Waiting
Login-Verarbeitung ...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Genetics
Click here for the English version

Genetics

Измерение уровня мРНК со временем во время дрожжей S. cerevisiae гипоксических ответа

Published: August 10, 2017 doi: 10.3791/56226
Automatic Translation
1, 2, 2, 2
1Department of Molecular Biology, Rowan School of Osteopathic Medicine, 2Department of Biological Sciences, Rowan University

Summary

Здесь мы представляем протокол, с помощью РНК seq для мониторинга уровня мРНК со временем во время гипоксических ответ S. cerevisiae клеток. Этот метод может быть адаптирована для анализа экспрессии генов в течение любого клеточного ответа.

Abstract

Сложные изменения в экспрессии генов посредником обычно большую часть клеточного ответа. Каждый ген может изменить выражение с уникальными кинетика как ген регулируется конкретного времени одной из многих раздражителей, сигнальные пути или вторичные эффекты. Для того, чтобы захватить весь ген выражение ответ к гипоксии в дрожжей S. cerevisiae, РНК seq анализ был использован для контроля уровня мРНК всех генов в определенное время после воздействия гипоксии. Гипоксия была создана путем выращивания клеток в ~ 100% N2 газ. Важно отметить, что в отличие от других гипоксических исследований, эргостерол и ненасыщенных жирных кислот не были добавлены в СМИ потому, что эти метаболиты влиять на экспрессию генов. Моменты времени были выбраны в диапазоне от 0 - 4 h после гипоксии, потому что этот период отражает значительные изменения в экспрессии генов. В каждый момент времени, середине журнала гипоксии клетки были быстро фильтруется и мороженые, ограничивая воздействие O2 и сопутствующие изменения в экспрессии генов. Общая РНК было извлечено из клеток и используется для обогащения для мРНК, который затем преобразуется cDNA. От этого cDNA мультиплекс библиотеки были созданы и восемь или более образцов были упорядочены в одной полосе секвенсор следующего поколения. Описан трубопровода после виртуализации, которая включает в себя базовый качества обрезки, читать картирования и определения количество считываний за гена. DESeq2 в пределах R статистики окружающей среды была использована для выявления генов, которые существенно изменить в любом из пунктов гипоксических время. Анализ трех биологических реплицирует показал высокую воспроизводимость, гены различных кинетики и большое количество O2-регулируется генов. Эти методы могут быть использованы для изучения, как клетки различных организмов реагировать гипоксии с течением времени и адаптированы для изучения экспрессии генов в ходе других клеточных реакций.

Introduction

Многих организмов реагировать гипоксии, или низкой O2, изменяя ген выражение 1,2,3. Этот ответ помогает справиться с отсутствием субстрата, решающее значение для аэробного дыхания и несколько биосинтетических реакций, но и с меняющейся окислительно-восстановительного состояния 4клетки. Несколько microarray исследования в S. cerevisiae показывают, что уровни mRNA сотен генов, изменения в ответ на гипоксии 5,6,,78,9 , 10 , 11 , 12. Недавно, РНК seq был использован для характеристики изменения выражения гена с течением времени при гипоксии 13. Здесь представлены экспериментальные данные и обсуждены.

Гипоксия может достигаться различными способами, каждая из которых производит другой уровень O2. Здесь, гипоксия была учреждена постоянно течет ультра высокой чистоты N2 в колбы, который понижает [O2] распущен сразу с воспроизводимые кинетики 10. Вполне возможно, что есть некоторые O2 молекулы настоящий влияющих на метаболизм и ген выражение, но эта среда считается очень недалеко от анаэробных. В отсутствие O2дрожжевых клеток не biosynthesize гема, эргостерол и ненасыщенных жирных кислот 4,12,14. Таким образом предыдущие исследования включили эти метаболиты, когда рост дрожжей без кислорода 5,10,15. Однако многие гипоксических ответы опосредовано истощения этих метаболитов и таким образом пополнения их меняет гипоксических ген выражение ответы 12,16. Чтобы имитировать природные гипоксии, эти метаболиты не были добавлены в средствах массовой информации. В короткое время, что клетки были подвержены гипоксии без присутствия этих основных метаболитов был не заметное увеличение гибели клеток (данные не показаны), ни длительного стресса ответ 13.

Ответ также зависит от напряжения и его генотипа. Особенно важными являются аллели известных регуляторы гипоксических ответы 2. Фон штамм S288C весьма желательно так, что результаты можно сравнить с другими геномных исследований, выполненных с этот штамм. Однако S288C содержит частичные потери функции аллеля HAP1 гена 17, транскрипционный анализ критических регулятор для гипоксических ответ. Эта аллеля было отремонтировано в S288C с помощью wildtype копии от Σ1278b штамма фон 11.

Экспрессия генов сильно зависит от клеточной среды. Таким образом при выполнении анализа генома общесистемной мРНК, важно поддерживать постоянный окружающей среды при различной еще один параметр, например время, стимул или генотипа. Для достижения высокой воспроизводимости результатов, рассмотрим эти три практики для исследования и все его биологических или технических реплицирует. Во-первых же experimenter(s) следует провести исследование, так как технической практики может различаться между экспериментаторов. Во-вторых той же партии ингредиентов должны использоваться в средствах массовой информации роста, как каждая партия имеет несколько иной состав, который может влиять на экспрессию генов. В-третьих чтобы свести к минимуму последствия клеточного цикла, каждый момент времени должна состоять из асинхронных клеток в середине журнала фазе роста (1-2 x 10-7 кл/мл).

При характеристике сложный ответ как ответ выражение гена к гипоксии, курс является выгодным для определения кинетика различных мероприятий. Конкретное время точек должен быть выбран, что будет захватить крупные изменения ответа. В этом исследовании были замечены время точек между 0 и 4 h, потому что последние эксперименты показали широко распространенные изменения в экспрессии генов в течение этого периода 13.

Для измерения глобального ген выражение, РНК seq был используется 18,19. Этот метод использует секвенирование нового поколения для определения относительного изобилия транскрипт каждого гена. По сравнению с microarray анализ ДНК, РНК seq экспонатов выше чувствительность (для выявления менее обильные стенограммы), более широкий динамический диапазон (для измерения более раз изменения) и Улучшенный воспроизводимости (чтобы точно следовать экспрессии генов с течением времени). Как правило наиболее клеточной РНК — рибосомной РНК, которые так много методов были разработаны для обогащения для конкретных видов РНК 20. Здесь поли T бусины были использованы для того чтобы очистить поли A-содержащих мРНК стенограммы, хотя различные коммерчески - доступные наборы истощения рРНК также может быть эффективным в мРНК обогащения.

Здесь характеризовался ответ выражение гена S. cerevisiae гипоксии. Клетки были подвержены гипоксии и затем отведать в восемь раз точки (0, 5, 10, 30, 60, 120, 180, 240 мин). Чтобы подтвердить воспроизводимость и выявления статистически измененные стенограммы, три биологических реплицирует были исполнены. РНК добытых столбец очистки и механические нарушения и затем обработаны для РНК seq анализа. Описан трубопровода после виртуализации и программирования сценариев предоставляются, которые позволяют выполнять точное репликации анализов. В частности Trimmomatic 21, TopHat2 22, HTseq 23, R статистической среды 24и DESeq2 пакет 25 были использованы для обработки данных, РНК seq и выявления 607 генов, которые существенно изменить во время гипоксия. Анализ главных компонент (СПС) и выражение гена реплицирует указали воспроизводимость метода. Кластеризация и карты показали широкое выражение кинетики, в то время как генная Онтология (GO) анализ показал, что многих клеточных процессах, как аэробного дыхания, обогащаются в наборе кислорода регулируется генов.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. склонение гипоксии

  1. Один день или более до гипоксии время курс: подготовка инкубатор телефоны, фильтрации системы, вакуум, бензобак, фляги, пробки, стеклянные трубки и трубки, как показано в Таблице материалов.
  2. Место N2 танка, инкубатор, вакуумные и фильтрации системы в непосредственной близости, чтобы включить быстрый обработки клеток.
  3. Подготовка стерильных жидких сред YPD (1%, экстракт дрожжей, Пептон 2%, 2% раствор глюкозы) путем смешивания компонентов в стеклянной бутылке и автоклавирования.
  4. План схема колбы в инкубаторе.
    Примечание: От бака2 N, первый флакон будет ловушку воды, второй флакон будет последний момент времени, третий настой будет точкой второй до последнего времени и так далее до последнего настой, который является окончательное вода ловушку. Рисунок 1 показывает порядок и соединения между колбы.
  5. За день до времени курс прививок колонией дрожжей в культуру 5 мл жидкости YPD в стерильную пробирку. В частности подберите полный колонии от пластины с помощью стерильных аппликатор ручки. Установите ручку в жидком YPD и встряхнуть палку, пока большинство клеток в суспензии.
  6. Поворот трубы при 30 ° C ночь (~ 16 h).
    Примечание: После 16 h, wildtype клетки будет добиться насыщения (~ 2 x 108 клеток/мл), указал на очень облачно культуры. Другие штаммы может занять больше времени, чтобы добраться до насыщения и должна быть проверена измерения концентрации клеток с спектрофотометр, как указано в шаге 1.9.4.
  7. В день время курс после 16 ч инкубации, разбавить насыщенных культуры 1:50 с помощью пипетки 5 мл поставить 4 мл ночь культуры в 196 мл жидкого YPD в стерильных 500 мл флакон. Расти с встряхивания на ~ 200 rpm для 4 ч при температуре 30 ° C.
    Примечание: После 4 ч, wildtype культура достигнет в середине журнала концентрации ~ 1-2 x 107 кл/мл.
  8. В течение 4 ч инкубации метки колбы (для ловушки гипоксии и воды) и 50 мл трубки для сбора. Если инкубатор в шаге 1.7 выше не используется для курса время гипоксия, включите другой инкубатор и до 30 ° C.
  9. Как раз перед подвергать гипоксии клетки:
    1. Добавьте два из стерильных 250 мл колб, которые будут служить в качестве ловушки воды ~ 50 мл воды.
    2. Заполните 1/3 льда ковша жидким азотом и погружать пенополистирола стойку провести 50 мл пробирок.
    3. Настройка фильтра системы сбора клеток. Добавление диска стерильного фильтра на дно блок системы фильтрации с использованием стерильных пинцетов, стараясь коснуться только края фильтра диска. Поместите верхний фильтр на дно блок фильтра и Закрепите зажимы, предоставляемых системой. Убедитесь, что нижней и верхней единиц выравниваются, так что есть плотное прилегание и отсутствие утечки.
    4. Измерение концентрации клеток с спектрофотометром. Разбавьте клетки так, что они могут быть измерены в линейный спектр спектрофотометр –600 ОД между ~0.2 - 0,6, в зависимости от спектрофотометра.
      Примечание: Одна единица600 ОД является ~ 3 x 107 кл/мл, в зависимости от морфологии клеток и спектрофотометра. ~ 1-2 x 107 кл/мл концентрация ожидается, соответствующий ОД600 ~0.33 - 0.66.
    5. Быстро получите образец time 0.
      1. Подключите фильтр системы к сильным (~ 10 мбар) вакуума через вакуумные трубки и колбу ловушку 1000 мл. Включите пылесос. Налейте антресоль культуры (обычно ~ 20 мл) и ждать к быть вытягивано через фильтр жидкости (~ 10 s, в зависимости от силы вакуум).
      2. Осторожно извлеките диск фильтр с помощью пинцета, чистой и место в 50 мл пластиковых пробирок. Сразу же место пластиковых пробирок в стойку, погруженной в жидком азоте. Главное не предварительно охладите трубы перед вставкой фильтр как трубы будет взорваться.
      3. После > 30 s, место трубку в морозильной камере-80 ° C для последующего извлечения РНК. После каждого фильтрации очистки и заново соберите систему фильтрации. Промойте систему, потянув воды 10 s без фильтра диска. Наконец вытрите системы с бумажным полотенцем.
    6. Разбавьте 4 h культуры в различных колбы для различных точек времени, таким образом, чтобы каждый настой достигает середины журнала концентрации (~ 1-2 x 107 кл/мл) в точке указано время гипоксии.
      Примечание: В таблице 1 показаны разведений, которые были использованы для гаплоидным штамма одичал типа S288C HAP1+ . Мы рекомендуем вам проверить каждого штамма в этих условиях гипоксических культуры и соответственно корректировать разведениях.
    7. После того, как клетки и СМИ добавляются колбы, замените алюминиевой фольги, охватывающих колбу, открытие с пробкой, содержащий две стеклянные трубки вставляется.
    8. Место колбы в инкубаторе в макете, определены ранее.
    9. Надежно подключите труб, как показано на рисунке 1.
    10. Проверьте, что все пробки плотно толкнул в колбу отверстия.
  10. В момент времени 0 откройте клапан-регулятор. Затем установите расходомер до 3 Л/мин.
    Примечание: Восходящей будет наблюдаться в обеих водных настоев, указанием надлежащего газового потока. Если это не так, проверьте, что все пробки плотны и трубки присоединена правильно.
  11. Закройте инкубатора и установите скорость встряхивания ~ 200 об/мин. Запустите таймер.
  12. Перед каждой точке времени настроить фильтр системы, как описано выше в шаге 1.9.3.
  13. В каждый момент времени (например, 5 минут, 10 минут и т.д.) у двух человек быстро обработать клетки следующим образом:
    1. Первого лица: удалите соответствующие настой из держателя и вынуть пробку (с стеклянная трубка прилагается).
      Примечание: Это не нарушит поток N2 к любой из оставшихся колбы культуры, но временно прерывания потока в последний ловушку воды.
    2. Второе лицо: Пипетки 1 мл культуры и обойтись в кювет. Подсоедините трубку от культуры настой, который сейчас находится в конце строки до последней ловушку воды (одна трубка и одна пробка будут удалены в процессе.). Затем измерения концентрации клеток в кювет, как описано выше в шаге 1.9.4.
    3. Первого лица: вылейте оставшуюся часть культуры в системе вакуумной фильтрации, а затем выполнить фильтрацию и замораживания, как описано выше в шаге 1.9.5.
  14. Закончив все моменты времени, выключите газ N2 . Сначала закройте регулятор и ждать давление, чтобы освободить и затем отключить расходомер. Наконец разбирать систему и очистить все материалы с водой, а затем на 70% спирте.

2. РНК добыча

  1. Подготовьте RLT буфер для очистки столбец РНК, как описано в Таблица материалов.
  2. Подготовка рабочего раствора DNase, добавив 10 мкл DNase Стоковый раствор 70 мкл буфера RDD на сэмпл (см. Таблицу материалов).
  3. Удаление 50 мл пробирки, содержащие фильтры и клетки из морозильной камеры-80 ° C и место на лед таять (~ 15 мин). Выполните следующие действия с трубками на льду.
  4. Метка 2 мл трубки колпачок и разместить их на льду, одна трубка для каждого образца. Добавьте ~0.6 мл кислоты промывают бисера в каждой трубе, с помощью пробки microcentrifuge 1,5 мл совок и измерить бисер.
  5. Добавьте 0,6 мл холодного RLT буфера в 50 мл трубки.
  6. Накапайте вверх и вниз, чтобы удалить клетки из фильтра и приостановить в раствор. Избегайте, позволяя фильтр остаются в решении, как фильтр будет впитывать решение. Удалить все решения впитывается в фильтр с помощью кончика пипетки выжать фильтр к стене трубы.
  7. Передать все жидкости из 50 мл трубки-колпачок пробирки, содержащие бусины.
  8. Поместите колпачок трубы в гомогенизатор мельница шарик и запустить за 1 мин.
    Сразу же место трубы на льду для трех мин. Опять же вставьте трубки в гомогенизатор и запустить за 1 мин.
  9. Удаление трубы из гомогенизатор и место на льду на 5 мин. Бисер будет располагаться в нижней части трубы.
  10. Выполните остальные шаги при комнатной температуре.
  11. С помощью пипетки, передавать только lysate (~ 350 мкл), избегая бисер, чтобы новые пробки microcentrifuge 1,5 мл.
  12. Microcentrifuge за 2 мин макс скорость и затем передать новые пробки microcentrifuge 1,5 мл супернатант.
  13. Добавьте 1 объем 70% этанола (сделанные из 200 доказательство молекулярной биологии класс этанола). Смешайте хорошо закупорить.
  14. Передача решения и любые поспешные РНК столбец, который был помещен внутрь 2-мл пробирку коллекции.
  15. Центрифуги для 15 s на ≥12, 000 x g и отмены потока через (жидкость в трубе).
  16. 350 мкл буфера RW1, в столбце. Центрифуги для 15 s на ≥12, 000 x g и отмены потока через.
  17. 80 мкл DNase I инкубации микс для столбца мембраны (не получить на сторонах трубки) и позволить сидеть в течение 15 мин.
  18. Мкл 350 буфера RW1 столбец. Microcentrifuge 15 s на ≥12, 000 x g и отмены потока через.
  19. Добавьте 500 мкл буфера НПП в столбце. Поток через Microcentrifuge 15 s на ≥12, 000 x g и отменить.
  20. Добавьте 500 мкл буфера НПП в столбце. Microcentrifuge за 2 мин на ≥12, 000 x g.
  21. Осторожно удалите столбец и поместите в новой коллекции 2-мл пробирку. Microcentrifuge на полной скорости в течение 1 мин (полностью высохнуть мембраны).
  22. Отказаться от сбора трубки и столбце в пробки microcentrifuge 1,5 мл. 30 мкл РНКазы свободной воды, в столбце мембраны.
  23. Элюировать РНК из столбца по microcentrifuging за 1 мин на ≥12, 000 x g. При загрузке столбцы в microcentrifuge, убедитесь, что крышки коллекции трубки сталкиваются в направлении центрифуги вращается, чтобы предотвратить крышками, облом.
  24. Мкл еще 30 РНКазы свободной воды для столбца мембраны, сохраняя столбец в том же пробки microcentrifuge.
  25. Microcentrifuge за 1 мин на ≥12, 000 x g, так что окончательный элюата объем 60 мкл.
  26. Храните каждый 1,5 мл трубка, содержащая 60 мкл РНК в морозильной камере-80 ° С.

3. Определение концентрации РНК и качества

  1. Измерение концентрации РНК и ДНК в каждой пробе РНК, используя флуориметр (, (b) ДНК-РНК конкретных и флуоресцентных красителей и трубок (c) анализа, как указано в Таблице материалов. Следуйте инструкциям флуориметр и красители.
  2. Кроме того, измерения концентрации нуклеиновых кислот с УФ спектрофотометры на 260 Нм.
    Примечание: Чтение260 A 1.0 является эквивалентом ~ 40 мкг/мл одноцепочечной РНК.
  3. Тест качества РНК, запустив РНК на анализатор коммерческих нуклеиновой кислоты (см. Таблицу материалов) или на стандартный формальдегида/агарозы гель 26.

4. РНК seq анализ

  1. От суммарного РНК составляют 21 µL 100 нг/мкл РНК в РНКазы свободной воды. Используйте 1 мкл этой 21 мкл для тестирования концентрации РНК как указано выше. Отправить оставшиеся 20 мкл (2 мкг) всего РНК к внешней последовательности центр для обогащения мРНК, подготовка стренги библиотеку (с восемью или более штрих-кодов для мультиплексирования) и виртуализации (см. Таблицу материалов). Кроме того, локально выполнить мРНК обогащения и подготовка библиотеки, а затем представить библиотеку для виртуализации.
  2. Бассейн восемь или более мультиплексированных образцы и последовательность в одной полосе секвенсор следующего поколения.
  3. Скачать файл FASTQ, содержащий все считывает последовательность и читает соответствующий индекс. Кроме того Скачайте текстовый файл, содержащий мультиплекс штрих-кодов.
    Примечание: Индекс считывает могут присутствовать в отдельный файл FASTQ. Поместите все эти файлы в один каталог.
  4. Поместите сценарий оболочки, представленная здесь, «fastq_pipeline.sh», в том же каталоге. Редактировать этот сценарий в случае необходимости для эксперимента и каталогов компьютера.
    Примечание: Этот сценарий содержит обширные аннотации, объясняя шаги. Вкратце качество сценария планки читает, сопоставляет читает генома и генерирует файл с разделителями табуляции, содержащий количество считываний за гена для каждого образца.
  5. Депозит в Омнибус выражение гена NCBI до публикации 27FASTQ файлы и необработанные данные чтения. Следуйте инструкциям для «Отправка последовательности высокой пропускной способности данных GEO»: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/info/seq.html.
  6. Импорт данных чтения count в R статистики окружающей среды и выполнить статистический анализ, используя сценарий R, представленная здесь, «time_course_script. R». Редактировать этот сценарий в случае необходимости для эксперимента и каталогов компьютера.
    Примечание: Этот сценарий содержит обширные аннотации, объясняя шаги. Вкратце этот сценарий импортирует читаемых данных, нормализует читает, идентифицирует генов, которые существенно измениться в течение времени, выполняет анализ СПС и графики выражение отдельных генов.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Гипоксия время курс и РНК seq анализа проводились независимо друг от друга три раза. Для изучения воспроизводимость трех реплицирует, данных выражение гена для всех генов был проанализирован с помощью анализ главных компонент (PCA). Рисунок 2 показывает, как изменить образцы на первых двух основных компонентов, которые вместе представляют 58,9% изменчивости. Этот анализ показал, что каждый раз курс exhibits подобные изменения (как изображено на аналогичные формы каждой кривой). Кроме того последние два реплицирует были больше похожи друг к другу, чем первый репликации. Это согласуется с тем фактом, что два последних реплицирует были выполнены тем же лицом, используя же серий компоненты средств массовой информации, в то время как первая репликация была исполнена другой человек и пакетов. Этот вывод подчеркивает тот факт, что последовательность техники и химических веществ является важным фактором в получении высокая воспроизводимость. Наконец PCA анализ полезен при оценке ли выбранное время точек захватить крупные изменения, которые происходят во время курса. Сосредоточение внимания на одной репликации кривой, есть большие расстояния между более ранних образцов, указывающие большие изменения в экспрессии генов и меньше расстояния между более поздних образцов, указанием мелких изменений и, возможно, в конце перехода от аэробных к Экспрессия генов гипоксии.

Далее DESeq2 пакет в R25 был использован для идентификации генов, показаны существенные изменения по сравнению с время 0 (p значения в дополнительной таблице 1). Эти значительные генов, 607 изменилась более чем 4 раза (фолд изменения в дополнительной таблице 1). Выражение закономерности этих генов были объединены, чтобы аналогичным образом регулируется генов были сгруппированы вместе и затем отображаются в heatmap (рис. 3). Эта цифра показывает, что изменения выражения являются весьма воспроизводимых через реплицирует. Кроме того гены экспонат переменной кинетики с увеличивается и уменьшается в выражении. Многие гены демонстрируют пик увеличение или уменьшение на 30 мин, вероятно, из-за временной стресс ответ 13.

На рисунке 4 изображена выражение два downregulated и две upregulated генов, ранее установлено O2-регулируемые. Гены изменить выражение можно воспроизвести, с аналогичными кривых между биологической реплицирует. Гена с наименее изменчивость между реплицирует является DAN1, с перекрывающимися кривых. Гена с наиболее изменчивости является CYC1, возможно потому, что экспрессия этого гена естественно переменной. Эта цифра также показывает, что изменения большого фолд (до 1,024-fold) были обнаружены.

Для выявления клеточных процессов, обогащенный набор из 607 O2-регулируется генов, GO термин обогащения была выполнена (Дополнительная таблица 2). Как и ожидалось, многие O2-регулируемые гены играют роль в клеточное дыхание, другие аспекты метаболизма и в рибосомных процессов 13.

Пример # Время в гипоксии Культура мл + мл YPD
2 5 мин 20 мл + 0 мл
3 10 мин 20 мл + 0 мл
4 30 мин. 20 мл + 0 мл
5 60 мин 10 мл + 10 мл
6 120 мин 10 мл + 10 мл
7 180 мин 5 + 15 мл
8 240 мин 4 + 16 мл

Таблица 1. Разведений клетки выполнена в момент времени 0.
Эти разведений экспериментально определены приведет к середине журнала концентрации (1-2 × 107 кл/мл) после указанного времени в N2.

Дополнительная таблица 1. Выражение и статистические данные для всех генов.
Эта таблица содержит имя систематического, скорректированные p значения для семи DESeq2 испытаний (т.е., 5 мин против 0 мин., 10 мин против 0 мин и т.д.), минимум скорректирована p значение и log2 максимального сгиба изменения. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы загрузить этот файл.

Дополнительная таблица 2. Перейти срок результаты обогащения.
Эта таблица показывает идти процессы, их представительство в наборе 607 O2-регулируется генов и их представительство в геноме. Затем хи-квадрат тест использовался для выявления GO термины, которые были значительно более - или недостаточно представлены в наборе 607 генов. GO, был проведен анализ обогащения с помощью GO Slim Mapper SGD 28. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы загрузить этот файл.

Figure 1
Рисунок 1. Гипоксия настройки для принимать время точек без нарушения потока газа в позднее время очков.
Важно, что все соединения оставаться безопасным, как описано в протоколе. Обратите внимание на расположение короткий (9 см) и долго (17 см) стеклянных трубок. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 2
Рисунок 2. Анализ основных компонентов (PCA) показывает отношения между тремя биологических реплицирует.
Каждая кривая имеет 0 мин до 240 мин образцов в порядке. В СПС было использовано выражение гена log2 нормализуется для всех генов. PC1 составляет 34,7% общей дисперсии и PC2 приходится 24,2%. Черная линия является первым реплицировать, красная линия является вторым, и синяя линия является третьим. Обратите внимание, что стрелки используются отметить 240 мин время точка в различных образцах. В R, используя функцию prcomp (Q-режиме, или Сингулярное разложение) на log2-трансформированных матрицы, содержащие гены в колонках и моменты времени в строках 29был проведен анализ главных компонент (PCA). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 3
На рисунке 3. Heatmap показаны выражение 607 генов определены как O2-регулируемые.
Эти гены были значительными в по крайней мере один из тестов DESeq2 и изменить выражения, более чем в 4 раза. Показана журнала2(относительное выражение). Красный = увеличение выражение. Зеленый = снижение выражение. Интенсивность цвета пропорциональна степени изменения. Перед созданием heatmap в TreeView 30, экспрессии генов был k средства сгруппированы с k = 10 в кластере 3.0 31. Ключ ниже heatmap показывает масштаб. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 4
Рисунок 4. Реплицирует уровни mRNA относительной четырех генов с течением времени в три.
Черная линия является первым реплицировать, красная линия является вторым, и синяя линия является третьим. Общие/систематического гена имена являются CYC1/YJR048W, ERG5/YMR015C, DAN1/YJR150Cи NCE103/YNL036W. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Дополнительный файл 1. fastq_pipeline.sh
Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы загрузить этот файл.

Дополнительный файл 2. time_course_script. R
Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы загрузить этот файл.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

В этом исследовании уровни mRNA для всех генов был измерен при гипоксии в дрожжей S. cerevisiae. Целью было анализировать как глобальные изменения выражения гена из-за роста в контролируемой среде, вблизи аноксии. Некоторые шаги были приняты для обеспечения тщательно контролируемых и воспроизводимый метод, описанный здесь. Во-первых, клетки были подвержены точно определенная гипоксических среды: 99,999% N2 в богатых СМИ (YPD). Другие исследования гипоксии закрыты колбу или трубки воздуха 32, использовали гипоксия подражательный кобальта хлорида 33или занятых вызывая гипоксия-анаэробные камеры или сумки 34. Каждый из этих методов может привести к различной гипоксии или других нежелательных экологических изменений. Было бы полезным для изучения экспрессии генов пока систематически различной газовой смеси (например, 90% N2 и 10% O2), как дрожжи в дикой природе, вероятно, испытывать меньше тяжелые гипоксические условия. Во-вторых эргостерол и ненасыщенных жирных кислот (например, анимации 80) не были добавлены в культуре средств массовой информации, поскольку они влияют экспрессии генов, как описано во введении. В-третьих чтобы свести к минимуму изменения выражения гена, вызванные различных этапах роста, эмпирически определила разведений были выполнены так, что когда культура достигла точки времени, он был в середине журнала фазе роста (~ 1-2 x 10-7 кл/мл). Четвертый, быстрой фильтрации и замораживания (~ 15 s) клеток, которые были удалены от гипоксии является критическим, как могут произойти изменения выражения гена в < 5 минут воздействия O2, как это происходит, когда клетки собираются центрифугированием (данные не показаны). Можно сократить время, которое клетки подвергаются O2 , выполняя роста и уборки клеток в анаэробных капот или камеры. В-пятых соответствующие штамм был выбран для этого исследования; в соответствии с другими геномных исследований, применялся общий фон S288C лаборатории штамм. Однако S288C штаммов содержит аллеля мутанта hap1 и таким образом была отремонтированы 11. Это позволило изучение генов, как CYC1 , которые реагируют на уровнях2 O через фактор транскрипции Hap1 11.

Моменты времени были выбраны потому, что они выставлены изменения выражения гена большой в предыдущих экспериментах гипоксии. Результаты, показанные здесь может информировать будущих экспериментов. Например было бы полезно использовать более высокое разрешение времени точек во время интервалов, которые показывают большие изменения (например, 0 до 30 мин гипоксии) более точно захватить различные кинетики. Кроме того позднее время очков, за пределами периода времени assayed здесь (то есть, 4 h гипоксии) могут выявить дальнейшие изменения выражения.

РНК seq был использован для измерения уровня мРНК, потому что его воспроизводимости и широкий динамический диапазон позволяют измерения большого фолд изменения 18,35. РНК была получены путем механического нарушения клеток с помощью энергично потряс бусины и очищенная на столбец. Другие методы очистки РНК может использоваться, как горячие фенола 36. В идеале концентрация РНК будет в диапазоне 200 нг/мкл - 1000 нг/мкл, поскольку концентрации РНК будет разбавляют до 100 нг/мкл для обратной транскрипции и библиотека подготовки. Следует измерять концентрации РНК с флуориметр и РНК конкретных краситель; Спектрофотометр UV ограничено, потому что он измеряет общую концентрацию нуклеиновых кислот, состоящий из РНК и ДНК. Качество РНК определяется электрофорез геля; рибосомной РНК полосы должны быть четко на геле и размазывая указывает РНК деградации. Здесь обогатились мРНК стенограммы, но есть различные методы для изоляции различных типов РНК 20 , также могут быть важны в ответ.

Для экономии ресурсов, между 8 и 12 образцов были мультиплексированием и виртуализированных вместе в одной полосы, что приводит к в среднем по крайней мере 693 читает для каждого образца, достаточно для герметизации определить количество считываний за гена в геном. В самом деле более чем 12 образцов может мультиплексируются в одной полосы, вероятно привело адекватных выборки большинства генов. Для того, чтобы вычислить среднее читает за гена, общее количество операций чтения, которые сопоставлены с генов (в выходном файле HTSeq) была разделена на количество генов, оказываемой HTSeq (в этом исследовании, 7140). При оценке максимальное количество образцов, которые могут быть мультиплексируются в одной полосе, рассмотрим гены интереса, которые exhibit низкий выражение (т.е., низкая нормированный подсчитывает), используя данные из этого и других РНК seq исследований. Если нормализованных чтения графов для ген существенно различаться по реплицирует, то количество операций чтения могут быть слишком низкими, предполагая, что меньше образцы следует мультиплексируются в последовательности Лейн.

Секвенирование нового поколения будет генерировать FASTQ файлы, содержащие читает и другая информация. Если мультиплексирования была выполнена, может быть создан файл штрих-кодов и дополнительный файл FASTQ. Эти файлы могут быть загружены для местного анализа, как и этот протокол. Кроме того есть несколько онлайн последовательности следующ gen средства анализа для тех, кто не знаком с командной строки функции или р. В этой связи мы рекомендуем 37 галактики (https://usegalaxy.org/) и GenomeSpace (http://www.genomespace.org/). В настоящем Протоколе для FASTQ обработки и выражение анализа используются два сценария, которые были написаны авторами. Сценарии являются хорошо аннотированных и может быть отредактированы для различных экспериментальных образцов и настроек компьютера. Кроме того два сценарии и таблицы «Материалы» предоставляют веб-сайты для скачивания инструментов, используемых в этих сценариях. Первый сценарий, «fastq_pipeline.sh», является сценарий оболочки для запуска командной строки в UNIX/Linux терминал. Этот сценарий де мультиплексов оригинальный файл FASTQ, содержащий все гласит, полученные из одной полосы секвенсора, таким образом создавая один FASTQ файл для каждого образца, в этом Лейн. Далее читает в каждом файле FASTQ являются качество, отделаны с использованием Trimmomatic с параметрами по умолчанию 21. Обрезанные читает затем сопоставляются геном S. cerevisiae S288C ссылка (SGD R64-1-1_20110203) с помощью TopHat2 с параметрами по умолчанию 22. Наконец, сценарий использует HTSeq определить количество операций чтения, сопоставляемые каждой аннотированной функция 19.

Второй сценарий, «time_course_script. R», также были написаны авторами и выполняется в рамках статистической среды R 24. Сценарий первоначально импорта являются чтения количество данных, генерируемых HTSeq. Каждый образец считается момент времени и таким образом проводится относительно других точек времени. Сырые чтения графов затем импортируются в пакет R, DESeq2 25, с тем чтобы выявить гены, которые выражаются дифференцировано в любой из моментов времени по сравнению с первым (т.е., аэробика, время 0). Из-за его гибкости DESeq2 может использоваться для выполнения других статистических тестов, например ли выражение меняется как функция времени 13. Кроме того другие инструменты, используя параметрические и непараметрические статистики для РНК seq читать данные могут быть используется 20. Скрипт затем нормализует чтения графов для контроля степени последовательности каждого образца, и log2 превращает отсчеты. Эти обработанные читает используются для выполнения PCA анализ, чтобы определить максимальное фолд изменение для каждого гена и для создания графов выражение на рисунке 4.

Важный вопрос, как наилучшим образом использовать статистические данные для идентификации генов, которые значительно реагировать гипоксии. По крайней мере три биологических реплицирует время курса необходимы для расчета естественной изменчивости каждого гена и таким образом определить гены, которые отвечают к гипоксии более значительно, чем ожидалось, случайно. Кроме того это можно успешно выявить гены, которые реагируют с течением времени, без биологической реплицирует 13,25,,3839. Основной недостаток этих методов является, что они не принимают во внимание биологические изменчивость каждого гена. Однако если не выполняется репликация РНК seq, изменения выражения индивидуального гена может проверяться, выполняя, что RT-ПЦР с несколькими биологического реплицирует 13.

Есть два основных преимущества для оценки нескольких точек времени ответа. Во-первых, как обсуждалось ранее, (особенно в Рисунок 2), длительность курса определяет интервалы, экспонируется большое выражение изменения, информирование о том, требуются ли дополнительное время точек для улучшения разрешения кинетики или соблюдать более поздних событий ответ. Во-вторых время курс позволяет дифференциации каждый ген выражение кинетики. Это помогает при выявлении уникальных сигнальных путей, которые действуют в определенное время в течение ответ и дает представление о времени начала и завершения сигнализации. В частности кластер генов по шаблону, которая была выполнена здесь привели к наборы совместно регулируемых генов. Промоутеры набор генов может делиться сайт связывания фактор транскрипции, предполагая, что фактор транскрипции становится активным, когда гены изменить выражение.

При изучении клеточного ответа, наблюдаемой изменчивости идеально за счет стимулов (например, гипоксии), а не другие экспериментальные переменные. Однако как видно на рисунке 2, индивидуальный исследователь и/или пакеты компонентов средства массовой информации делают значительный вклад изменчивость в экспрессии генов. Таким образом эти параметры должны рассматриваться для достижения высокой воспроизводимостью и минимальным экспериментальных изменчивости. Как мало времени, как можно скорее следует отделить каждый реплицировать, потому, что экспериментальные переменные более склонны менять как проходит время.

В заключение этот метод может использоваться для точно отслеживать изменения генома общесистемной уровни mRNA (или другие события, такие как изменения гистона или уровни белка) во время курса гипоксии. Метод может быть адаптирована для других организмов, особенно видов микроорганизмов, которые могут быть выращены в жидком культуры. Такой анализ генома всей время курс будет дополнять исследования морфологии клеток, белков активности и метаболизма. Вместе эти данные приведет к богаче понимание клеточного ответа.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Авторы не имеют ничего сообщать.

Acknowledgments

Мы благодарим Льюис-Сиглер Институт интегративной геномики последовательности основного фонда в Принстонском университете для технических консультаций и подготовки библиотеки РНК и последовательности. Эта работа была поддержана грантов от Университет Роуэна и низ NIGMS R15GM113187 M.J.H.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Enclosed dry incubator Thermo Scientific MaxQ 4000 Set at 30 °C. Modify the door to allow entry of one Tygon tube. Alternatively, use the New Brunswick G25 incubator, which contains a tube port. Do not use an open-air water shaker, as condensation will collect in the tubes between flasks, possibly cross-contaminating cultures.
Micro-analysis Filter Holder Millipore XX1002530 25mm diameter, stainless steel support, no. 5 perforated silicone stopper mounts in standard 125 mL filtering flask
Strong vacuum Edwards E-LAB 2 The “house” vacuum may be too weak. Alternatively, use an electric-power portable vacuum pump like the one listed here.
1,000 mL flask To act as vacuum trap.
~2 foot lengths of Heavy Wall Vacuum Tubing, inner diameter 3/8 in, outer diameter 7/8 in Tygon 38TT Two pieces: the first connects vacuum to trap, and the second connects trap to filter system.
High-pressure N2 gas tank 99.999% purity, >1,000 psi, with a regulator and gas flow controller
Autoclaved 500 mL flask Opening covered with aluminum foil. One for each yeast strain.
Autoclaved 250 mL flasks Openings covered with aluminum foil. One for each time point plus two for water traps.
Flask stoppers (size 6, two holes with 5 mm diameter) Sterilized with 70% ethanol. One for each flask.
Glass tubing, length 9 cm or 17 cm, inner diameter 2 mm, outer diameter 5 mm Sterilized with 70% ethanol. Two tubes for each flask. Place into the holes of each stopper. See Figure 1 for placement of 9- vs 17- cm tubes.
~25 cm lengths of plastic tubing, inner diameter 5 mm Tygon E-3603 One piece for each flask. Sterilized with 70% ethanol.
Sterile filter discs Millipore HAWP02500 25 mm diameter, 0.45 µm pore size, one for each time point
Sterile dH2O (~100 mL)
1 mL cuvettes For measuring OD600 (i.e., cell concentration)
50 mL sterile centrifuge tubes One for each time point
Clean and sterile tweezers
liquid nitrogen For freezing cells
acid-washed beads Sigma G8772 Keep at 4 °C for lysing cells
Qiagen RNeasy Mini Kit Qiagen 74104 For RNA column purification
Qiagen RLT buffer Prepare by adding 10 µL of β-Mercaptoethanol per 1 mL of RLT buffer, keep at 4 °C.
2 mL collection tubes Qiagen included in the Qiagen Rneasy Mini Kit
Buffer RPE Qiagen included in the Qiagen Rneasy Mini Kit
Buffer RW1 Qiagen included in the Qiagen Rneasy Mini Kit
DNase I stock and working solutions Qiagen 79254 The DNase I enzyme comes as lyophilized powder in a glass vial. Using a sterile needle and syringe, inject 550 µL of RNase-free water (provided in Qiagen kit) into the vial. Mix by gently inverting the bottle. To avoid denaturing the enzyme, do not vortex. Using a pipet, remove this stock solution from the vial and store in freezer (-20 °C) in single-use aliquots (80 µL each). The stock solution should not be thawed and refrozen.
Buffer RDD Qiagen included in the Qiagen DNase Kit
Ice cold 2 mL screw-cap tubes For lysing cells during RNA extraction
bead mill homogenizer Biospec Mini-Beadbeater-24 112011 Keep in cold room
Bacto Peptone BD DF0118 for liquid YPD media
Bacto Yeast Extract BD DF0886 for liquid YPD media
glucose Fisher D16 for liquid YPD media
Qubit assay tubes Thermo Fisher Q32856 for measuring nucleic acid concentration
Quant-iTTM dsDNA BR Assay Kit Thermo Fisher Q32853 for measuring nucleic acid concentration
Quant-iTTM RNA Assay Kit Thermo Fisher Q32855 for measuring nucleic acid concentration
Qubit Fluorometer Thermo Fisher Q33216 for measuring nucleic acid concentration
Commercial electrophoresis system Agilent Bioanalyzer 2100 for measuring nucleic acid quality
Next-generation sequencer Illumina HiSeq 2500 for sequencing libraries
automated liquid handling system Wafergen Apollo 324 for creating sequencing libraries
PrepX PolyA mRNA Isolation Kit Wafergen 400047 for isolating mRNA from total RNA
PrepX RNA SEQ for Illumina Library Kit Wafergen 400039 for creating strand-specific sequencing libraries from total RNA
Barcode Splitter https://toolshed.g2.bx.psu.edu/repository?repository_id=7119c4f7a89efa57&changeset_revision=e7b7cdc1834d
Samtools, which includes the gzip command http://www.htslib.org/download/
Trimmomatic http://www.usadellab.org/cms/?page=trimmomatic
Bowtie2 (installed before TopHat) http://bowtie-bio.sourceforge.net/bowtie2/index.shtml
TopHat https://ccb.jhu.edu/software/tophat/index.shtml
HTSeq http://www-huber.embl.de/HTSeq/doc/overview.html
R (installed before R Studio) https://cran.rstudio.com
R Studio (free version) https://www.rstudio.com/products/rstudio/download/

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Semenza, G. L. Oxygen sensing, homeostasis, and disease. New Eng. J Med. 365 (6), 537-547 (2011).
  2. Butler, G. Hypoxia and gene expression in eukaryotic microbes. Annu. Rev. Micro. 67, 291-312 (2013).
  3. Ratcliffe, P. J. Oxygen sensing and hypoxia signalling pathways in animals: the implications of physiology for cancer. J. Physiol. 591 (Pt 8), 2027-2042 (2013).
  4. Rosenfeld, E., Beauvoit, B. Role of the non-respiratory pathways in the utilization of molecular oxygen bySaccharomyces cerevisiae. Yeast. 20 (13), 1115-1144 (2003).
  5. Ter Linde, J. J., et al. Genome-wide transcriptional analysis of aerobic and anaerobic chemostat cultures of Saccharomyces cerevisiae. J. Bacteriol. 181 (24), 7409-7413 (1999).
  6. Ter Linde, J. J., Steensma, H. Y. A microarray-assisted screen for potential Hap1 and Rox1 target genes in Saccharomyces cerevisiae. Yeast. 19 (10), 825-840 (2002).
  7. Kwast, K. E., et al. Genomic analyses of anaerobically induced genes in Saccharomyces cerevisiae: functional roles of Rox1 and other factors in mediating the anoxic response. J. Bacteriol. 184 (1), 250-265 (2002).
  8. Becerra, M., et al. The yeast transcriptome in aerobic and hypoxic conditions: effects of hap1, rox1, rox3 and srb10 deletions. Mol. Microbiol. 43 (3), 545-555 (2002).
  9. Lai, L. -C., Kosorukoff, A. L., Burke, P. V., Kwast, K. E. Dynamical remodeling of the transcriptome during short-term anaerobiosis in Saccharomyces cerevisiae: differential response and role of Msn2 and/or Msn4 and other factors in galactose and glucose media. Mol. Cell. Biol. 25 (10), 4075-4091 (2005).
  10. Lai, L. C., Kosorukoff, A. L., Burke, P. V., Kwast, K. E. Metabolic-State-Dependent Remodeling of the Transcriptome in Response to Anoxia and Subsequent Reoxygenation in Saccharomyces cerevisiae. Euk. Cell. 5 (9), 1468-1489 (2006).
  11. Hickman, M. J., Winston, F. Heme levels switch the function of Hap1 of Saccharomyces cerevisiae between transcriptional activator and transcriptional repressor. Mol. Cell. Biol. 27 (21), 7414-7424 (2007).
  12. Hickman, M. J., Spatt, D., Winston, F. The Hog1 mitogen-activated protein kinase mediates a hypoxic response in Saccharomyces cerevisiae. Genetics. 188 (2), 325-338 (2011).
  13. Bendjilali, N., et al. Time-Course Analysis of Gene Expression During the Saccharomyces cerevisiae Hypoxic Response. G3. 7 (1), 221-231 (2017).
  14. Chellappa, R., et al. The membrane proteins, Spt23p and Mga2p, play distinct roles in the activation of Saccharomyces cerevisiae OLE1 gene expression. Fatty acid-mediated regulation of Mga2p activity is independent of its proteolytic processing into a soluble transcription activator. J. Biol. Chem. 276 (47), 43548-43556 (2001).
  15. Abramova, N. E., et al. Regulatory mechanisms controlling expression of the DAN/TIR mannoprotein genes during anaerobic remodeling of the cell wall in Saccharomyces cerevisiae. Genetics. 157 (3), 1169-1177 (2001).
  16. Hughes, A. L., Todd, B. L., Espenshade, P. J. SREBP Pathway Responds to Sterols and Functions as an Oxygen Sensor in Fission Yeast. Cell. 120 (6), 831-842 (2005).
  17. Gaisne, M., Bécam, A. M., Verdière, J., Herbert, C. J. A "natural" mutation in Saccharomyces cerevisiae strains derived from S288c affects the complex regulatory gene HAP1 (CYP1). Curr. Gen. 36 (4), 195-200 (1999).
  18. Wang, Z., Gerstein, M., Snyder, M. RNA-Seq: a revolutionary tool for transcriptomics. Nat. Rev. Gen. 10 (1), 57-63 (2009).
  19. Anders, S., Huber, W. Differential expression analysis for sequence count data. Genome Biol. 11 (10), R106 (2010).
  20. Conesa, A., et al. A survey of best practices for RNA-seq data analysis. Genome Biol. 17 (1), 13 (2016).
  21. Bolger, A. M., Lohse, M., Usadel, B. Trimmomatic: a flexible trimmer for Illumina sequence data. Bioinf. 30 (15), 2114-2120 (2014).
  22. Kim, D., Pertea, G., Trapnell, C., Pimentel, H., Kelley, R., Salzberg, S. L. TopHat2: accurate alignment of transcriptomes in the presence of insertions, deletions and gene fusions. Genome Biol. 14 (4), R36 (2013).
  23. Anders, S., Pyl, P. T., Huber, W. HTSeq--A Python framework to work with high-throughput sequencing data. Bioinf. 31 (2), 166-169 (2015).
  24. R Core Team. R: A Language and Environment for Statistical Computing. , R Foundation for Statistical Computing. Vienna. Available from: https://www.R-project.org (2015).
  25. Love, M. I., Huber, W., Anders, S. Moderated estimation of fold change and dispersion for RNA-seq data with DESeq2. Genome Biol. 15 (12), 550 (2014).
  26. Brown, T., Mackey, K., Du, T. Analysis of RNA by Northern and Slot Blot Hybridization. Curr. Prot. Mol. Biol. 74, 4.9.1-4.9.19 (2004).
  27. Edgar, R., Domrachev, M., Lash, A. E. Gene Expression Omnibus: NCBI gene expression and hybridization array data repository. Nuc. Acids Res. 30 (1), 207-210 (2002).
  28. Cherry, J. M., et al. Saccharomyces Genome Database: the genomics resource of budding yeast. Nuc. Acids Res. 40, D700-D705 (2012).
  29. Hothorn, T., Everitt, B. S. A Handbook of Statistical Analyses using R. , 3rd ed, CRC Press: Taylor & Francis Group. Boca Raton, FL. (2014).
  30. Saldanha, A. J. Java Treeview--extensible visualization of microarray data. Bioinformatics. 20 (17), 3246-3248 (2004).
  31. Eisen, M. B., Spellman, P. T., Brown, P. O., Botstein, D. Cluster analysis and display of genome-wide expression patterns. Proc. Nat. Acad. Sci. 95 (25), 14863-14868 (1998).
  32. Davies, B. S. J., Rine, J. A Role for Sterol Levels in Oxygen Sensing in Saccharomyces cerevisiae. Genetics. 174 (1), 191-201 (2006).
  33. Meena, R. C., Kumar, N., Nath, S., Chakrabarti, A. Homologous Recombination is Activated at Early Time Points Following Exposure to Cobalt Chloride Induced Hypoxic Conditions in Saccharomyces cerevisiae. Ind. J. Microb. 52 (2), 209-214 (2012).
  34. Snoek, I. S. I., Tai, S. L., Pronk, J. T., Yde Steensma, H., Daran, J. -M. Involvement of Snf7p and Rim101p in the transcriptional regulation of TIR1 and other anaerobically upregulated genes in Saccharomyces cerevisiae. FEMS Yeast Res. 10 (4), 367-384 (2010).
  35. Ellahi, A., Thurtle, D. M., Rine, J. The Chromatin and Transcriptional Landscape of Native Saccharomyces cerevisiae Telomeres and Subtelomeric Domains. Genetics. 200 (2), 505-521 (2015).
  36. Collart, M. A., Oliviero, S., et al. Preparation of yeast RNA. Curr. Prot. Mol. Biol. , (2001).
  37. Blankenberg, D., et al. Manipulation of FASTQ data with Galaxy. Bioinf. 24 (14), 1783-1785 (2010).
  38. Martini, P., et al. timeClip: pathway analysis for time course data without replicates. BMC Bioinf. 15, Suppl 5. (2014).
  39. Oh, S., Song, S., Grabowski, G., Zhao, H., Noonan, J. P. Time series expression analyses using RNA-seq: a statistical approach. BioMed Res. Int. 2013, 1-16 (2013).

Tags

Генетика выпуск 126 анаэробный аэробика транскриптом следующего поколения время курс дрожжи
Измерение уровня мРНК со временем во время дрожжей <em>S. cerevisiae</em> гипоксических ответа
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Willis, S. D., Hossian, A. K. M. N., … More

Willis, S. D., Hossian, A. K. M. N., Evans, N., Hickman, M. J. Measuring mRNA Levels Over Time During the Yeast S. cerevisiae Hypoxic Response. J. Vis. Exp. (126), e56226, doi:10.3791/56226 (2017).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter