Waiting
登录处理中...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Developmental Biology

הפרדת תאים זקיקים וביצים בזקיקי השחלות של זברהפיש

Published: April 18, 2021 doi: 10.3791/62027

Summary

כאן, אנו מציגים שיטה פשוטה להפרדת תאים זקיקיים וביצית בזקיקים השחלות זברה, אשר יקל על חקירות של התפתחות השחלות ב זברה.

Abstract

זברה-פיש הפך למודל אידיאלי לחקר התפתחות השחלות של בעלי חוליות. הזקיק הוא היחידה הבסיסית של השחלה, המורכבת ביציות ותאי זקיקים שמסביב. חיוני להפריד הן תאים זקיקיים והן ביציות למטרות מחקר שונות כגון לתרבות ראשונית של תאים זקיקיים, ניתוח ביטוי גנים, התבגרות ביציות והפריה חוץ גופית וכו '. השיטה המקובלת משתמשת במלקחיים כדי להפריד בין שני התאים, שהם מייגעים, גוזלים זמן רב ויש להם נזק גבוה לבית החרמש. כאן, הקמנו שיטה פשוטה להפריד בין שני התאים באמצעות נימי זכוכית משוכים. תחת סטריאומיקרוסקופ, ביציות ותאי זקיק ניתן להפריד בקלות על ידי pipetting נימי זכוכית דק משך (הקוטר תלוי בקוטר זקיק). בהשוואה לשיטה המקובלת, שיטה חדשה זו יש יעילות גבוהה בהפרדת ביציות ותאים זקיקים ויש לו נזק נמוך ביציות. חשוב מכך, שיטה זו יכולה להיות מיושמת על זקיקים בשלב מוקדם כולל בשלב טרום vitellogenesis. לכן, שיטה פשוטה זו יכולה לשמש כדי להפריד תאים זקיקים וביציטים של זברה.

Introduction

זברהפיש הוא אורגניזם מודל מרכזי לחקר התפתחות בעלי חוליות ופיזיולוגיה. דג הזברה יכול לשמש מודל טוב לחקר המנגנונים המולקולריים של התפתחות השחלות1,2,3. תכונות רבות של התפתחות השחלות נשמרות הרבה במהלך האבולוציה מדגים ליונקים1,2. בדומה בעלי חוליות אחרים, מבוגרים זברה יש שחלות אסינכרוניות, המכיל זקיקי השחלות של כל השלבים ההתפתחותיים4. הזקיק הוא מרכיב הרבייה הבסיסי של השחלה. הזקיק מורכב מן ביצית כי הוא מוקף אחד או כמה שכבות של תאים סומטיים הנקראים תאים זקיקים. התפתחות הזקיקים תלויה בתקשורת הדו-כיוונית בין ביציות לתאים זקיקיים5. חיוני להפריד תאים זקיקים וביצים מזקיקים בשחלות למטרות מחקר שונות כגון תרבות ראשונית של תאים זקיקים, ניתוח ביטוי גנים, התבגרות ביציות והפריה חוץ גופית.

שיטות ההפרדה המסורתיות כוללות הפרדה מכנית על ידי מלקחיים ועיכול אנזימטי6,7,8,9,10. עם זאת, ההפרדה המכנית על ידי מלקחיים היא זמן רב ומייגע. זה גם יגרום לנזק גבוה ביצית במהלך ההפרדה. למרות ששיטת עיכול האנזים פשוטה לתפעול ודורשת זמן קצר, יש לאמת את זמן הטיפול ואת ריכוז האנזימים, ושיעור השלמות וההישרדות של ביציות מבודדות אינם אידיאליים. לכן, הקמנו שיטה פשוטה להפריד בין שני התאים בשלבים התפתחותיים שונים באמצעות צינורות נימי זכוכית משוכים.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

כל ההליכים המבוצעים בניסויי דגים הם בהתאם לתקנות ועדת האתיקה לניסויים בבעלי חיים של האוניברסיטה הנורמלית הצפון-מערבית.

1. הכנות

  1. חיות
    1. השתמש זברה נקבה בוגרת עם אורך גוף של 4-6 ס"מ.
      הערה: השתמשנו בזברהפיש משוק מקומי.
    2. שמור את דג הזברה במערכת מים מופצת עם אור 14 שעות ו 10 שעות מחזור כהה על 28 מעלות צלזיוס.
    3. להאכיל דגים פעמיים ביום עם שרימפס מלח שבקע לאחרונה.
  2. נימי זכוכית משוכיים
    1. השתמש נימי זכוכית 15 ס"מ ומניחים את ראשו מבער אלכוהול כדי לחמם אותו. החזק קצה אחד של נימי זכוכית ביד והחזק את הקצה השני עם מלקחיים.
    2. לאחר חימום 5-10 שניות, הזכוכית על האש של מבער אלכוהול להיות אדום ורך. למתוח את הראש של נימי זכוכית עם מלקחיים כדי להפוך את הפתיחה נימי עם קוטר נדרש.
      הערה: הקוטר תלוי קטרים זקיק: previtellogenic (PV; קוטר של כ-0.30 מ"מ), ויטלוגני מוקדם (EV; קוטר של כ-0.40 מ"מ), מידוויטלוגני (MV; קוטר של כ-0.50 מ"מ), ויטלוגני מאוחר (קוטר של כ-0.60 מ"מ) וקוטרו מלא אך לא בוגר (FG; קוטר של כ-0.65 מ"מ).
    3. למתוח את הפתיחה של נימי זכוכית לקוטר המתאים, שהוא מעט קטן יותר בגודל של זקיקים מופרדים. נימי הזכוכית עם פתח גדול בהרבה מגודל זקיקי השחלות אינם יכולים לבצע הפרדה, אך הקטנים בהרבה ישברו את הזקיקים במהלך ההפרדה. תרגול מתיחה של נימי זכוכית מספר פעמים.
      הערה: זמן החימום תלוי בגודל נימי הזכוכית. אין למתוח ישירות את נימי הזכוכית על האש של מבער אלכוהול. זה ישבור את נימי הזכוכית.
    4. חותכים את נימי הזכוכית עם חותך אמפולה ולשבור את נימי זכוכית עם מלקחיים כדי לקבל חתך חלק.
      הערה: פתח חד או שבור של נימי הזכוכית יפגע בזקיקים.
    5. באמצעות צינור פלסטיק 30 ס"מ, להכניס קצה פיפטה 1 מ"ל עם אלמנט מסנן בקצה אחד, להכניס את נימי זכוכית משך בסוף פיפטה, ולחבר קצה פיפטה 200 μL בקצה אחר.

