Name: High Throughput Screening von Fungal Endoglucanaseaktivität in Escherichia coli /em (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-08-13T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 16 s
Description: Lernen Sie ein kosteneffizientes Hochdurchsatz-Screening für fungale Endoglucanaseaktivität in Escherichia coli mit visuellem Congo-Red-Readout. Diese Methode ermöglicht die schnelle Analyse großer Enzymvariantenbibliotheken.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Diese Arbeit wurde von der Gordon and Betty Moore Foundation, und durch die UNCF / Merck Science Initiative finanziert.

1. Abschirmblech Vorbereitung <ol><li> Add 25g LB Nährmedium, 15g Agar und 1,5 g Carboxymethylcellulose (CMC) Substrat 1L destilliertes Wasser, und Autoklaven zu sterilisieren. </li><li> Nach dem Autoklavieren können mittel-bis kühl, und fügen Sie geeignete Antibiotika und IPTG zu einer Endkonzentration von 100 &amp;mgr;. </li><li> Gießen Sie 200 ml Medium in je 5 große quadratische Petrischalen / Bioassay Tabletts (240 x 240 x 20mm oder größer). Lassen Platten vollständig trocknen. </li></ol> 2. Endoglucanase Bibliothek Generation und Bildschirm <ol><li> Generieren Sie eine Bibliothek von Endoglucanase katalytische Domäne (n). Dies kann in vielerlei Hinsicht erreicht werden (z. B., site-directed oder zufällige Mutagenese, Rekombination, etc.) und ist durch den Forscher bestimmt. </li><li> Klon der Bibliothek in einen Vektor, so dass sie unter der Kontrolle des T7-Promotors mit dem lac-Operator sind, und enthalten eine pelB Signalsequenz für die Ausrichtung in das Periplasma. Ein Beispiel für einen geeigneten Vektor ist pET22b (+) von Novagen. </li><li> Transformieren Sie die Endoglucanase Bibliothek in E. coli-Stamm BL21 (DE3) und Platte für einzelne Kolonien. </li><li> Inkubieren Transformation über Nacht bei 37 ° C. </li><li> Mit sterilen Zahnstochern, impfen Klone in 96-Well Deep-Well-Platten mit 400μL LB-Medium mit entsprechenden Antibiotika ergänzt. Bei 37 ° C über Nacht unter Schütteln bei 250 Umdrehungen pro Minute. </li><li> Add steriles Glycerin auf 96 gut Nacht-Kulturen bis zu einer Endkonzentration von 10% für die langfristige Lagerung bei -80 ° C. Dies wird die Master-Platte sein. </li><li> Mit einem 96-poligen Stempel, replizieren Platte über Nacht Kulturen auf die Screening-Platten mit IPTG und CMC. Bis zu 5 Sets von Übernacht-Kulturen können auf jeder Vorführung Typenschild geprägt werden. </li><li> Beschriften Sie die Screening-Platten, so dass die Identität und Orientierung der einzelnen 96-Well-Platte bekannt ist. </li><li> Inkubieren Sie die Stempel-Bibliotheken bei Raumtemperatur (17-25 ° C) über Nacht oder bis sichtbare Kolonien gebildet haben. </li><li> Spülen Platte mit destilliertem Wasser, bis alle Spuren von den Kolonien entfernt werden. </li><li> Gießen Kongorot (CR; 0,5% in Wasser) auf gewaschene Platte. Achten Sie darauf, gerade genug, CR hinzufügen, um die Platte zu decken. </li><li> Inkubieren 15 Minuten bei Raumtemperatur. Nicht mehr als 15 Minuten für CR Inkubation. Längere Inkubationszeiten wird in weniger deutliche Halos führen. </li><li> Abgießen CR und fügen Sie eine großzügige Menge (mehr als genug, um die Platte cover) von 1M NaCl. </li><li> Inkubieren 15 Minuten bei Raumtemperatur. </li><li> Abgießen NaCl zu CMC Abbau Halos zu offenbaren. Für eine bessere Auflösung des Halos kann längere Inkubationszeiten mit NaCl oder mehrere NaCl wäscht erforderlich sein. </li><li> Mit einem sterilen Zahnstocher holen aktive Enzyme Klone aus der Master-Platte für die weitere Charakterisierung. </li></ol> 3. Repräsentative Ergebnisse: Ein Beispiel für die Anzeige für diesen hohen Durchsatz-Bildschirm ist in Abbildung 3 dargestellt. Klone können als inaktiv, schwach aktiv, der hochwirksam und von der Größe des Abbaus Zonen identifiziert werden. Dies ist besonders nützlich, wenn ein Enzym mit bekannter Aktivität in der Bibliothek als Referenz enthalten ist. Wie hier gezeigt, ist die Identifizierung von aktiven Enzymen robust und reproduzierbar. Aber bitte beachten Sie, dass eine angemessene Kennzeichnung der Screening-Platten extrem wichtig ist. Der Forscher muss sich aktiv Varianten nach dem Waschen den Kolonien weg zu identifizieren, um sie von der Master-Platte bei -80 ° C für die weitere Charakterisierung gespeichert holen. Schließlich ist es schwierig zu beurteilen, a priori die Beziehung zwischen Aktivitäten auf künstliche vs natürliche Substrate. Deshalb müssen die Forscher testen alle positiven Klone auf industriell relevante Material Protein Fitness zu bestimmen. <img src="/files/ftp_upload/2942/2942fig1.jpg" alt="Abbildung 1"> Abbildung 1. Schematische Darstellung der Screening-Verfahren. Die Zellen sind mit einer Endoglucanase-Bibliothek transformiert und selektiv für einzelne Kolonien überzogen. Klone gepickt und über Nacht gezüchtet in 96-Well Deep Well Platten für (1) Lagerung bei -80 ° C und (2) Replika-Plattierung auf Platten mit CMC und IPTG zu Endoglucanase Expression zu induzieren. Aktive Klone werden von der Master-Platte bei -80 ° C gelagert abgeholt <img src="/files/ftp_upload/2942/2942fig2.jpg" alt="Abbildung 2"> Abbildung 2. Klonierung und Expression von Pilz-katalytischen Domänen in E. coli. (A) Endoglucanase Expressionsvektor. Gene wurden in pET22b (+) (Novagen) unter der Kontrolle des T7-Promotor kloniert. (B) Rechts: Endoglucanase-exprimierenden BL21 (DE3) Kolonien. Linkes Bild: CMC Abbau Halos nach dem Waschen und Entwicklung mit Kongorot. <img src="/files/ftp_upload/2942/2942fig3.jpg" alt="Abbildung 3"> Abbildung 3. Die Ergebnisse der Proben aus CMC / Kongorot Bildschirm. Bilder von Screening-Platten nach dem Waschen und Kongorot Entwicklung genommen. Alle Kolonien, die auf screening Platten wurden von ähnlicher Größe.

<ol><li>Atsumi, S., Hanai, T., Liao, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-fermentative+pathways+for+synthesis+of+branched-chain+higher+alcohols+as+biofuels%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Non-fermentative pathways for synthesis of branched-chain higher alcohols as biofuels.</a> Nature. 451, 86-89 (2008).</li>
<li>Wilson, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellulases+and+biofuels%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Cellulases and biofuels.</a> Curr Opin Biotechnol. 20, 295-299 (2009).</li>
<li>Qin, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+endoglucanase+II+from+Trichoderma+reesei+to+improve+the+catalytic+efficiency+at+a+higher+pH+optimum%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Engineering endoglucanase II from Trichoderma reesei to improve the catalytic efficiency at a higher pH optimum.</a> J Biotechnol. 135, 190-195 (2008).</li>
<li>Nakazawa, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Directed+evolution+of+endoglucanase+III+%28Cel12A%29+from+Trichoderma+reesei%5BTitle%5D)+AND+%22Appl+Microbiol+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Directed evolution of endoglucanase III (Cel12A) from Trichoderma reesei.</a> Appl Microbiol Biotechnol. 83, 649-657 (2009).</li>
<li>Heinzelman, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+family+of+thermostable+fungal+cellulases+created+by+structure-guided+recombination%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci%22%5BJournal%5D)">A family of thermostable fungal cellulases created by structure-guided recombination.</a> Proc Natl Acad Sci. 106, 5610-5615 (2009).</li>
<li>Heinzelman, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SCHEMA+recombination+of+a+fungal+cellulase+uncovers+a+single+mutation+that+contributes+markedly+to+stability%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">SCHEMA recombination of a fungal cellulase uncovers a single mutation that contributes markedly to stability.</a> J Biol Chem. 284, 26229-26233 (2009).</li>
<li>Lantz, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hypocrea+jecorina+CEL6A+protein+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol+Biofuels%22%5BJournal%5D)">Hypocrea jecorina CEL6A protein engineering.</a> Biotechnol Biofuels. 8, 3-20 (2010).</li>
<li>Mahadevan, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Site-directed+mutagenesis+and+CBM+engineering+of+Cel5A+%28Thermotoga+maritima%29%5BTitle%5D)+AND+%22FEMS+Microbiol+Lett%22%5BJournal%5D)">Site-directed mutagenesis and CBM engineering of Cel5A (Thermotoga maritima).</a> FEMS Microbiol Lett. 287, 205-211 (2008).</li>
<li>Nakazawa, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+the+catalytic+domains+of+Trichoderma+reesei+endoglucanase+I%2C+II%2C+and+III%2C+expressed+in+Escherichia+coli%5BTitle%5D)+AND+%22Appl+Microbiol+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Characterization of the catalytic domains of Trichoderma reesei endoglucanase I, II, and III, expressed in Escherichia coli.</a> Appl Microbiol Biotechnol. 81, 681-689 (2008).</li>
<li>Wang, H., Jones, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Properties+of+the+Macrophomina+phaseolina+endoglucanase+%28EGL+1%29+gene+product+in+bacterial+and+yeast+expression+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Appl+Biochem+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Properties of the Macrophomina phaseolina endoglucanase (EGL 1) gene product in bacterial and yeast expression systems.</a> Appl Biochem Biotechnol. 81, 153-160 (1999).</li>
<li>Howard, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enzyme+activity+of+a+Phanerochaete+chrysosporium+cellobiohydrolase+%28CBHI.1%29+expressed+as+a+heterologous+protein+from+Escherichia+coli%5BTitle%5D)+AND+%22Afr+J+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Enzyme activity of a Phanerochaete chrysosporium cellobiohydrolase (CBHI.1) expressed as a heterologous protein from Escherichia coli.</a> Afr J Biotechnol. 2, 296-300 (2003).</li>
<li>Howard, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterisation+of+a+chimeric+Phanerochaete+chrysosporium+cellobiohydrolase+expressed+from+Escherichia+coli%5BTitle%5D)+AND+%22Afr+J+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Characterisation of a chimeric Phanerochaete chrysosporium cellobiohydrolase expressed from Escherichia coli.</a> Afr J Biotechnol. 3, 349-352 (2004).</li>
<li>Teather, R. M., Wood, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+Congo+red-polysaccharide+interactions+in+enumeration+and+characterization+of+cellulolytic+bacteria+from+the+bovine+rumen%5BTitle%5D)+AND+%22Appl+Env+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Use of Congo red-polysaccharide interactions in enumeration and characterization of cellulolytic bacteria from the bovine rumen.</a> Appl Env Microbiol. 43, 777-780 (1982).</li>
<li>Gilkes, N. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mode+of+action+and+substrate+specificities+of+cellulases+from+cloned+bacterial+genes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bio+Chem%22%5BJournal%5D)">Mode of action and substrate specificities of cellulases from cloned bacterial genes.</a> J Bio Chem. 259, 10455-10459 (1984).</li>
</ol>

Keine Interessenskonflikte erklärt.

Die hier beschriebene Protokoll ermöglicht eine schnelle und hohen Durchsatz Identifizierung von aktiven Enzymen, mit minimaler Manipulation. Bewegungsmelder ist ziemlich empfindlich und qualitativ spiegelt das Ausmaß der Aktivität innerhalb der Zelle. Seine einfache Bedienung macht diese Methode eignet sich für eine breite Palette von Enzym-Bibliotheken, die nur durch funktionelle Expression in E. begrenzt coli. Darüber hinaus ist Aktivitätsscreening dieser Art nicht zu Pilzcellulasen beschränkt, sond...

<table border="1"><tbody><tr><th> Reagens </th><th> Firma </th><th> Produkt-Nummer </th></tr><tr><td> IPTG </td><td> Sigma </td><td> I1284 </td></tr><tr><td> Kongorot </td><td> Sigma </td><td> C6277 </td></tr><tr><td> Carboxymethylcellulose </td><td> Sigma </td><td> 360384 </td></tr><tr><td> NaCl </td><td> Sigma </td><td> S1679 </td></tr><tr><td> Bacto-Agar </td><td> BD Biosciences </td><td> 214030 </td></tr><tr><td> Bioassay-Platten </td><td> Thermo Scientific </td><td> 240845 </td></tr></tbody></table>

high throughput screening von fungal endoglucanaseaktivität in escherichia coli</em

High Throughput Screening of Fungal Endoglucanase Activity in Escherichia coli

Cellulase-Enzyme (Endoglucanasen Cellobiohydrolasen und β-Glucosidasen) hydrolysieren Zellulose in Zucker-Komponente, die wiederum in Kraftstoff Alkohole 1 umgewandelt werden kann. Das Potenzial für die enzymatische Hydrolyse von Zellulose-Biomasse zu erneuerbarer Energie zu versorgen hat sich bemüht, Cellulasen für sparsamen Produktion 2 Ingenieur intensiviert. Von besonderem Interesse sind Pilzcellulasen 3-8, wobei die bereits industriell für Lebensmittel und Textilien verarbeitet wird. Kennzeichnung der aktiven Varianten unter einer Bibliothek von mutierten Cellulasen ist entscheidend für den Engineering-Prozess, aktive Mutanten können weitere für die verbesserten Eigenschaften und / getestet werden oder eine zusätzliche Belastung von Mutagenese. Effizientes Engineering von Pilzcellulasen hat durch einen Mangel an genetischer Werkzeuge für die einheimische Organismen und durch die Schwierigkeiten bei der Expression der Enzyme in heterologen Wirten behindert. Kürzlich entwickelte Morikawa und Mitarbeiter ein Verfahren zur Expression in E. coli der katalytischen Domäne von Endoglucanasen von H. jecorina 3,9, ein wichtiges Industriezentrum Pilz mit der Fähigkeit, Cellulasen in großen Mengen ausscheiden. Functional E. coli Expression wurde auch für Cellulasen aus anderen Pilzen, einschließlich Macrophomina phaseolina 10 und Phanerochaete chrysosporium 11-12 berichtet worden. Wir stellen eine Methode zur Hochdurchsatz-Screening von Pilzen Endoglucanaseaktivität in E. coli. (Abb. 1) Diese Methode verwendet das gemeinsame mikrobielle Farbstoff Kongorot (CR) auf den enzymatischen Abbau der Carboxymethylcellulose (CMC) von wachsenden Zellen auf festem Medium zu visualisieren. Der Aktivitätstest erfordert kostengünstige Reagenzien, minimale Manipulation, und gibt eindeutige Ergebnisse als Zonen des Abbaus (&quot;Halos&quot;) in der Kolonie vor Ort. Obwohl ein quantitatives Maß für enzymatische Aktivität kann mit dieser Methode nicht ermittelt werden, haben wir festgestellt, dass Halo Größe mit insgesamt enzymatische Aktivität in der Zelle korreliert. Die weitere Charakterisierung der einzelnen positiven Klone bestimmt, relative Protein Fitness. Traditionelle bakterielle ganze Zelle CMC / CR Aktivitätstests 13 beinhalten Gießen Agar mit CMC auf Kolonien, die Gegenstand einer Kreuzkontamination oder Inkubation Kulturen in CMC-Agar Brunnen, die weniger für großflächige Experimente ist. Hier berichten wir über ein verbessertes Protokoll, dass die bestehenden Waschverfahren 14 für Cellulase-Aktivität verändert: Zellen, die auf CMC-Agarplatten gezüchtet werden vor CR Färbung entfernt. Unser Protokoll reduziert Kreuzkontamination und ist hoch skalierbar, so dass das schnelle Screening von tausenden von Klonen. Neben H. jecorina Enzyme, haben wir zum Ausdruck gebracht und gesiebt Endoglucanase Varianten aus dem Thermoascus aurantiacus und Penicillium decumbens (siehe Abbildung 2), was darauf hindeutet, dass dieses Protokoll für Enzyme, die aus einer Reihe von Organismen.

Wir beschreiben eine niedrige Kosten, hohe Durchsatz-Verfahren zum Screening von Pilzen Endoglucanaseaktivität in<em&gt; E. coli.</em&gt; Die Methode beruht auf einer einfachen visuellen Ablesung der Substratabbau, erfordert keine Enzymreinigung und ist hoch skalierbar. Dies ermöglicht das schnelle Screening von großen Bibliotheken der Enzym-Varianten.

High Throughput Screening von Fungal Endoglucanaseaktivität in Escherichia coli</em

Cellulase-Enzyme (Endoglucanasen, Cellobiohydrolasen und $\beta$-Glucosidasen) hydrolysieren Cellulose in ihre Einzelzucker, welche wiederum umgewandelt werden können ...

Bei diesem Hochdurchsatzscreen auf endoglukonatische Aktivität von Pilzen in E. coli wird der gängige mikrobielle Farbstoff Congo Red verwendet, um den enzymatischen Abbau von Carboxymethylcellulose durch auf festem Medium wachsende Zellen sichtbar zu machen. Zunächst werden Zellen mit einer Endoglukonat-Bibliothek transformiert und selektiv auf Einzelkolonien ausplattiert. Anschließend werden einzelne Klone ausgewählt und über Nacht in 96-Well-Platten kultiviert. Danach erfolgt ein enzymatischer Screen durch Replikata-Ausplattung auf CMC-Platten, die IPTG enthalten, um die Expression von Endoglukonaten zu induzieren.Schließlich werden Klone von der am minus 80 Grad Celsius gelagerten Masterplatte abgestochen. Dieser Test liefert eindeutige Ergebnisse in Form von Abbauzonen an der Koloniestelle, wobei die Größe des Halos mit der enzymatischen Aktivität korreliert und eine qualitative Beurteilung der relativen Proteintauglichkeit ermöglicht. Der Hauptvorteil dieser Technik gegenüber bestehenden Methoden wie der Überlagertechnik besteht darin, dass sie eine Hochdurchsatzanalyse mit einer sehr geringen Rate an falsch-positiven Ergebnissen ermöglicht.Geben Sie 25 Gramm LB-N&auml;hrmedium, 15 Gramm Agar und 1,5 Gramm Carboxymethylcellulose-Substrat in einen Liter destilliertes Wasser und autoklavieren Sie zur Sterilisation. Nach dem Abk&uuml;hlen des Mediums geeignete Antibiotika und IPTG bis zu einer Endkonzentration von 100 Mikromolar hinzuf&uuml;gen. Nun jeweils 200 Milliliter Medium in f&uuml;nf gro&szlig;e rechteckige Petrischalen oder Bio-Assay-Schalen geben und die Platten vollst&auml;ndig trocknen lassen.Zunächst wird eine Bibliothek von endogluconat-Katalyse-Domänen in einen geeigneten Vektor wie PET 22 B plus von Novagen eingebaut, der den T7-Promotor mit einem lac-Operator sowie eine PAL-LV-Signalsequenz zur Zielsteuerung in den Periplasma-Raum enthält. Die Endogluconat-Bibliothek wird in den E. coli-Stamm BL21(DE3) transformiert, um Einzelkolonien mittels Glasperlen zu erhalten, und die Transformation wird über Nacht bei 37 Grad Celsius inkubiert. Mit sterilen Zahnstochern werden die Klone in 96-Loch-Platten überimpft.Verwenden Sie Deep-Well-Platten mit 400 µL LB-Medium, das mit geeigneten Antibiotika ergänzt wurde. Inkubieren Sie über Nacht bei 37 °C mit Schütteln bei 250 ×g. Geben Sie nun sterile Glycerinlösung zu den 96-Well-Übernachtkulturen hinzu, um sie langfristig bei −80 °C zu lagern.Dies wird die Master-Platte sein, bei der mithilfe eines 96er-Pin-Stempels Übernachtkulturen auf die Screening-Platten, die jeweils IPTG und CMC enthalten, übertragen werden. Übertragen Sie fünf Sätze von Übernachtkulturen, beschriften Sie die Platten und inkubieren Sie sie bei Raumtemperatur, bis sichtbare Kolonien entstanden sind. Spülen Sie die Platte anschließend weiterhin mit destilliertem Wasser, bis alle Spuren der Kolonien entfernt sind.Geben Sie gerade genug 0,5 % Congo-Rot, um die gewaschene Platte zu bedecken, und inkubieren Sie maximal 15 Minuten bei Raumtemperatur. Gießen Sie den Farbstoff ab und waschen Sie mit einer ausreichenden Menge einmolarer Natriumchloridlösung, dann inkubieren Sie 15 Minuten bei Raumtemperatur. Anschließend entsorgen Sie das Natriumchlorid, um Halos der CMC-Abspaltung sichtbar zu machen.Unter Verwendung eines sterilen Zahnstochers werden aktive Enzyme von der Stammpfanne zur weiteren Charakterisierung ausgewählt. In diesem Beispiel wurden Endogluconat-Expressionsvektoren in PET 22 B plus unter Kontrolle des T-sieben-Promotors mit einem lac-Operator generiert. Die resultierende T-Leistung von Endogluconat exprimierenden BL 21-Kolonien wurde anschließend daraufhin untersucht, CMC-Abbau-Halos zu bilden. Nach Waschen und Entwicklung mit Kongo-Rot können typischerweise Klone auf diesen Screening-Platten basierend auf der Größe der Abbauzonen als inaktiv, schwach aktiv und stark aktiv identifiziert werden.Hier ist die Identifizierung aktiver Enzyme robust und reproduzierbar. Es ist wichtig, daran zu denken, die Screening-Platten ordnungsgemäß zu beschriften, um positive Klone auf der Masterplatte korrekt identifizieren zu können.

high-throughput-screening-fungal-endoglucanase-activity-escherichia

Research

Forschung

JoVE Journal

Biology

Biologie

Dieses Protokoll beschreibt einen hohen Durchsatz Bildschirm für cellulolytische Aktivität von einem metagenomische Bibliothek in Escherichia coli exprimiert. Der Bildschirm ist Lösung und hoch automatisiert und nutzt Ein-Topf-Chemie in 384-Well-Mikroplatten mit dem letzten Auslesen als Extinktionsmessung.

Ein High-Throughput-Screen für Biomining Cellulase Aktivität von Metagenombanken

Quelle: Kim, H. et al., Multi-Enzym-Screening mit einem Hochdurchsatz genetischen Enzym-Screening-System. J. Vis. Exp. (2016)Dieses Video demonstriert eine genetische Screening-Methode zur Erkennung der Enzymexpression unter Verwendung metagenomischer Fosmidbibliotheken und chromogener Substrate. Die Durchflusszytometrie identifiziert und isoliert einzelne Zellen, die farbige Produkte produzieren, was eine Hochdurchsatzselektion aktiver enzymexpressiver Zellen ermöglicht.

Nachweis der Zielenzymexpression in genetisch veränderten bakteriellen Zellen

In diesem Video demonstrieren wir einen Hochdurchsatz-Assay für das Screening kohlenhydrataktiver Enzyme unter Verwendung unlöslicher chromogener Polymer-Hydrogel-Substrate. Das Enzym baut diese Substrate zu einem löslichen farbigen Produkt ab, das durch Messung der Farbintensität des Produkts quantifiziert werden kann.

Chromogener Polymer-Hydrogel-basierter Enzym-Screening-Assay: Eine Hochdurchsatzmethode zum Screening der kohlenhydrataktiven Enzyme unter Verwendung synthetischer Substrate

Weg zur Rationalisierung der Screening für die Expression des rekombinanten Membranproteine ​​in Escherichia coli, basierend auf Fusions grün fluoreszierendes Protein dargestellt.

Green Fluorescent Protein-basierte Screening Expression von Membranproteinen in<em&gt; Escherichia coli</em

Die Protein-Co-Expression ist eine leistungsstarke Alternative zur Rekonstitution von Proteinkomplexen in vitro und hilft bei der Durchführung biochemischer und genetischer Tests in vivo. In diesem Artikel berichten wir über die Verwendung der Protein-Co-Expression in Escherichia coli, um Proteinkomplexe zu erhalten und die Mutationshäufigkeit von Zellen zu optimieren.

Die vielfältigen Vorteile von Protein Co-expression in<em&gt; Escherichia coli</em

Diese Arbeit stellt eine Methode des Hochdurchsatz-Screenings unter Verwendung eines universellen genetischen Enzym-Screening-Systems vor, das theoretisch auf über 200 Enzyme angewendet werden kann. Dabei identifiziert das Single-Screening-System drei verschiedene Enzyme (Lipase, Cellulase und alkalische Phosphatase) durch einfaches Wechseln des verwendeten Substrats (p-Nitrophenylacetat, p-Nitrophenyl-β-D-Cellobiosid und Phenylphosphat).

Screening Multi-Enzym ein High-throughput Genetic Enzymscreening-System verwenden

Ein Hochdurchsatz-Assay für das Enzym-Screening wird beschrieben. Dieses gebrauchsfertige Multiplex-Assay-Kit besteht aus vorausgewählten C-hromogenen P-Olymer-H-Ydrogel-Substraten (CPH) und komplexenI-nlöslichen C-hromogenen B-iomasse(ICB)-Substraten. Zielenzyme sind Polysaccharid-abbauende Endoenzyme und Proteasen.

Hochdurchsatz-Screening von Kohlenhydrat-abbauenden Enzymen Neuartige Unlöslich chromogenen Assays Kits

Dieses Protokoll beschreibt eine Hochdurchsatz-Methodik, funktionell für die Protein-basierten Vererbung in S. CerevisiaeBildschirm.

Hochdurchsatz-Screening für die Protein-basierten Vererbung in S. cerevisiae

Darmmikroben können die Gesundheit ihres Wirts über spezifische oder konservierte Mechanismen positiv oder negativ beeinflussen. Caenorhabditis elegans ist eine bequeme Plattform, um nach solchen Mikroben zu suchen. Das vorliegende Protokoll beschreibt das Hochdurchsatz-Screening von 48 Bakterienisolaten auf Auswirkungen auf die Nematoden-Stressresistenz, die als Proxy für die Gesundheit von Würmern verwendet werden.

Hochdurchsatz-Screening mikrobieller Isolate mit Auswirkungen auf die Gesundheit von Caenorhabditis elegans

Diese Arbeit beschreibt ein Protokoll für einen Multicopy-Suppressor-Gen-Screen in Schizosaccharomyces pombe. Dieser Bildschirm verwendet eine genomweite Plasmidbibliothek, um Suppressorklone eines Funktionsverlust-Phänotyps zu identifizieren, der mit einem Abfragemutantenstamm assoziiert ist. Neuartige genetische Suppressoren der ell1-Nullmutante wurden mit diesem Screen identifiziert.

Genetischer Screen zur Identifizierung von Multicopy-Suppressoren in Schizosaccharomyces pombe

Dieses Protokoll bietet einen standardisierten Hochdurchsatz-Screening-Workflow für industrielle Mikroorganismen. Dabei wird eine mutierte Bibliothek mittels ARTP-Mutagenese erstellt, ein positives Tröpfchenscreening mit automatisierter Mikrofluidik durchgeführt und anschließend die Ergebnisse überprüft. Die Zuverlässigkeit des Workflows wurde durch das Screening von Hochleistungs-B . coagulans-Stämmen bestätigt.

Hochdurchsatz-Screening von L-Milchsäure-hyperproduzierenden Bacillus-Coagulans-Mutanten mittels einer automatisierten tropfen-mikrofluidischen Plattform

Lernen Sie ein kosteneffizientes Hochdurchsatz-Screening für fungale Endoglucanaseaktivität in Escherichia coli mit visuellem Congo-Red-Readout. Diese Methode ermöglicht die schnelle Analyse großer Enzymvariantenbibliotheken.

High Throughput Screening von Fungal Endoglucanaseaktivität in Escherichia coli

Weitere Videos entdecken