需要JoVE订阅才能观看此内容。 请登录或开始免费试用

方法文章

制备鸡胚提取物以培养小鼠神经嵴干细胞

12.8K 次观看

DOI:

10.3791/2380

2010年11月27日

* These authors contributed equally

本文内容

摘要

体外培养神经嵴干细胞(NCSC)需要使用特殊的培养基(NCSCM)。NCSCM的关键成分是鸡胚提取物(CEE)。本文详细描述了制备最大产量的高纯度、高质量CEE的准确技术,包括分离、匀浆、离心和过滤等步骤的具体操作细节。

摘要

神经嵴在胚胎发生过程中起源于神经外胚层,且仅暂时存在。早期实验已证实,多能前体细胞是神经嵴的重要组成部分。1表型上,神经嵴干细胞(NCSC)在其从神经嵴迁移过程中,通过同时表达 p75(低亲和力神经生长因子受体,LNGFR)和 SOX10 进行定义。2,3,4,5这些前体细胞可分化为平滑肌细胞、嗜铬细胞、神经元和胶质细胞,以及黑色素细胞、软骨和骨6,7,8,9. 培养NCSC 体外需要一种特殊的神经嵴干细胞培养基(NCSCM)10NCSCM 中最复杂的部分是鸡胚提取物(CEE)的制备,CEE 是神经嵴干细胞(NCSC)以及其他类型神经外植体所需生长因子的重要来源。除 CEE 外,NCSCM 的其他成分均可从商业途径获得。使用实验室常规设备制备 CEE 时,了解分离、研磨、离心和过滤等关键步骤中的技术难点至关重要。本方案中,我们详细描述了获得最大产量且高纯度、高质量 CEE 的精确技术。

方案

作者声明,动物实验严格遵循欧洲共同体理事会指令(86/609/EEC),并依照美国国立卫生研究院(NIH)关于实验操作中动物护理与使用的指南,以及德国杜伊斯堡-埃森大学机构动物护理与使用委员会(IACUC)所制定的规定进行。

第1部分:准备工作(视频中未展示)

准备材料与溶液(在将卵从培养箱中取出之前)

  • 鸡蛋需在37°C(100°F)的加湿培养箱中孵育11天。
  • 70%乙醇喷雾、洁净培养皿、精密洁净镊子、置于冰上的4°C(40°F)无菌DMEM培养基,以及60 mL无菌注射器
  • 需将50 mL无菌Corning离心管装入一半体积的4°C冷DMEM培养基,用于以1:1的比例(匀浆组织:DMEM)混合匀浆后的胚胎。一旦将鸡蛋从培养箱中取出,应立即开始鸡胚解剖。
  • 解剖工具须通过高压灭菌器灭菌,或在解剖当天将工具浸入70%乙醇中20分钟。

第2部分:鸡胚胎的解剖(视频演示)

  1. 用70%乙醇喷雾湿润已孵育的鸡蛋,至少持续30秒,并用洁净的软纸巾小心擦干,注意不要过度摇晃鸡蛋。
    注意:建议同时解剖的鸡胚不超过60个。
  2. 通过将蛋壳轻击锋利边缘小心打开,谨慎取出胚胎,避免破坏卵黄囊或鸡胚本身。
  3. 迅速找到脐带起始位置,小心撕开透明包裹膜,避免损伤卵黄囊或细小血管,然后使用精确洁净的镊子解剖脐带。
  4. 将胚胎从卵黄囊中取出。
    注意:应迅速将胚胎断头处理(视频中未展示)。
  5. 将胚胎收集至4°C的最低必需培养基中。

第3部分:鸡胚胎的解离

  1. 从一个 60 mL 无菌注射器中取出活塞。
  2. 将约 10 个胚胎转移至一个 60 mL 注射器中。
  3. 小心地将活塞重新插入注射器,以免损失匀浆材料。
  4. 通过下压活塞进行匀浆处理。
  5. 将匀浆后的组织收集到预先准备好的 Corning 管中,管内已加入半满的 DMEM,匀浆物与 DMEM 的体积比为 1:1。使用 10 个胚胎时,可获得约 25 mL 的混合液。
  6. 将混合液置于摇床中,在 4°C 下振荡 45 分钟。

第4部分:鸡胚-DMEM悬浮液的离心

  1. 将鸡胚-DMEM悬浮液转移至离心管中。
  2. 加入无菌透明质酸酶,浓度为每25 mg胚胎加入1 mg。
  3. 精确去皮重离心管。
    注意:此步骤需谨慎操作,因离心过程使用极高的离心力,若使用不平衡的离心管,可能导致材料或离心机损坏。应使用高精度天平,通过向DMEM中添加缺失的量,使所有离心管在小数点后三位数值上保持一致。
  4. 将离心机温度降至4°C。
    注意:离心转子也应于前一晚存放于冷藏室或冰箱中。
  5. 至少离心6小时,离心力为180,000 × g × h。注意:为获得更优的各相分离效果,建议使用266,000 × g × h。如条件允许,使用真空调节功能。

第5部分:鸡胚提取物的过滤

离心后可见三个相:上层为含有脂肪碎片的浑浊液体,中间为澄清的液体相,底部为离心管中的沉淀。注意:必须严格避免摇动或剧烈移动离心后的混合物,否则会导致中间澄清液体相丢失,从而破坏离心步骤的结果。

注意:以下所有步骤均须在层流空气净化台内无菌条件下进行:

  1. 用移液器将澄清的液体相转移至孔径为 0.45 μm 的滤器系统中,然后开启连接的真空泵。
    注意:切勿触碰底部的沉淀物,否则会导致提取物污染以及滤器系统堵塞。
  2. 将预提取液转移至孔径为 0.22 μm 的滤器系统中,并再次开启连接的真空泵。
  3. 将获得的鸡胚提取液分装至无菌的 15 mL Corning 管中。
  4. 迅速将分装样品储存于 -80°C (-62°F)。注意:若保存在 -80°C,CEE 可稳定保存长达两年。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

讨论

本方案基于以往报道过的实验方法的改进10,11。与先前发表的文献相比,本文更详细地展示了该流程的各个独立步骤,有助于实验人员掌握关键细节,确保操作正确并获得可靠的结果。此外,由于解剖过程是鸡胚提取(CEE)的关键环节,本文对从卵黄囊中取出胚胎的操作进行了详尽描述。以下将讨论若干需要注意的重要事项。

孵化结束后应尽快开始鸡胚的解剖。解剖前已死亡的胚胎不得用于本方案的任何步骤,因为酶的激活和蛋白质降解可能对结果产生不利影响。

在开始之前,应进行一些动手训练,因为解剖过程的每一步都必须快速且准确地完成。为确保整个操作的成功,必须避免卵黄污染,因为卵黄含有大量具有显著负干扰作用的蛋白质。胚胎从卵黄囊中取出后,应迅速进行去头处理(视频中未展示)。

离心机的温度以及转子的转速也非常重要。为避免酶被激活以及NCSCM所需因子在质和量上的减少,应将离心机和转子的温度降至4°C。离心步骤完成后,上清液中央透明的液体层即为关键的预提取物,其中含有NCSCM所需的关...

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

致谢

Markus Pajtler 和 Robert Bohrer 在本实验方案的可视化方面提供的支持与建议极为宝贵。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
孵化11天的鸡胚Sorries-Trockels Vermehrungszucht GmbH
酒精消毒喷雾Schülke Mayr GmbH
DMEMGlutamaxGIBCO, by Life Technologies
无菌注射器(60 ml)BD Biosciences
无菌离心管(50 ml;15 ml)Greiner Bio-One
无菌移液器吸头Starlab GmbH
透明质酸酶 IV-S 型Sigma-Aldrich
Millipore 无菌滤器(0.45;0.22 μl)Fisher Scientific
无菌移液管(25 ml;10 ml;5 ml)Greiner Bio-One
离心机 L5-50转子型号 Ti-45

参考文献

  1. Bronner-Fraser, M., Fraser, S. E. Cell lineage analysis reveals multipotency of some avian neural crest cells. Nature. 335, 161-164 (1988).
  2. Stemple, D. L., Anderson, D. J. Isolation of a stem cell for neurons and glia from the mammalian neural crest. Cell. 71, 973-985 (1992).
  3. Rao, M. S., Anderson, D. J. Immortalization and controlled in vitro differentiation of murine multipotent neural crest stem cells. J Neurobiol. 32, 722-746 (1997).
  4. Paratore, C., Goerich, D. E., Suter, U., Wegner, M., Sommer, L. Survival and glial fate acquisition of neural crest cells are regulated by an interplay between the transcription factor Sox10 and extrinsic combinatorial signaling. Cell. 128, 3949-3961 (2001).
  5. Kim, J., Lo, L., Dormand, E., Anderson, D. J. SOX10 maintains multipotency and inhibits neuronal differentiation of neural crest stem cells. Neuron. 38, 17-31 (2003).
  6. Anderson, D. J., Groves, A., Lo, L., Ma, Q., Rao, M., Shah, N. M., Sommer, L. Cell lineage determination and the control of neuronal identity in the neural crest. Review Cold Spring Harb Symp Quant Biol. 62, 493-504 (1997).
  7. Dorsky, R. I., Moon, R. T., Raible, D. W. Environmental signals and cell fate specification in premigratory neural crest. Review Bioessays. 22, 708-716 (2000).
  8. Sieber-Blum, M. Factors controlling lineage specification in the neural crest. Int Rev Cytol. 197, 1-33 (2000).
  9. Dupin, E., Real, C., Ledouarin, N. The neural crest stem cells: control of neural crest cell fate and plasticity by endothelin-3. Int Rev Cytol. 73, 533-545 (2001).
  10. Maurer, J., Fuchs, S., Jäger, R., Kurz, B., Sommer, L., Schorle, H. Establishment and controlled differentiation of neural crest stem cell lines using conditional transgenesis. Differentiation. 75, 890-891 (2007).
  11. Wu, Y. Y., Mujtaba, T., Rao, M. S. Isolation of stem and precursor cells from fetal tissue. Methods Mol Biol. 198, 29-40 (2002).

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

重印与许可

标签

DMEM