2. הפרדת ביציות זברה ותאי זקיק בשלבים שונים

  1. ניתוח השחלה של דג הזברה
    1. ממלאים דלי קרח עד 4/5 מלא בקרח תרחיף ומוסיפים מספיק מי דגים כדי לאפשר לקרח תרחיף לצוף. המתן 2-5 דקות, בדוק את טמפרטורת המים, וודא שהטמפרטורה היא בין 2-4 מעלות צלזיוס.
    2. יש להנשים נקבות בוגרות על ידי הנחת דגים במי הקרח למשך 2-5 דקות לפחות, עד שהדגים יפסיקו את תנועת הזימים. ערפו את ראשם של הדגים על ידי ניתוק חוט השדרה באמצעות מספריים חדים כדי להבטיח את המוות.
    3. מניחים את הדג על צלחת הניתוח עם מלקחיים.
    4. השתמש בניתוח מספריים כדי לחתוך כדלקמן. לנתח מן הקלואקה לזימים לאורך קו האמצע של הבטן. חתוך מהחלק האחורי של הקלואקה. חותכים מהקצה הצדדי לצד הגבי. הסר בעדינות את העור והשרירים בצד אחד של הגוף. לחשוף את האיברים הפנימיים ולהוציא את השחלה כולה עם מלקחיים.
    5. מיד, מניחים את השחלות בעדינות לתוך צלחת תרבות 100 מ"מ המכיל 60% L-15 של ליבוביץ (L-15) בינוני.
  2. בידוד זקיקי השחלות
    הערה: מערכת ההיערכות שאימצנו מבוססת על ההגדרה המקורית של סלמן ואח '4.
    1. באופן ידני לבודד זקיקים של שלבים שונים באמצעות זוג מלקחיים עדינים כמתואר בעבר8.
    2. קבץ את זקיקי השחלות לשלבים הבאים: שלבי PV, EV, MV, LV ו- FG.
  3. הפרדת תאים זקיקיים וביצית מזקיקים בשחלות
    1. שים את זקיקי השחלות בשלבים שונים לתוך צלחת פטרי נקי המכיל 60% L-15 בינוני.
    2. באמצעות נימי זכוכית משך משלב 1.2, למצוץ את הזקיקים לתוך נימי זכוכית 2-3 ס"מ ולפוצץ אותם.
      הערה: כאשר קוטר הפתיחה של נימי הזכוכית מתאים, ניתן להפריד את הזקיק מן ביצית על ידי שאיפה פעם אחת.
      1. אם שכבת התא הזקיקית מחוברת לביצית בחוזקה, חזור 2-3 פעמים כדי להשיג הפרדה מלאה. הימנע ניסיונות מרובים לכפות זקיק דרך נימי קטן יותר, אשר יפגע זקיק.
        הערה: בתהליך של שאיפה ופיצוץ, השכבה הזקיקית נופלת ונפרדת מהביצית, ולבסוף, תאים זקיקיים וביציתות מקושטות מופרדים (איור 1).
    3. בריכה ביציות משופעת אך שלם ולאסוף את ביציות denuded ששרדו עבור מבחנים נוספים.
    4. כדי לחקור אם התאים הזקיקיים הופרדו מזקיקים שלמים, הכתימו את הזקיקים השלמים והפרידו ביציות עם 4',6-diamidino-2-פנילינדול (DAPI).
      1. לתקן את הדגימות ב 4% paraformaldehyde אגירה בטמפרטורת החדר (RT) עבור 1 שעה. לשטוף מספר פעמים על ידי PBS.
      2. כתם על ידי DAPI ב RT במשך 30 דקות. נשטף מספר פעמים עם PBS. הצג וצלם במיקרוסקופ פלואורסצנטי (למשל, לייקה DFC7000 T).
    5. כדי לאשר את ההפרדה הושלמה, לתקן את הזקיקים שלמים ואת ביציות מופרדות ב 4% paraformaldehyde אגירה לילה ב 4 °C (69 °F), ולהטביע בינוני הקפאת intissue (למשל, לייקה) ב -25 °C (69 °F).
      1. חותכים את הרקמות הקבועות על מיקרוטום, ועולים על מגלשות זכוכית.
      2. שטפו את המקטעים ב- PBS והמחישו את גרעיני התא באמצעות DAPI. הצג וצלם במיקרוסקופ פלואורסצנטי.

3. הפריה חוץ גופית (IVM) והפריה חוץ גופית (הפריה חוץ גופית)

הערה: ההליך של IVM של IVF היה אחריו כמתואר קודם לכן עם שינוי מינורי 11,12,13.

  1. הכינו מדיום התבגרות טרי (+מדיום DHP) לפני ניתוח השחלות של נקבת דג הזברה הבוגרת. להכנת מדיום ההבשלה הטרי, הוסיפו 9 מ"ל של מדיום L-15 של ליבוביץ, pH 9.0, ל-15 מ"ל צינורות חרוטים. הוסף 10 μL של 17α-20β-dihydroxy-4 פרגנן-3-אחד (DHP) (5 מ"ג / מ"ל), 490 μL של dH2O, ו 500 μL של 10% סרום שור אלבומין (BSA).
  2. הכינו את הפתרון של האנק ופתרון E3 מראש. הכן את הפתרון של הנקס כמתואר על ידי Baars ואח'14. הכן E3 בינוני: 5 mM NaCl, 0.17 mM KCl, 0.33 mM CaCl2, 0.33 mM MgSO4, ו 1-5% מתילן כחול.
  3. בצע ניתוח של שחלת זברה-דג ובידוד של זקיקי השחלות כמו בשלבים 2.
  4. לאסוף זקיקי במה בוגרים ולהשתמש כמו ביציות לא בוגרות. עבור כל נקבה בוגרת זברה, לפחות 150-200 זקיקי במה בוגרים יכולים להיות מבודדים. בחר את הזקיקים שלמים ובריאים עבור IVM.
  5. דגירה זקיקי שלב בוגרים ב +DHP בינוני בצלחות 12-באר, בדיקה מעת לעת כדי להבטיח כי ביציות להישאר שלם. הסר את כל ביציות lysing עם פיפטה פסטר.
    הערה: במהלך התבגרות ביצית, ביציות יהפכו בהדרגה שקוף. רוב ביציות להיות שקוף לאחר טיפול DHP במשך 2 שעות. ניתן לראות זאת תחת מיקרוסקופ מנתח עם אופטיקת אור משודרת.
  6. הסר את התאים הזקיקיים החיצוניים ביותר מכל ביצית בוגרת כמתואר בשלב 2.3.
  7. מעבירים את הביציות המנוקדות לצלחת פטרי עם כמה טיפות של מדיום תרבותי וממשיכים להפריה.
  8. הכינו את תמיסת הזרע הטרי באמצעות אשכים שנותחו מלפחות שלושה זכרים ב-500 μL של הפתרון של הנקס. שים את תמיסת הזרע על קרח, שם הוא יכול לשמור על העוצמה של הפריה עד 2-3 שעות.
  9. הוסיפו 100 μL של תמיסת זרע ליציטים מנומרים והתבגרו על צלחת פטרי. מוסיפים בעדינות את תמיסת הזרע בין הביציות, ומסחררים את הזרע והביצים יחד בעזרת קצה פיפטה.
  10. מיד להוסיף 1 מ"ל של פתרון בינוני E3 כדי להפעיל את הביציות ושוב בעדינות מערבולת ביצים וזרע באמצעות קצה פיפטה.
  11. לאחר כדקה לאחר ההפריה (mpf), להציף את הצלחת עם פתרון בינוני E3. הרחבת chorion מלא ניתן לראות בתוך 10-15 mpf.
  12. בין 35-45 mpf, בחר את העוברים העוברים מחשוף סימטרי לשלב 2 תאים, אשר מופרים ולכן מופרים. הסר עוברים שאינם עוברים מחשוף תאים.
  13. אפשר לעוברים להתפתח בצלחת פטרי ב 28 מעלות צלזיוס, עם מגבלה של 80 עוברים לכל צלחת 10 ס"מ. הצג וצלם את התפתחות העובר.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

שיטה זו יכולה לשמש כדי להפריד תאים זקיקים ביציות בשלבים שונים של התפתחות זקיק השחלות ב zebrafish. איור 1 מראה את ההפרדה בין ביציות זברה ותאי זקיקים מזקיקים בשחלות באמצעות צינור זכוכית נימי(איור 1). כדי לחקור אם התאים הזקיקיים הופרדו מזקיקים שלמים, הזקיקים שלמים וביציטים מופרדים משלבים שונים של זקיקים משלב PV לשלב FG היו מוכתמים ב- DAPI (50 מיקרוגרם / מ"ל) ב 37 מעלות צלזיוס במשך 30 דקות. הגרעין של תאים זקיקיים יכול להיות מוכתם על ידי DAPI. האות הכחול של DAPI נצפה בזקיקים שלמים אך לא ביציות מנואות(איור 2). זה מציין כי ביציות ותאים זקיקים של הזקיק ניתן להפריד בצורה נקייה על ידי שיטה זו. כדי לאשר עוד יותר את ההפרדה הברורה, הזקיקים השלמים וביציות המופרדות נחתכו לחלקים ההיסטולוגיים. תוצאות מכתמי DAPI הראו שתאי זקיק הוסרו בבירור ביציות מנורות(איור 3). כל התוצאות הללו מראות כי שיטה זו יכולה לשמש כדי להפריד תאים זקיקיים ביציות זקיקים בשלבים שונים של זברה.

שיטה זו יכולה לשמש לחקר התבגרות ביצית של דגי זברה. כדי ללמוד את התקשורת הדו-כיוונית בין ביציות לתאים זקיקיים במהלך התבגרות ביצית, יש להשיג את ביציות המפורשות עבור מבחנים שונים. באמצעות נימי זכוכית משויכים, נמצאו ביציות מנודות המופרדות מזקיקי זברה בשלב מלא כדי לעבור את התבגרות ביצית הספונטנית ללא כל טיפול לאחר 4 שעות דגירה, בדרך כלל לפחות 30% ביציות מופרדות שרדו וקצב הבשלות של ביציות שורדות אלה יכול להיות עד 80%(איור 4). ביציות בוגרות אלה יכלו לעבור את הרחבת הכוריון המלאה לאחר המיקום במים, דבר המצביע על כך שהתאים הזקיקיים הוסרו לחלוטין (איור 4). לכן, שיטה זו יכולה לשמש כדי להשיג את ביציות denuded ללמוד את התבגרות ביצית של זברה.

שיטה זו יכולה לשמש להפריה חוץ גופית בזברה. אין ויטרו התבגרות (IVM) שיטות התבססו היטב זברה. באמצעות שיטות אלה, זקיקי הבמה גדל במלואו יכול להיות המושרה לשלבהתבגרות 11,12,13,15,16. כדי להמשיך לבצע הפריה חוץ גופית (הפריה חוץ גופית), השכבה הזקיקית של זקיקים בוגרים עדיין צריך להיות מוסר באופן ידני. כאן, IVM של דג זברה נגרם על ידי טיפול DHP. השכבה הזקיקית של זקיקים בוגרים הוסרה על ידי צינור זכוכית נימי. ביציות מנוטרלות אלה עלולות להיות מופרות ולפתח אותן לשלב הבקיעה (איור 5). התוצאה מרמזת כי שיטה זו יכולה לשמש להפריה חוץ גופית ב zebrafish. בדרך כלל סביב 10% של עוברים בריאים ניתן להשיג מן ביציות בוגרת.

Figure 1
איור 1. הפרדת תאים זקיקים וביציטים מזקיקים בשחלות זברה-דג באמצעות נימי זכוכית משוכים. 1) המורפולוגיה של הזקיק שלם בשלב FG. 2) שאיפת הזקיק שלם לתוך נימי הזכוכית שנמשכו. 3) התא הזקיקי מנותק מן ביצית כאשר הזקיק הוא פוצץ מן נימי זכוכית משך. 4) הפרדה מוצלחת של תאים זקיקיים וביצית. סרגלי קנה מידה: 200 מיקרומטר.

Figure 2
איור 2. המורפולוגיה של זקיקים שלמים וביציתות מנודות נפרדו שלבים שונים של זקיקים לאחר כתמי DAPI. הזקיקים שלמים וביציטים מופרדים משלבים שונים של זקיקים משלב PV לשלב FG הוכתמו על ידי DAPI. האותות הכחולים של DAPI נצפו בזקיקים שלמים אך לא ביצית. סרגלי קנה מידה: 200 מיקרומטר.

Figure 3
איור 3. קטעים היסטולוגיים של זקיקים שלמים וביצית מבודדת לאחר כתמי DAPI. גרעיני תאים של תאים זקיקיים היה דמיין עם כתמי DAPI. ניתן להבחין באות הכחול. תאים זקיקיים הוסרו בבירור ביציות מנודות. סרגלי קנה מידה: 100 מיקרומטר.

Figure 4
איור 4. ההתבגרות והרחבת הכוריה המלאה של ביציות מנודות מופרדות מזקיקי במה בוגרים באמצעות נימי זכוכית משוכים. (A)המורפולוגיה של זקיקים שלמים בזקיקי שלב בוגרים. (B) ביציות denuded מופרדים זקיקי שלב בוגר יכול לעבור התבגרות ביצית ספונטנית ללא כל טיפול לאחר 4 שעות דגירה. (ג)ביציות בוגר יכול לעבור הרחבת chorion מלא לאחר ההפעלה על ידי מים. סרגל קנה מידה: 500 מיקרומטר.

Figure 5
איור 5. המורפולוגיה של עוברים מוקדמים המתקבלת על ידי IVM ו IVF. IVM נגרם על ידי טיפול DHP (5 מיקרוגרם / מ"ל) במשך 2 שעות. לאחר IVM, התאים הזקיקיים הוסרו מן ביציות התבגרו על ידי נימי זכוכית משך. הביציות הבוגרות הופרו על ידי הפריה חוץ גופית. התפתחות העוברים בשלבים שונים נצפתה וצולמה. סרגלי קנה מידה:(A-I)200 מיקרומטר,(J)1 מ"מ. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

אנו מתארים כאן שיטה חדשנית להפרדה פשוטה ומהירה של תאים זקיקים וביציטים מזקיקים בשחלות זברה. לשיטה זו מספר יתרונות על פני השיטה המקובלת. העיקרי ביניהם הוא הקלות המוגברת מאוד של הפרדה עם יעילות ויעילות גבוהה, כמו רק מניפולציה אחת וחיצונית נדרשת. נקודה זו מגבירה את הישימות לחוקרים שאינם טובים באנטומיה מיקרוסקופית. על פי הניסיון שלנו, ניתן להפריד בהצלחה תאים זקיקים וביציטים מזקיק שלב בוגר בתוך 5-10 s באמצעות נימי זכוכית. עם זאת, לפחות 30-60 s יש צורך לעשות הפרדה זו באמצעות מלקחיים. חשוב מכך, בדרך כלל לפחות 20% של ביציות denuded מופרדים על ידי נימי זכוכית יכול לעבור התבגרות ביצית ספונטנית. לעומת זאת, לא מעבר ל-1% מהביצים המנותבות יכולות לעבור התבגרות ביצית ספונטנית באמצעות מלקחיים. לכן, היעילות והיעילות של השיטה החדשה באמצעות נימי זכוכית טובה יותר מהשיטה שנקבעה בעבר באמצעות מלקחיים. שנית, שיטה זו יכולה לשמש כדי להפריד תאים זקיקים ו oocyted של זקיקי השחלות בשלבים התפתחותיים מוקדמים כגון PV, EV, ו MV שלבים. הפרדה כזו אינה יכולה להתבצע בזקיקים בשלב מוקדם באמצעות מתודולוגיות נוכחיות.

יש גם כמה מגבלות בשיטה זו. לדוגמה, הקוטר המתאים של פתיחת נימי זכוכית חיוני להפרדת תאים זקיקים וביציתות בשיטה זו. פתח הרבה יותר גדול או קטן יותר מגודל זקיקי השחלות יוביל לכישלון ההפרדה. לכן, קוטר הפתיחה של נימי זכוכית צריך להיות מותאם בהתאם לגודל של זקיקי השחלות, אשר צריך קצת תרגול.

ההפרדה של תאים זקיקים וביצית יש מספר יישומים בחקר התפתחות השחלות. תאים זקיקים וביצים בשלבים שונים של זקיקי השחלות המתקבלים בשיטה זו יכולים לשמש לניתוח ביטוי גנים. תאים זקיקיים מופרדים יכולים לשמש לתרבות תאים ראשונית. ביציות מנודות מופרדות שימושיות לחקירת ההצלבה בין תאים זקיקיים וביציתות, ומספקות מודל טוב לחקר התבגרות ביציות. בנוסף, שיטה זו יכולה לשמש כדי להסיר את התאים הזקיקיים במבחנות מסוימות כגון הפריה חוץ גופית או הפריה חוץ גופית. הזמינות של שיטה שמגדילה מאוד את הקלות והמהירות של ההפרדה צריכה להקל על ניצול רחב יותר של זקיקי השחלות זברהפיש במטרה ארוכת הטווח של הבנת המורכבות של התפתחות השחלות. בנוסף, המבנה של זקיקי השחלות דומה בין מיני דגים שונים; לכן, מעניין לבדוק אם שיטה זו יכולה להיות מיושמת גם דגים אחרים.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

למחברים אין מה לחשוף.

Acknowledgments

עבודת מחקר זו נתמכה על ידי הקרן הלאומית למדעי הטבע של סין [32060170, 31601205 ו- 31560334], פרויקט חוקרים אורחים שנתמך על ידי מועצת המלגות של סין וקרן המעבדה המרכזית של המדינה לאקולוגיה של מים מתוקים וביוטכנולוגיה [2020FB05].

Materials

Name Company Catalog Number Comments
17α,20β-DHP Cayman 16146-5 (5 mg)
24-well plate Corning 3524
Ampoule cutter AS ONE 5-124-22 1 bag (100 pieces)
Anhydrous Na2HPO4 Kaixin Chemical 500 g
Brine shrimp Hongjie 250 g
CaCl2 Beichen Fangzheng 500 g
Culture dish Biosharp BS-90-D (10PCS/PK)
DAPI Solarbio S2110 (25mL)
Dissecting Microscope ZEISS Stemi 305
Dissection forcep VETUS HRC30
Dissection scissor Kefu 160 mm 
Fluorescence Stereomicroscope  Leica M205C
Glass capillary IWAKI IK-PAS-5P (200 pcs/PACK)
Hoechst 33342 Solarbio C0031 (1 mg)
KCl Beichen Fangzheng 500 g
KH2PO4 Kaixin Chemical 500 g
Leibovitz’s L-15 medium Gibco 41300-039 (10×1L)
MgSO4•7H2O Beichen Fangzheng 500 g
Micropipette tips Axygen MCT-150-C
NaCl Beichen Fangzheng 500 g
NaHCO3 Beichen Fangzheng 500 g
Penicilia-streptomycia Gibco #15140122 (100 mL)
Stereomicroscope ZEISS Discover.v20

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Clelland, E., Peng, C. Endocrine/paracrine control of zebrafish development. Molecular and Cellular Endocrinology. 312, 42-52 (2009).
  2. Ge, W. Intrafollicular paracrine communication in the zebrafish ovary: the state of the art of an emerging model for the study of vertebrate folliculogenesis. Molecular and Cellular Endocrinology. 237, 1-10 (2005).
  3. Li, J., Ge, W. Zebrafish as a model for studying ovarian development: Recent advances from targeted gene knockout studies. Molecular and Cellular Endocrinology. 507, 1-19 (2020).
  4. Selman, K., Wallace, R. A., Sarka, A., Qi, X. Stages of oocyte development in the zebrafish, Brachydanio rerio. Journal of Morphology. 218, 203-224 (1993).
  5. Matzuk, M. M., Burns, K. H., Viveiros, M. M., Eppig, J. J. Intercellular communication in the mammalian ovary: oocytes carry the conversation. Science. 296, 2178-2180 (2002).
  6. Liu, L., Ge, W. Growth differentiation factor 9 and its spatiotemporal expression and regulation in the zebrafish ovary. Biology of Reproduction. 76, 294-302 (2007).
  7. Zhou, R., Tsang, A. H., Lau, S. W., Ge, W. Pituitary adenylate cyclase-activating polypeptide (PACAP) and its receptors in the zebrafish ovary: evidence for potentially dual roles of PACAP in controlling final oocyte maturation. Biology of Reproduction. 85, 615-625 (2011).
  8. Li, J., Liu, Z., Wang, D., Cheng, C. H. K. Insulin-like growth factor 3 is involved in oocyte maturation in zebrafish. Biology of Reproduction. 84, 476-486 (2011).
  9. Pang, Y., Thomas, P. Role of G protein-coupled estrogen receptor 1, GPER, in inhibition of oocyte maturation by endogenous estrogens in zebrafish. Developmental Biology. 342, 194-206 (2010).
  10. Peyton, C., Thomas, P. Involvement of epidermal growth factor receptor signaling in estrogen inhibition of oocyte maturation mediated through the G protein-coupled estrogen receptor (Gper) in zebrafish (Danio rerio). Biology of Reproduction. 85, 42-50 (2011).
  11. Welch, E. L., Eno, C. C., Nair, S., Lindeman, R. E., F, P. Functional manipulation of maternal gene products using in vitro oocyte maturation in zebrafish. Journal of Visualized Experiments. (122), e55213 (2017).
  12. Nair, S., Lindeman, R. E., Pelegri, F. In vitro oocyte culture-based manipulation of zebrafish maternal genes. Developmental Dynamics. 242, 44-52 (2013).
  13. Seki, S., et al. Development of a reliable in vitro maturation system for zebrafish oocytes. Reproduction. 135, 285-292 (2008).
  14. Baars, D. L., Takle, K. A., Heier, J., Pelegri, F. Ploidy manipulation of zebrafish embryos with heat shock 2 treatment. Journal of Visualized Experiments. , e54492 (2016).
  15. Xie, S. L., et al. A novel technique based on in vitro oocyte injection to improve CRISPR/Cas9 gene editing in zebrafish. Scientific Reports. 6, 34555 (2016).
  16. Li, J., Bai, L., Liu, Z., Wang, W. Dual roles of PDE9a in meiotic maturation of zebrafish oocytes. Biochemical and Biophysical Research Communications. , (2020).

Tags

ביולוגיה התפתחותית גיליון 170 דג זברה שחלה זקיק ביצית תא זקיק הפרדה
הפרדת תאים זקיקים וביצים בזקיקי השחלות של זברהפיש
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Wang, W., Kang, T., Bai, L., Hu, W., More

Wang, W., Kang, T., Bai, L., Hu, W., Obata, Y., Li, J. Separation of Follicular Cells and Oocytes in Ovarian Follicles of Zebrafish. J. Vis. Exp. (170), e62027, doi:10.3791/62027 (2021).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter