用于泪腺干细胞的三维无血清培养系统

泪腺干细胞（LGSC）维持泪腺（LG）细胞更新，是腺泡和导管细胞的来源。因此，LGSC移植被认为是治疗严重炎症损伤和水缺乏性干眼病（ADD）^{的替代方法1，2，3}。Tiwari等人使用胶原蛋白I和基质凝胶分离和培养原代LG细胞，并补充了几种生长因子;然而，LG细胞不能连续培养⁴。使用二维（2D）培养，由You等人⁵和阿克曼等人分离出小鼠LG衍生的干细胞。⁶、发现表达干细胞/祖细胞标记基因的Oct4、Sox2、纳米和巢蛋白，并可进行传代培养。然而，没有明确的迹象表明这些细胞可以分化成腺泡或导管细胞，也没有移植实验来验证体内的分化潜力。

最近，通过流式细胞术从小鼠LG中分离出c-kit⁺ dim/EpCAM⁺/^Sca1-/CD34^-/CD45^- 细胞，发现其表达LG祖细胞标志物，如Pax6和Runx1， 并在体外分化成导管和阿西尼。在具有ADDD的小鼠中，用这些细胞进行原位注射可以修复受损的LG并恢复LG²的分泌功能。然而，通过这种方法分离的干细胞数量很少，并且没有合适的培养条件来扩增分离的LGSC。综上所述，需要建立适当的培养体系，以有效分离和培养具有稳定和持续扩增的LGS成体LGSC，以研究LGSC在ADD处理中的应用。

来自干细胞或多能干细胞的类器官是一组在组织学上与相关器官相似的细胞，可以维持自己的更新。在Sato等人于2009年⁷成功培养小鼠肠道类器官后，基于佐藤的培养系统，连续培养来自其他器官的类器官，如胆囊⁸，肝脏⁹，胰腺^10，胃11，乳房¹²，肺¹³，前列腺¹⁴和唾液腺¹⁵.由于成体干细胞在类器官培养中分化前的比例很高，因此三维（3D）类器官培养方法被认为是LG成体干细胞分离和培养的最佳选择。

本研究通过优化3D无血清培养方法建立了成年小鼠LGSC培养系统。结果表明，从正常和ADD小鼠培养的LGSC显示出稳定的自我更新和增殖能力。移植到添加的小鼠LG后，LGSC定植受损的LG并改善了泪液的产生。此外，从ROSA26^{mT / mG} 小鼠中分离红色荧光LGSC并进行培养。本研究为LGSC 体外 富集和LGSC自体移植在临床应用中的附加治疗提供了可靠的参考。

该协议中的所有实验都遵循中山大学动物试验伦理委员会的动物护理指南。所有与细胞相关的操作都将在单元操作室的超洁净工作台上进行。所有使用二甲苯的操作都将在通风橱中进行。

1. 初级培养

1. 低压合成材料隔离
   1. 获取6-8周龄的BALB / c雄性小鼠，并切开耳朵后面的皮肤以暴露LG及其周围的结缔组织。在镊子的帮助下通过钝性解剖剥离结缔组织并去除LG。
   2. 用4 mL无菌10 mM PBS溶液冲洗LFG两次，以去除6厘米培养皿中的血液。将LG浸入装有4 mL 75%乙醇的6厘米培养皿中10秒，然后立即用10 mM PBS冲洗两次。
2. 获得LG的单细胞
   1. 使用HEPES缓冲溶液（50 mM肝素/KOH，在超纯水中pH 7.4; 150mM NaCl）制备25 U / mL分散酶。用超纯水制备0.1%胶原酶I溶液。
   2. 将LG切成小片段（约1mm³），将其转移到无菌的15mL离心管中，并在37°C下用500μL 25 U / mL分散酶和500μL0.1%胶原酶I处理组织1小时。
   3. 使用10mM PBS制备胰蛋白酶 - EDTA溶液（0.05克/升胰蛋白酶，0.04克/升EDTA）。用1mL 0.05%胰蛋白酶-EDTA在37°C下处理步骤1.2.2中的LG片段10分钟，并通过反复移液将片段解离成单个细胞。
   4. 通过70μm过滤器过滤悬浮液，将滤液收集到无菌的15mL离心管中，并以150× g 离心5分钟。
   5. 离心后，取出上清液，加入10 mL 10 mM PBS洗涤细胞沉淀，离心悬浮液。
   6. 重复步骤1.2.5，除去上清液，加入1mL DMEM / F12（杜尔贝科修饰的鹰培养基和汉姆的F-12的1:1混合物）以重悬细胞沉淀。
3. 原代菌种
   1. 制备含有DMEM / F12，1x N2补充剂，1x B27补充剂，2mM谷氨酰胺替代品，0.1mMNEA（非必需氨基酸），50ng / mL鼠表皮生长因子（EGF），100ng / mL成纤维细胞生长因子10（FGF10），10ng / mL Wnt3A和10μM Y-27632（岩石抑制剂）的泪腺干细胞培养基（LGSCM）。
   2. 在24孔板的孔中心加入20μL基质凝胶- LGSCM基质（基质凝胶:LGSCM = 1:1）。使用移液器吸头将其膨胀到圆形（直径6-8mm），并将混合物在37°C下孵育20分钟以预涂孔。
   3. 使用细胞计数器确定细胞数量，并将40μLLGSCM与总共1×10⁴ 个细胞加入40μL基质凝胶中。用移液管轻轻混合，得到基质凝胶-LGSCM混合物（基质凝胶:LGSCM= 1:1）。
   4. 在步骤1.3.2中，使用移液管小心地将80μL混合物滴在24孔板的每个孔的预涂区域上。
   5. 将混合物在37°C下孵育20分钟，并加入600μLLGSCM。
   6. 每两天更换一次每个孔中的培养基。培养7天后，在倒置显微镜下寻找直径为100-300μm的LGSC球体（目镜:10x，物镜:4x）。
      注意:LGSC 总共可以培养超过 14 天。
4. 按照上述步骤分离和培养ROSA26^{mT / mG} 小鼠和DED小鼠（NOD / ShiLtJ）的初级LGSC。

2. 线路电缆的维护和通过

1. 从球体培养井中取出培养基。
2. 通过在20μL10 U / mL分散酶和100μL 10mM PBS中在37°C下孵育30分钟来分解培养7天的LGSC球。
3. 将悬浮液转移到15mL离心管中，并以150× g 离心4分钟。取出上清液。
4. 在37°C下用1mL 0.05%胰蛋白酶- EDTA处理球体5分钟。 加入1mL 0.05%胰蛋白酶抑制剂（TI）并反复移液以中和胰蛋白酶并将球体解离成单个细胞。
5. 以150× g 离心5分钟，除去上清液以获得沉淀中的LGSC。加入1毫升LGSCM以重悬LGSC沉淀。
6. 按照步骤1.3.1至1.3.6中所述对单个细胞进行平板。

3. 表面活性物质的鉴别

1. 程序1:使用LGSC培养系统将LGSC的培养时间从7天延长至14天，以进行随机分化。
2. 步骤2:在LGSC培养开始时将基质凝胶- LGSCM混合物的比例从1:1更改为1:2，用于导管细胞的分化。将LGSC种子到基质中进行诱导14天（参见步骤1.3）。
3. 程序3:传代后，用LGSCM-10%胎牛血清（FBS）混合物代替LGSCM，用于腺泡细胞的分化。诱导分化 14 天。

4. LG组织脱水

1. 获得LG组织（步骤1.1.1）并用4mL无菌10mM PBS溶液在6cm培养皿中冲洗LG2分钟。将组织移动到10%福尔马林溶液中以固定24小时。
2. 用10mM PBS冲洗固定组织2分钟以除去福尔马林，并将组织转移到组织包埋盒中。将包埋盒放入自动脱水机中。
3. 使用自动脱水机使组织脱水如下:70%乙醇，2小时;80%乙醇，2小时;90%乙醇，30分钟;95%乙醇，30分钟;无水乙醇，30分钟;无水乙醇，2小时;无水乙醇:100%二甲苯（1:1）混合物，30分钟;100%二甲苯，30分钟;100%二甲苯， 2小时;100%二甲苯:石蜡（1:1）混合物，30分钟;石蜡，2小时;石蜡，3小时。

5. LG类器官/球体脱水

1. 在1.5mL微量离心管中获得LG类器官/球体（步骤2.1-2.3），并用1mL无菌10mM PBS溶液冲洗LG类器官/球体2分钟。
2. 以100× g 离心1分钟并除去上清液。
3. 按如下方式制备4%多聚甲醛（PFA）溶液:将20g PFA加入400 mL 10 mM PBS和40μL1 M NaOH的混合物中，充分摇动溶液，并在65°C水浴中加热2小时，直到PFA完全溶解。冷却至室温后，使用10 mM PBS将体积增加到500 mL并将其储存在4°C。
4. 将1mL 4%PFA加入具有类器官/球形颗粒的微量离心管中，并将管放入4°C冰箱中至少24小时以进行固定。
5. 固定后，以100× g 离心1分钟并除去上清液。将1mL 10 mM PBS加入具有类器官/球形沉淀的微量离心管中，并通过移液2分钟轻轻混合以冲洗掉PFA。重复此步骤两次。
6. 以100× g 离心1分钟并除去上清液。
7. 热包埋水凝胶溶解并加入50-60μL包埋水凝胶到类器官/球形颗粒中并混合。将混合物以液滴的形式移液到石蜡膜上，并等待5分钟，使其在室温下固化。
8. 将凝胶与类器官/球体在新的1.5 mL微量离心管中脱水，如下所示。
   1. 向管中加入1mL 50%乙醇，在室温下等待30分钟，然后通过移液从管中取出液体。重复此步骤，依次将乙醇浓度更改为70%，80%，90%，95%。
   2. 向管中加入1mL无水乙醇，在室温下等待30分钟，然后通过移液从管中取出液体。重复此步骤。
   3. 向管中加入1mL 0.5mL无水乙醇和0.5mL 100%二甲苯的混合物，在室温下等待30分钟，并通过移液从管中取出液体。
   4. 向管中加入1mL 100%二甲苯，在室温下等待30分钟，然后通过移液从管中取出液体。重复此步骤。
      注意:步骤5.8.5-5.8.6必须在65°C的金属浴中进行。
   5. 向管中加入1mL 0.5mL石蜡和0.5mL 100%二甲苯的混合物，在65°C下等待30分钟，并通过移液从管中取出液体。
   6. 向管中加入1mL石蜡，在65°C下等待30分钟，然后通过移液从管中取出液体。重复此步骤并将处理时间延长至1小时。

6. 石蜡包埋和切片

1. 石蜡包埋
   1. 在包埋之前，打开包埋机并预热以融化石蜡罐中的石蜡。
   2. 将脱水组织或类器官/球凝胶放入包埋铁盒的凹槽中，并将铁盒放入包埋机的石蜡中。
   3. 取下塑料盖，将塑料嵌入盒放在铁盒上以覆盖它。将嵌入的铁盒移到冷却台上。
   4. 石蜡在包埋盒中凝结成块后，将其从铁盒中取出并直接切片或暂时储存在4°C冰箱中。
2. 石蜡切片
   1. 在石蜡切片之前，预组装石蜡切片机，并将蒸馏水加入切片机的水槽中进行预热。当水温上升到42°C时开始切片。
   2. 将样品固定在石蜡切片机的样品槽上。在切片过程中将切片厚度调整为5μm。
   3. 连续切除样品。将完全平铺的部分固定在切片机罐中的防滑滑块上。
   4. 切片后，将贴有样品组织的载玻片置于37°C的生化培养箱中干燥24小时。暂时将载玻片存放在4°C的冰箱中。

7. 苏木精和曙红染色

1. 将石蜡切片在60°C下熔化30分钟，将切片浸泡在100%二甲苯中15分钟，然后重复。
2. 在振荡器上用无水乙醇处理切片5分钟。
3. 在振荡器上用90%乙醇，80%乙醇和70%乙醇处理切片，每次3分钟。
4. 在摇床上用去离子水连续处理切片5分钟和2分钟。
5. 用4mg / mL苏木精溶液在湿盒子上染色切片5分钟。在自来水中冲洗切片10分钟。
6. 首先用去离子水在摇床上搅拌切片2分钟，然后用0.5%-1%曙红搅拌1分钟。
7. 连续用70%乙醇，80%乙醇和90%乙醇在摇床上搅拌切片3分钟（每个）。用无水乙醇在摇床上搅拌切片5分钟。
8. 将切片浸泡在100%二甲苯中15分钟，然后重复浸泡。
9. 使用移液管或滴管向载玻片中加入3-4滴中性香脂，并用盖玻片慢慢覆盖。在室温下风干载玻片。

8. 免疫组化 （IHC） 染色

1. 将石蜡切片在60°C下熔化30分钟，将切片浸泡在100%二甲苯中10分钟，然后重复此步骤两次。
2. 首先用无水乙醇，90%乙醇和80%乙醇连续搅拌振荡器上的切片2分钟（每个），然后用去离子水搅拌3分钟。用去离子水重复搅拌两次。
3. 首先用20mL的30%H_{2 O 2}和180mL甲醇的混合物搅拌振荡器上的切片10分钟，然后去离子水搅拌5分钟。重复此步骤三次。
4. 将切片转移到预沸的柠檬酸缓冲液中（1L去离子水与3g Na₃C₆H₅O_{7.2H 2}O和0.4g C₆H₈O₇，pH 6.0），微波10分钟以使其保持在亚临界沸点，并在室温下冷却30分钟。在摇床上用去离子水搅拌切片5分钟。重复此步骤三次。
5. 用10 mM PBS在摇床上搅拌切片5分钟，然后重复此步骤三次。用憎水标记物将组织区域封闭在湿盒子上，加入一滴即用型非免疫山羊血清以覆盖样品，并将其置于室温下1小时。
6. 取出血清，向样品中加入一抗（参见 材料表），并在4°C下孵育过夜。 取出一抗，在振荡器上用10mM PBS搅拌切片5分钟，并用10mM PBS重复该搅拌步骤三次。
7. 加入二抗（参见 材料表）以覆盖样品，并在室温下在湿盒上孵育30分钟。用10 mM PBS在摇床上搅拌切片5分钟，并重复搅拌步骤三次。
8. 加入新鲜制备的0.03-0.05%3，3'-二氨基联苯胺（DAB）溶液，以覆盖湿盒上的样品并染色30-90秒。用自来水冲洗切片10分钟。
   注意:通过在光学显微镜下观察直到出现黄色来控制染色时间。
9. 加入4mg / mL苏木精溶液覆盖样品，在湿盒上染色5分钟，然后用自来水冲洗切片10分钟。
10. 在振荡器上用80%乙醇，90%乙醇和无水乙醇搅拌切片2分钟，连续，并将切片浸泡在100%二甲苯中30分钟。
11. 使用移液管或滴管向载玻片中加入3-4滴中性香脂，并用盖玻片慢慢覆盖。在室温下风干载玻片。

9. 类器官/球体的全球免疫荧光染色

注意:将用4%PFA溶液固定的类器官/球体收集在1.5 mL微量离心管中（参见步骤5.1至5.4）。按如下方式进行荧光标记。

1. 通过将1mL 30%蔗糖溶液加入管中并使其在4°C的冰箱中孵育过夜，使类器官/球体脱水。
2. 向管中加入100μLPST溶液（10mM PBS溶液与0.1%Triton X-100）以冲洗类器官/球体5分钟，将管以100× g 离心1分钟，并收集沉淀。重复此步骤三次。
3. 向管中加入0.5-1 mL即用型非免疫山羊血清，并在室温下密封1小时。将管以100× g 离心1分钟并收集沉淀。
4. 加入几滴稀释的一抗，仅覆盖沉淀，并在4°C的冰箱中孵育48小时。将管以100× g 离心1分钟并收集沉淀。
5. 重复步骤 9.2。
6. 向管中加入几滴荧光二抗和4'，6-二氨基-2-苯基吲哚（DAPI）溶液，仅覆盖沉淀并在4°C的冰箱中孵育24小时，避免光照。
7. 重复步骤9.2，避开光线。
8. 向管中加入100μLPBST溶液，并将其暂时储存在远离光线的4°C冰箱中。使用光片扫描显微镜观察和拍摄类器官/球体。

10. LGSC pLX-樱桃转染

注:慢病毒颗粒的生产必须在BSL2生物安全级别的生物安全柜和洁净工作台中进行。

1. 将慢病毒包装细胞293T培养在DMEM + 10%FBS的6孔板中，在37°C，5%CO₂ 下3-5天，以达到80%的细胞汇合度。
2. 将慢病毒载体 pLX-mCherry 转染到 LGSC 中。
   注意:试剂制备适用于6孔板的一孔。
   1. 准备两个无菌的1.5 mL离心管，并向每个管中加入250μL DMEM / F12。
   2. 向一个管中加入7.5μL转染试剂，并通过移液将试剂充分混合。
   3. 将不含内毒素和匹配的慢病毒包装质粒的pLX-mCherry质粒加入另一管中，并加入转染试剂（2μL / μg质粒）。
   4. 在两个离心管中混合液体，让混合物在室温下静置5分钟。
   5. 除去293T细胞的培养基，并将步骤10.2.4中的混合物加入到293T细胞中。8小时后将培养基改为新鲜的DMEM + 10%FBS。
   6. 48小时后，首次收集病毒上清液并通过0.45μm过滤器过滤。72小时后，第二次收集病毒上清液，并再次通过0.45μm过滤器过滤。
      注意:将两种过滤的上清液储存在冰上，直到慢病毒转导。
3. 从二苯乙烯醚小鼠（NOD/氧化痣）获得LGSC（参见步骤1）。
4. 加入1mL预收集的pLX-mCherry慢病毒上清液以重悬细胞。
5. 将离心管放在CO₂ 培养箱中的振荡器上，温度为37°C。 以100rpm的速度摇晃它，以最大化慢病毒和细胞之间的接触。8小时后，将混合物以250× g 离心4分钟并除去上清液。
6. 加入1 mL DMEM / F12以重悬细胞沉淀。使用细胞计数器确定细胞数量，并将总共1个×10⁴ 个细胞接种到100μL基质凝胶-LGSCM基质（基质凝胶:LGSCM = 1:1）中，每个孔板预涂有20μL基质凝胶-LGSCM基质（参见步骤1.3.2）。
7. 培养7天后（参见步骤1），在荧光显微镜下选择具有红色荧光的球体以扩大培养物。

11. 原位移植

注意:所有外科手术都在SPF手术室进行，所有手术器械都经过消毒。

1. 从具有红色荧光（td-番茄）或樱桃转染7天的ROSA26^{mT / mG} 小鼠中获取LGSC球（参见步骤1）。
2. 使用前将含有基质凝胶和 DMEM/F12 混合物的 1.5 mL 微量离心管冷却至冰上。将LGSC球消化成单个细胞，并将细胞以2×10⁶ 个细胞/ mL的密度重悬于管中。
3. 通过腹膜内注射戊巴比妥钠（50mg / kg）麻醉NOD / ShiLtJ小鼠。
   注意:NOD / ShiLtJ小鼠是具有特发性附加症状的理想模型，包括泪液分泌减少，炎症浸润和眼眶溃疡。
4. 麻醉后，在眼睛上使用生理盐水或兽医软膏以防止干燥，然后用眼用剪刀在麻醉小鼠的耳朵后面（眼睛附近）的皮肤上做一个5-8毫米的切口，以暴露LG。
   注意:碘伏应严格用于切口周围的消毒。
5. 将2×10⁴ 个细胞注入左侧LG中，并将没有细胞的混合物（参见步骤11.2）注入右侧LG作为对照。
6. 注射后，用眼用镊子将LG恢复到其原始位置并缝合伤口。喂养小鼠2个月并观察治疗效果。
   注:保持架垫材料在操作后也必须严格灭菌，垫子材料应每天更换一次。缝合伤口后，曲马多可以以2.5mg / kg的标准剂量选择性地注射到小鼠的尾静脉中，以实现镇痛。
7. 在实验后2个月麻醉这些小鼠（见步骤11.3）。拍摄眼部区域的症状。
   1. 在麻醉期间，寻找以下症状:颈部和肢体肌肉松弛;深呼吸，缓慢和稳定;瞳孔缩小;角膜反射消失。
   2. 在麻醉和手术期间，将小鼠的体温保持在37°C。 手术后，在小鼠的饮用水中加入适当的抗生素，以降低伤口感染的风险。不要让小鼠无人看管，直到它们恢复足够的意识来维持胸骨卧位。在完全康复之前，不要将接受过手术的小鼠送回其他小鼠的陪伴下。
   3. 拍摄眼部区域的症状后，打开ImageJ软件，单击 文件|打开|徒手选择，按住鼠标左键，然后选择图像 中的眼眶溃疡区域 。点击 分析|测量 以获得溃疡的相对面积。
8. 将酚红棉线放在麻醉小鼠的侧囊上10秒;测量并记录棉线变色部分的长度。撕裂测量后通过颈椎脱位对小鼠实施安乐死。
9. 解剖小鼠并获取用于IHC分析的LG。

12. 核糖核酸分离

注意:在实验之前，将离心机预冷至4°C，并保证所有试剂和消耗品均不受RNAse污染。

1. 在微量离心管中收集LGSC或LG片段。加入1mL细胞裂解缓冲液，通过涡旋振荡完全裂解细胞或组织。
2. 加入0.2mL氯仿，并在涡旋振荡1分钟后在室温下静置10分钟。在4°C下离心15分钟，12，000× g。
   注意:离心后，液体分为三层，RNA处于最上层透明的水相。
3. 小心地移液最上层的透明水相，并将其转移到新的1.5 mL无RNAse离心管中。
4. 加入等体积的异丙醇，轻轻混合。让混合物在室温下静置10分钟，然后在4°C，12，000× g下离心15分钟。
5. 除去上清液，加入1mL 75%乙醇。倒置管以洗涤沉淀并在4°C，7，500× g下离心5分钟。重复此步骤。
6. 小心地取出上清液，将离心管放入超洁净工作台中干燥约20分钟。
   注意:当白色颗粒变得半透明时，继续下一步。在冰上进行所有操作。
7. 加入20μL无RNAse水以完全溶解沉淀。使用分光光度计测量RNA浓度（参见 材料表）并将RNA溶液储存在-80°C。

13. 聚合酶链反应

1. 逆转录反应
   1. 将1μg总RNA（根据RNA溶液的浓度计算添加的RNA溶液的体积）加入PCR反应管中，并在65°C下孵育5分钟以进行变性。
   2. 将其放在冰上1分钟，然后加入无酶水，直到总体积达到12μL.加入4μL的4x DNA预混液，并在37°C下孵育5分钟。
   3. 将试管放在冰上，加入4μL 5x RT预混液，轻轻混合。设置以下PCR设置:37°C持续15分钟，50°C持续5分钟，98°C持续5分钟，4°C持续1分钟。
   4. 将其储存在-20°C或逆转录反应完成后继续下一步。
2. 聚合酶链反应
   1. 在PCR管中制备PCR反应如下:14.1μL无酶水，2μLdNTP，2μL10x缓冲液，0.8μL引物（10μM，0.4μL正向引物和0.4μL反向引物，参见 材料表），1μL逆转录cDNA（参考步骤13.1）和0.1μLTaq酶。
   2. 将制备的PCR反应置于PCR装置中进行PCR。有关 PCR 程序，请参阅 Taq 酶试剂盒的说明（参见 材料表）。
3. 琼脂糖凝胶电泳
   1. 使用分析天平称量242克Tris和37.2克Na₂EDTA·2H₂O，并将它们加入1升烧杯中。向烧杯中加入约800 mL去离子水和57.1 mL冰醋酸，充分混合，向1L中加入去离子水，得到50x TAE缓冲液，并在室温下储存。
      注意:使用前用去离子水稀释50x TAE缓冲液。
   2. 使用分析天平称量1.2g琼脂糖，并将其加入含有80 mL 1x TAE缓冲液的锥形烧瓶中。在微波炉中反复加热，直到完全溶解。
   3. 在流动的自来水中冷却烧瓶，直到溶液温度降至60°C。 加入8μL核酸染色剂，充分混合后将溶液倒入糊化罐中，放置梳子，并在室温下静置30分钟。
   4. 拉出梳子并将PCR产物加载到制备的琼脂糖凝胶中。在120 V下进行电泳30分钟。
   5. 将凝胶放入ECL凝胶成像系统中并拍照。

建立 3D、无血清培养系统
本研究开发了含有EGF、Wnt3A、FGF10和Y-27632的小鼠LGSC，并通过3D培养方法成功分离和培养LGSC（图1A）。使用该方法已经建立了来自C57BL / 6小鼠，NOD / ShiLtJ小鼠，BALB / c小鼠和ROSA26mT / mG小鼠的LGSC的成功3D，无血清培养系统16。对于雄性小鼠，通过解离从两个LG获得1.5-2×10 6个细胞。培养一周后，在培养开始时接种1×104个LG细胞时形成30-60个球体。此外，用这种方法培养的细胞表达Epcam，Krt5，Krt14，P63，巢蛋白和其他干细胞标记物16，表明获得的细胞具有LGSC的性质。

在为期7天的培养中，LGSC球体的直径达到100μm。苏木精和曙红（H&E）染色在第7天显示出细胞性（图1C 和 图1F）。原代培养和传代培养7 d后获得的LGSC富集因子表明，该方法富集的LGSC具有较强的增殖能力（图1D）。在该系统中，LGSC可以传代超过40次，并且它们仍然保持干细胞特性（图1E 和 图1G）。总之，本文描述了在 体外建立LGSC的3D无血清培养系统的方案。通过该方案培养的细胞具有连续和稳定的增殖能力。

在体外诱导分化
分析了LGSC 在体外 的分化能力。培养7 d以上时，LGSC逐渐丧失生长能力，AQP5、Ltf、Krt19等与分化相关的标志物表达增加，而Krt14的表达量逐渐下降16个。通过FBS和低比例的基质凝胶诱导LGSC形成更多的芽（图2A，B）。此外，H&E染色表明FBS可以诱导球体产生更多的空化结构（图2C）。

先前的工作表明，降低基质硬度促进了LGSC分化为导管状类器官。基底层细胞保持干细胞表达Krt14的特征，而基底层上层细胞分化成具有空腔的导管状结构并表达Krt19。此外，FBS的加入可诱导LGSC分化为腺泡样类器官，从而保持干细胞具有高核/细胞质比的特性。一些分化的腺泡样细胞表达高水平的AQP5，核/细胞质比低16。

 在体内修复液化硅 
基于上述实验，通过原位注射探索了LGSC修复受损LG的能力。在NOD / ShiLtJ小鼠中原位注射ROSA-LGSC后，在LG附近形成新的泪小叶（图3A-C）。大多数小叶由AQP5表达高的成熟腺泡细胞组成，并且存在低AQP5表达的小叶内管形成（图3D-F）。在注射ROSA-LGSC8周后，测量受体轨道周围的衰变。测量结果表明，LGSC的注入使衰变面积减少了约60%（图3G，H）。解剖显示注射10周后LG体积增加（图3I）。ROSA-LGSC注射侧的泪液分泌量高于对照侧，但低于野生型小鼠（图3J）。这些结果表明，该培养系统收获的细胞具有LGSC的特性，可用于ADD和干眼症小鼠的干细胞治疗。

图1:LGSC的分离和表征（A）LGSC初级和连续传代培养的策略。（B）第7天LGSC的免疫荧光染色。LGSC表达上皮细胞标志物E-钙粘蛋白（红色），干细胞标志物Krt14（红色），增殖细胞标志物Ki67（红色）。复染，达皮（蓝色）。（C）LGSC在培养物中1、3、5和7天的形态。（D）初级培养和亚培养中LGSC培养的相对富集因子。相对富集因子是培养7天后获得的细胞总数与培养物中接种的细胞数之比。第<0.01页。（E）小鼠LG和不同传代LGSC（P1，P10，P20和P40）的成体茎/祖细胞标记物的转录。（F）第7天初级培养中LGSC的形态（左）和H&E染色（右）。（G）在不同通道（P1、P10、P20和P40）中培养的LGSC。比例尺 = 50 微米 （B， F， G）， 100 微米 （C）。缩写: LG = 泪腺;LGSC = LG干细胞;DAPI = 4'，6-二氨基-2-苯基吲哚;;NC = 阴性对照;TE = 胰蛋白酶 -乙二胺四乙酸;H&E = 苏木精和曙红。请点击此处查看此图的大图。

图2:LGSC 的体外分化 （A，B）在正常培养基或分化培养基中培养的LGSC的形态。（A）在P10中培养10天的LGSC（左:正常培养基，右:含FBS的培养基）。（B）在P31中培养14天的LGSC（左:正常培养基，右:具有1/3基质凝胶的 培养基）。（C）对培养14天的LGSC进行H&E染色（顶部:正常培养基，底部:含FBS的培养基）。比例尺 = 100 微米 （A）、200 微米 （B）、50 微米 （C）。缩写: LG = 泪腺;LGSC = LG干细胞;H&E = 苏木精和曙红;FBS = 胎牛血清。 请点击此处查看此图的大图。

图3:移植LGSC同种异体移植和缓解附加症状（A-F）NOD / ShiLtJ LG的IHC染色在8周后移植了ROSA-LGSC的7天培养物。使用同一鼠标的左侧和对照组作为实验组和对照组。（自动对照）用抗td-番茄抗体进行IHC染色;（D-F）用抗AQP5抗体进行免疫组化染色;（答、四）LG注射载体（基质凝胶和DMEM / F12的1:1混合物），（B，E）LG注射罗莎-LGSC，（C，F）B，E（红色箭头，小叶内导管）中黑色方块的放大图像。（G，H）注射ROS-LGSC后8周NOD / ShiLtJ小鼠眼眶的状况。LGSC的注射显着减轻了眼眶周围的衰变。（I） NOD/ShiLtJ 小鼠在 10 周时的 LG（左:细胞注射侧的 LG，右:控制侧的 LG）。（J）野生型和NOD / ShiLtJ小鼠的撕裂体积，在8周后移植7天ROSA-LGSC培养物。罗莎-LGSC注射液的撕血量高于对照液化糖，但显著低于WT液化物。发光二极管/希氏杀伤性粒细胞， n = 4;P < 0.01;*P < 0.05。比例尺 = 50 μm （A-F）。缩写: LG = 泪腺;LGSC = LG干细胞;IHC = 免疫组化;WT = 野生型;ADD =缺水性干眼病。请点击此处查看此图的大图。

作者声明他们没有竞争利益。