Diese Studie wurde gemäß den ethischen Grundsätzen der Helsinkier Erklärung und den institutionellen Vorschriften für die Humanforschung durchgeführt. Die Studie wurde gemäß den ethischen Grundsätzen der Helsinkier Erklärung durchgeführt und vom Ethikkomitee des Volkskrankenhauses Xingtai, Abteilung für Dermatologie, genehmigt (Genehmigungs-ID: 2021[029]). Alle Teilnehmer gaben vor der Teilnahme eine schriftliche informierte Einwilligung ab.
Patientenauswahl
Insgesamt wurden über einen Zeitraum von 3 Jahren von Januar 2021 bis Dezember 2023 232 Patienten mit klinischer Vitiligo eingeschrieben. Alle Teilnehmer wurden mit nicht-segmentalem Vitiligo (generalisierter oder lokalisierter Typ) diagnostiziert und aufgrund des Fehlens oder Vorhandenseins neuer Läsionen innerhalb von 3 Monaten vor der Einschreibung als stabil oder progressiv klassifiziert. Krankheitsdauer und Verteilung der Läsion wurden zu Beginn erfasst. Die Aufnahmekriterien umfassten Personen im Alter von 18 bis 65 Jahren mit stabilem oder fortschreitendem Vitiligo, der von Dermatologen durch klinische Untersuchung, Wood's-Lampenbeleuchtung und Dermoskopie bestätigt wurde. Ausschlusskriterien waren Schwangerschaft, Laktation, photoallergische Störungen, systemische Autoimmunerkrankungen, schwere Leber- oder Nierenfunktionsstörungen sowie vorherige Anwendung von systemischen Kortikosteroiden, Immunsuppressiva oder Phototherapie innerhalb von 3 Monaten. Alle Eingriffe wurden unter kontinuierlicher ethischer Aufsicht durchgeführt, um den Komfort und die Sicherheit der Patienten während des gesamten Behandlungsverlaufs zu gewährleisten.
Studienübersicht und Behandlungsablauf
Der gesamte Arbeitsablauf der Studie, einschließlich Patientenaufnahme, Gruppenzuteilung, Nachuntersuchungen und Biomarker-Analyse, ist in Abbildung 1 dargestellt. Geeignete Teilnehmer wurden im Verhältnis 1:1 einer von zwei parallelen Studiengruppen zugeteilt: der 308-nm-Excimer-Laser-Monotherapiegruppe (Excimer-Laser allein; n = 116) und der Kombinationstherapiegruppe (308-nm Excimer-Laser plus orale Matrine; n = 116). Die Gruppenzuweisung erfolgte mit einer computergenerierten Zufallssequenz, die von einem unabhängigen Forschungsmitarbeiter erstellt wurde, der nicht an der Ergebnisbewertung beteiligt war; Die Zuweisungen wurden in fortlaufend nummerierte, versiegelte Umschläge gelegt und nach der Einschreibung geöffnet, um die Behandlungszuteilung zu bestimmen. Der therapeutische Arbeitsablauf bestand aus drei Hauptphasen: (1) Baseline-Bewertung und -dokumentation, (2) 12 Wochen aktive Behandlung gemäß dem zugewiesenen Regime und (3) Nachbehandlungsbewertung, einschließlich Labortests von Serumimmunglobulinen und entzündlichen Zytokinen. Jeder Patient erhielt einen standardisierten Behandlungsplan, identische Nachsorgeintervalle und einheitliche Laboranalyseverfahren. Klinische Fotografien und VASI-Bewertung wurden von Dermatologen durchgeführt, die für die Behandlungszuweisung blind waren. Alle Eingriffe wurden in der dermatologischen Phototherapie-Suite des Xingtai People's Hospital unter kontrollierten Umgebungsbedingungen durchgeführt (Raumtemperatur 22–24 °C, relative Luftfeuchtigkeit 40%–60%).
Vorbereitung des Behandlungsbereichs
Vor jeder Lasersitzung wurden die depigmentierten Zielbereiche vorsichtig mit steriler physiologischer Kochsalzlösung gereinigt und mit fusselfreiem medizinischem Gaze trocken getupft. Die läsionelle Haut wurde untersucht, um das Fehlen einer Infektion, Exkoriation oder Kruste zu bestätigen. Wenn bei einem einzigen Besuch mehr als eine Läsion behandelt wurde, wurde jede Läsion nacheinander vorbereitet und behandelt. Läsionen, die ein einziges Bestrahlungsfeld überstiegen, wurden in benachbarte Bestrahlungsfelder unterteilt, und die umliegende normale Haut wurde für jedes Feld mit einer undurchsichtigen, UV-blockierenden Schicht abgeschirmt, um unnötige Exposition zu minimieren. Patienten wurden angewiesen, topische Mittel, photosensibilisierende Kosmetika oder Parfüms für 24 Stunden vor der Behandlung zu vermeiden. Während des gesamten Eingriffs wurden sowohl vom Patienten als auch vom Bediener eine Schutzbrille getragen.
308-nm-Excimer-Laserbestrahlungsverfahren
Ein monochromatisches 308-nm-Xenonchlorid-(XeCl)-Excimer-Lasersystem wurde verwendet. Alle Lasersitzungen wurden von zwei ausgebildeten dermatologischen Ärzten nach einem standardisierten Protokoll durchgeführt, um eine konstante Energieausbeute, Bestrahlungsdistanz und Reproduzierbarkeit sicherzustellen. Die Geräteausgabe wurde vor jedem Behandlungstag mit einem kalibrierten UV-Leistungsmesser überprüft, und alle Systeme wurden wöchentlich von einem zertifizierten Techniker kalibriert, um eine Fehlermarge unter ±5 % zu halten. Vor der ersten Bestrahlung wurde die minimale Erythema-Dosis (MED) für jeden Patienten bestimmt, indem inkrementelle Dosen (100–400 mJ/cm²) auf kleine Testflächen am inneren Unterarm angewendet und die Erythemantwort nach 24 Stunden bewertet wurden; Die Ergebnisse wurden fotografiert und in Patientenakten festgehalten. Eine repräsentative MED-Dokumentation und eine Dosisanpassungstabelle von Sitzung zu Sitzung sind in ergänzender Tabelle 1 bereitgestellt. MED wurde definiert als die niedrigste Testdosis, die bei 24 Stunden ein klar erkennbares, gleichmäßiges Erythem erzeugt. Die Anfangsdosis der Behandlung wurde auf 80–90 % des individuellen MEDs festgelegt, und die anschließenden Dosisänderungen folgten einem vordefinierten Algorithmus basierend auf der vorherigen 24-Stunden-Erythemantwort (Erhöhung um 10–20 % bei fehlendem oder leichtem Erytheme, gleichbleibende Dosis bei moderatem Erythem und Reduzierung um 10%–20 % bei Blasen oder starken Schmerzen). Die anfängliche therapeutische Dosis wurde auf 150–250 mJ/cm2 festgelegt (etwa 80 %–90 % des individuellen MED). Jede Sitzung begann damit, dass der Patient bequem auf einem verstellbaren Stuhl saß. Das Laserhandstück wurde senkrecht (90°) zur Haut in einem Abstand von 10–15 cm gehalten, und kreisförmige oder rechteckige Bestrahlungsfelder wurden so ausgerichtet, dass depigmentierte Bereiche mit minimaler Überlappung vollständig bedeckt wurden. Die Bestrahlung dauerte je nach Fluenz 1–3 Sekunden pro Expositionsfeld. Die Dosen wurden anschließend um 10–20 % pro Sitzung entsprechend der vorherigen Erythemantwort erhöht; Bei moderatem Erythem wurde die vorherige Dosis beibehalten, während Blasen oder Schmerzen eine Reduktion von 10–20 % rechtfertigten. Die maximale Dosis überschritt nicht 2.000 mJ/cm2. Jede Sitzung umfasste alle sichtbaren Läsionen und dauerte je nach Ausmaß 10–20 Minuten. Die Behandlungen wurden zweimal wöchentlich mit mindestens 72 Stunden zwischen den Sitzungen über einen Zeitraum von insgesamt 12 Wochen (24 Sitzungen) durchgeführt. Nach der Bestrahlung wurde eine dünne Schicht steriles, aloebasierten Gels aufgetragen, um das lokale Erythem zu lindern. Die Patienten wurden angewiesen, 48 Stunden lang keine Sonneneinstrahlung zu verwenden und während der gesamten Behandlung einen Breitband-Sonnenschutz (SPF >30) zu verwenden. Läsionen mit >50 % Repigmentierung setzten sich unter denselben Parametern fort, bis stabile Pigmentierung erreicht war.
Orale Matrinenverabreichung
In der Kombinationsgruppe wurde ein steriler wässriger Extrakt aus Sophora-flavescens-Wurzeln gemäß der Chinesischen Artikhabok (Ausgabe 2020) 30 hergestellt und auf eine Konzentration von 5 mg/mL mit ≥98 % Reinheit standardisiert, verifiziert durch Hochleistungsflüssigkeitschromatographie (HPLC). Die Lösung wurde bei 4 °C in bernsteinfarbenen Glasflaschen gelagert, um Photodegradation zu verhindern. Zufällige Chargentests bestätigten Alkaloidkonzentration (5 ± 0,3 mg/mL) und mikrobielle Sterilität. Jeder Patient erhielt die matrine Lösung durch orale Verabreichung in einer Dosis von 0,3 g (60 ml) zweimal täglich für 12 Wochen, synchronisiert mit dem Laserbehandlungsplan. Die Dosierung wurde auf Grundlage früherer pharmakologischer Daten ausgewählt, die eine wirksame Immunmodulation mit einem günstigen Sicherheitsprofil bei chronisch entzündlichen Dermatosen31,32 zeigten. Die Patienten wurden angewiesen, die Lösung 30 Minuten nach den Mahlzeiten einzunehmen, um Magen-Darm-Beschwerden zu minimieren und während der Therapie auf Alkohol, starken Tee und scharfes Essen zu verzichten, um die Leberbelastung zu verringern. Leichte Übelkeit oder Müdigkeit wurde durch die Verabreichung einer kleinen Menge warmes Wasser behandelt. Die Therapietreue wurde durch ein Medikamententagebuch und die Rückgabe der Flasche bei jedem Nachsorgetermin bewertet. Die Sicherheit wurde bei jedem Besuch durch strukturierte Symptomuntersuchungen und die Dokumentation von unerwünschten Ereignissen bewertet, darunter gastrointestinale Beschwerden, Müdigkeit und alle Anzeichen, die auf eine Leberintoleranz hindeuten. Während der Beobachtungszeit waren keine zusätzlichen systemischen Medikamente, topische Kortikosteroide oder Immunsuppressiva erlaubt, um störende Effekte zu verhindern.
Bewertung der klinischen Reaktion
Die Pigmentänderungen wurden zu Beginn und in den Wochen 4, 8 und 12 von zwei erfahrenen Dermatologen untersucht, die auf Behandlungsinformationen verblindet waren. Standardisierte digitale Fotografien wurden unter identischer Beleuchtung und Kameraeinstellungen (Entfernung 60 cm, Belichtung 1/60 s, ISO 200) aufgenommen. Der Grad der Repigmentierung wurde mit dem Vitiligo Area Scoring Index (VASI) quantifiziert. Die Läsionen wurden zusätzlich in vier Kategorien eingeteilt: Ausgezeichnet (≥75 % Repigmentierung), Gut (50 %–74 %), Mäßig (25 %–49 %), Schlecht (<25 %). Die Patienten füllten außerdem eine 10-Punkte-Visual Analogue Scale (VAS) zur Zufriedenheit und Symptomlinderung aus. Bei jedem Besuch wurden unerwünschte Ereignisse wie Erythem, Brennen, Pruritus, Blasenbildung und Hyperpigmentierung dokumentiert.
Serumprobenentnahme
Für die Biomarkeranalyse wurde von jedem Patienten zu Beginn und am Ende der 12. Woche nüchterndes peripheres Blut (5 ml) mit Serumtrennungsröhrchen entnommen. Die Proben durften 30 Minuten bei Raumtemperatur gerinnen und wurden bei 800 x g für 10 Minuten bei 4 °C zentrifugiert. Das Supernatant-Serum wurde in 0,5 mL Kryoviale aliquotiert und bis zur Analyse bei −80 °C gelagert. Alle Proben wurden innerhalb von 2 Stunden nach der Entnahme verarbeitet, um den Zytokinabbau zu minimieren.
Quantifizierung von Serumimmunglobulinen
Die Serum-IgG-, IgA- und IgM-Konzentrationen wurden mittels automatisierter Immunnephelometrie gemäß den Anweisungen des Herstellers bestimmt. Kalibrierungskurven wurden mit seriellen Verdünnungen von Referenzstandards erstellt. Jeder Test enthielt Qualitätskontrollserum in hohen und niedrigen Konzentrationen. Die Messungen wurden in g/L angegeben und zweimal wiederholt, um eine intraassay-Variation < 5 % sicherzustellen. Die Präzision und Kalibrierung des Instruments wurden täglich mit rückverfolgbaren Steuerungsstandards überprüft. Die Ergebnisse wurden elektronisch aufgezeichnet und von zwei unabhängigen Technikern überprüft, die auf Patientendaten verblindet waren.
Messung entzündlicher Zytokine
Die Zytokinprofilierung umfasste IFN-γ, TNF-α, IL-1β, IL-6, IL-17 und IL-10, quantifiziert mit einer multiplex-enzymgebundenen Immunsorbent-Assay-(ELISA)-Plattform. Die Herstellung der Reagenz folgte dem Standardprotokoll des Herstellers. Kurz gesagt wurden 100 μL verdünntes Serum zu jedem antikörperbeschichteten Brunnen hinzugefügt und 2 Stunden bei 37 °C inkubiert. Nach dem Waschen mit phosphatgepufferter Kochsalzlösung, die 0,05 % Tween-20 (PBST) enthält, wurden 100 μL biotinylierter Nachweisantikörper hinzugefügt und 1 Stunde lang inkubiert. Anschließend wurden die Brunnen 30 Minuten lang mit Streptavidin-Meerrettichperoxidase inkubiert, gefolgt von einer Farbentwicklung mit Tetramethylbenzidin (TMB)-Substrat für 10 Minuten im Dunkeln. Die Reaktion wurde mit 50 μL 2 mol/L Schwefelsäure gestoppt, und die Absorption wurde bei 450 nm mit einem Mikroplattenmesser gemessen. Standardkurven wurden aus seriellen Verdünnungen rekombinanter Zytokine erzeugt, und die Konzentrationen wurden als pg/mL angegeben. Alle Proben wurden doppelt gemessen. Um die Reproduzierbarkeit zu gewährleisten, wurde der Interassay-Variationskoeffizient (CV) unter 10 % gehalten. Leerwellen enthielten einen Assay-Puffer ohne Serum, und die Negativkontrollwellen enthielten zytokinfreie Matrix, die identisch mit den Proben verarbeitet und dem 0-pg/mL-Standard entspricht, um die Assay-Spezifität zu bestätigen. Alle hämolysierten oder lipämischen Proben wurden aus der Endanalyse ausgeschlossen.
Statistische Analyse
Die Daten wurden in eine eigene elektronische Datenbank eingegeben und von zwei unabhängigen Datenmanagern auf Genauigkeit überprüft. Die Stichprobengröße wurde anhand der erwarteten Effektgröße geschätzt (Cohens d = 0,5), wobei α = 0,05 und Potenz (1–β) = 0,8 sind, was mindestens 100 Teilnehmer pro Gruppe ergibt. Um mehrere Vergleiche über Zytokine hinweg zu kontrollieren, wurde die Bonferroni-Korrektur bei Bedarf angewendet. Multivariate lineare Regression wurde, wo nötig, angewendet, um potenzielle Störfaktoren wie Alter, Geschlecht, Krankheitsdauer und Ausgangsbereich der Läsion zu berücksichtigen. Die Normalverteilung stettiger Variablen wurde mit dem Shapiro–Wilk-Test überprüft. Deskriptive Statistiken wurden als Mittelwert ± Standardabweichung (SD) für normalverteilte Daten oder als Median (Interquartilbereich, IQR) für schiefe Daten präsentiert. Veränderungen vor und nach der Behandlung wurden mittels gepaarter T-Tests analysiert, während Vergleiche zwischen den Gruppen mit unabhängigen Proben-Tests oder Mann–Whitney-U-Tests je nach Bedarf analysiert wurden. Kategoriale Daten wurden mit dem Chi-Quadrat- oder Fisher-Exakt-Test verglichen. Korrelationen zwischen Zytokinspiegeln, Immunglobulinen und der Verbesserung der Pigmentierung wurden anhand des Pearsonschen Korrelationskoeffizienten bewertet. Alle Analysen wurden mit SPSS v26,0 (RRID: SCR_002865) durchgeführt, und ein zweiseitiges p < 0,05 wurde als statistisch signifikant angesehen.