا الثابتة المضمنة بالبارافين. يمكن استخدام هذه الضوابط لتوصيف خصوصية الربط أثناء تطوير مقايسة جديدة للكيمياء المناعية.
تعد فحوصات IHC ضرورية لجهودنا في الاكتشاف وتطوير العلامات الحيوية عبر المجالات العلاجية ، كما أن تطوير ضوابط تم التحقق من صحتها أمر ضروري لتطوير هذه المقايسات. من الضروري تسخين الجل القائم على هيدروكسي إيثيل أغاروز إلى 40 درجة مئوية على الأقل قبل إضافته إلى حبيبات الخلية. يجب خلط الجل جيدا مع الخلايا قبل التصلب.
ابدأ تثبيت حبيبات 293T-cell بإضافة 30 ملليلتر من الفورمالين المحايد بنسبة 10٪ إلى حبيبات خلية ثلاثة ملليلتر لإنشاء نسبة 10 إلى واحد مثبت إلى خلية. أعد تعليق الخلايا عن طريق قلب الأنبوب المغطى بإحكام سعة 50 ملليلتر بشكل متكرر ، واتركها تستقر طوال الليل في درجة حرارة الغرفة. لتحسين التثبيت ، قم بزيادة نسبة السطح إلى الحجم عن طريق قلب الأنبوب في اليوم التالي وإعادة تعليق الخلايا.
بعد 24 ساعة من التثبيت ، قم بطرد الأنبوب بالطرد المركزي عند 930 مرة G عند خمس درجات مئوية لمدة 10 إلى 15 دقيقة. تأكد من أن حبيبات الخلية مرئية, وقم بإزالة المثبت عن طريق صبها أو شفطها بعناية باستخدام ماصة نقل معقمة. أضف الجل القائم على هيدروكسي إيثيل أغاروز المنصهر عند 40 إلى 60 درجة مئوية إلى الحبيبات بنسبة واحد إلى أربعة هلام إلى بيليه خلية.
استخدم مسبارا نظيفا بطرف 5 بوصات وملليمترين مع شطف العين بماء الصنبور لتحريك محتوى الأنبوب المخروطي سعة 50 ملليلتر برفق ، مما يخلق تعليقا متساويا للخلايا الثابتة في الجل المنصهر في الأسفل. بعد تعليق الخلايا الثابتة بالتساوي في الجل المنصهر ، قم بتغطية أنبوب الوقائع وضعه على الثلج الرطب لمدة خمس إلى 10 دقائق. بمجرد أن تصلب حبيبات الجل, ضع بعناية ملعقة دقيقة نظيفة على طول جانب الأنبوب, واستفد من الحبيبات برفق دون ثقبها.
ضع الحبيبات الصلبة على ورق الخزعة. باستخدام ملعقة مجهرية نظيفة ، قم بقص حبيبات الخلية إلى شرائح بسمك أربعة إلى خمسة ملليمترات لتلائم شريط مناديل 26 ملم × 26 ملم × خمسة ملليمترات. ضع شرائح حبيبات الجل الفردية في وسط قطعة من ورق الخزعة.
قم بطي الوجهين المتقابلين ، ولف الشريحة بالورق قبل وضعها في علبة مناديل مقاس 26 × 26 × خمسة ملليمترات. أغلق الغطاء. ضع كاسيت الحبيبات ذو الخلايا المشذبة في معوجة معالج الأنسجة المملوءة بالفورمالين المخزن المحايد بنسبة 10٪ ، وقم بتشغيله وفقا لجدول معالجة قصير.
لتضمين حبيبات الخلية, ضع الكاسيتات المعالجة في منطقة الاحتفاظ بمركز التضمين. افتح غطاء كاسيت الأنسجة ، وافتح ورق الخزعة بعناية. ضع حبيبات الخلية في قالب تضمين صغير يمكن التخلص منه مقاس 15 × 15 ملم في جانب مقطوع لأسفل.
أثناء إمساك حبيبات الخلية برفق في قاع القالب بالملقط, أضف 62 درجة مئوية من تسلل الأنسجة أو تضمين البارافين في القالب, تغطية بيليه الخلية. انقل القالب إلى كتلة باردة لتصلب البارافين. اضبط حبيبات الخلية أثناء تصلب البارافين ، وقم بإصلاحه في الموضع المناسب في الجزء السفلي من القالب.
قم بإزالة الغطاء من الكاسيت. ضع الجانب السفلي من الكاسيت لأسفل أعلى قالب التضمين ، وأضف المزيد من البارافين المنصهر لتغطية الكاسيت. عندما يتم ملء البارافين فوق كاسيت الأنسجة ، أعد القالب إلى الكتلة الباردة للتصلب.
التقط أقسام البارافين المحضرة باستخدام الميكروتوم الدوار من حمام التعويم على شرائح موجبة الشحنة. ضع القسم الأول في الجزء العلوي من الشريحة داخل زلة الغطاء وحدود التلوين ، ثم ضع الأقسام التالية بشكل متسلسل كواحد أسفل الآخر. بمجرد الانتهاء من ذلك ، جفف الشرائح مبدئيا عند 23 درجة مئوية لمدة 24 ساعة ، ثم عند 60 درجة مئوية لمدة 30 دقيقة.
أظهرت حبيبات الخلية المدمجة التي تم إعدادها باستخدام هذه الطريقة توزيعا متساويا للخلايا في جميع أنحاء القسم ، مع الحد الأدنى من تكتل الخلايا والتفاعلات في الحبيبات. عندما تم تصور الوسم المناعي باستخدام ثنائي أمينو البنزين البني ، لوحظ الكروموجين وثلاثة خطوط خلوية مستويات مختلفة من تعبير عامل النسخ TEAD في النواة ، تتراوح من لا ، إلى ضعيف ، إلى التعبير القوي. سمح دمج كريات الخلية في مصفوفة دقيقة بتقييم عناصر التحكم بمستويات تعبير مختلفة في نفس الشريحة دون اختلاف في الإجراءات.
كما هو موضح في هذا المثال ، يمكن رؤية التحكم السلبي في الخلايا الجذعية الجنينية للفأر PEG 10 والتحكم الإيجابي في 293 خلية تائية تفرط في التعبير عن PEG 10. إن ضمان تثبيت الخلايا بشكل كاف وتوزيعها بشكل متجانس في جميع أنحاء حبيبات الهلام يخلق تحكما موحدا موحدا في المقايسة. يمكن استخدام كريات الخلايا كعناصر تحكم في الكيمياء المناعية النهائية ومقايسات تهجين NC2 مع طرق استرجاع المستضد ووضع العلامات القياسية.
مكنت ضوابط الحبيبات الخلوية من تطوير العديد من فحوصات الكيمياء الهيستولوجية المناعية ، خاصة بالنسبة للبروتينات الجديدة أو ذات الحد الأدنى من المواصفات. إنها بمثابة ضوابط محددة جيدا يمكن أن تساعد في توصيف خصوصية الأجسام المضادة.
Related Videos
04:17
Related Videos
4.4K Views
10:52
Related Videos
12.2K Views
09:06
Related Videos
12.1K Views
09:58
Related Videos
9.3K Views
10:03
Related Videos
13.5K Views
09:30
Related Videos
3K Views
08:18
Related Videos
2.2K Views
05:00
Related Videos
2.9K Views
08:25
Related Videos
7.2K Views
08:12
Related Videos
33.6K Views