Name: Menschliche Arteria mammaria interna (IMA) Transplantation und Stenting: A Human Model um die Entwicklung von In-Stent Restenose Studie (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-05-09T12:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 37 s
Description: Erfahren Sie ein humanisiertes Rattenmodell zur Untersuchung von Intima-Hyperplasie nach Stent-Implantation in menschlicher Arteria mammaria interna. Diese Methode ermöglicht die Analyse humaner Gefäßremodellierung in vivo.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Die Autoren danken Christiane Pahrmann für ihren Beitrag. Besonderer Dank geht an Ethicon, Norderstedt, Hamburg (Deutschland) für die Bereitstellung des Nahtmaterial. Finanzierung Sonja Schrepfer hat ein Forschungsstipendium der Deutschen Forschungsgemeinschaft (DFG) (SCHR992 / 3 1 und SCHR992/4-1) erhalten haben.] Die Arbeit wurde von der ISHLT Shumway Career Development Grant 2010 und der Falk-Forschungsförderung (Stanford University) unterstützt.

1. Arteria mammaria interna (IMA) Vorbereitung <ol><li> Die arterielle Endothel wird durch die Passage eines 2-Französisch Fogarty arteriellen Embolektomie Katheter (Baxter Healthcare, Deerfield, IL, USA) entblößt. Der Katheter wird durch das ganze Schiff Länge gezogen zweimal zu Endothelschädigung zu gewährleisten. </li><li> Verwenden Sie eine beliebige menschliche Stent 8mm Länge und 2,5 mm-3 mm Durchmesser (zB Translumina, Yukon Stent). ACHTUNG: Der Durchmesser des Stents sollte nicht mehr als die Gefäßdurchmesser um mehr als 10% auf Pre-und Post-Stent-Stenose zu vermeiden. ACHTUNG: Schalten Sie nicht die Länge des Stents innerhalb der gleichen Studie. </li><li> Den Stent unter Verwendung der entsprechenden Ballondruck (die auf dem Stent-Paket angegeben), um den gewünschten Durchmesser zu erreichen. </li><li> Shop gestentet IMA in 4 ° C RPMI + Heparin (500 IE/10 ml) auf Eis bis zur Transplantation. </li></ol> 2. Tierische Vorbereitung RNU Nude (CRL: NIH-Foxn1rnu) Ratten (300-350 g) sind HouSED unter üblichen Bedingungen in scantainer belüfteten Schränken, Fed Standard Rattenfutter und autoklaviertem Wasser ad libidum. <ol><li> Anesthetize Ratte mit Isofluran (2,5-3%) mit einem Induktions-Kammer. </li><li> Rasieren Sie die Bauch-Haar und legen Sie die Ratte auf den Rücken und legen Sie eine Gesichtsmaske über die Nase und den Mund zu halten die Anästhesie. </li><li> Desinfizieren Sie die Bauch-Bereich weit über Provo-Jod nächsten Einsatz 80% Ethanol - wiederholen Sie diesen Schritt zweimal. Überprüfen Reflexe Einklemmen der Hinterpfoten, um sicherzustellen, dass die Ratte ausreichend betäubt ist. </li><li> Unter mikroskopischer Sicht, führen Sie eine obere mediane Laparotomie, um die infrarenalen Bauchaorta aussetzen. </li><li> Platzieren Sie den Darm in einer Kochsalzlösung befeuchtet Handschuh. Falten Sie den Handschuh um den Darm, um den Verlust von Feuchtigkeit zu verhindern. </li><li> Präparieren Sie die Aorta aus der infrarenalen Region zur Bifurkation, vorsichtig, um Schäden nicht auf den Zweigen der Gefäße führen. </li><li> Verwenden Sie Klammern, um die Mikro-Aorten Blutfluss zu stoppen. Legen Sie dieproximale Klemme, gefolgt von dem distalen Klemme. </li><li> Entfernen Sie eine App. 0,5-0,7 mm Aortasegment und spülen Sie den restlichen Aorta mit Heparin (200 Einheiten). </li><li> Nehmen Sie die IMA-Stent und verkürzen sie auf die angemessene Länge und positionieren Sie es in die Lücke. </li><li> Verbinden Sie die IMA an den Empfänger Aorta, von einer fortlaufenden Naht mit 8-0 Prolene Nahtmaterial (Ethicon, Norderstedt, Deutschland). </li><li> Öffnen Sie vorsichtig die ersten kranialen Klemme und dann die kaudalen Klemme. </li><li> Es sollte ein sichtbar-Impuls in der transplantierten IMA und am distalen Ende der Aorta sein. </li><li> Platzieren Sie den Darm wieder in den Bauch. </li><li> Spülen Sie den Bauch mit vorgewärmten steriler Kochsalzlösung. </li><li> Schließen Sie die Muskelschicht der Bauchwand mit 6-0 Prolene fortlaufenden Nähten (Ethicon, Norderstedt, Deutschland). </li><li> Während die Ratte immer noch in der Anästhesie, injizieren 4-5 mg / kg subkutan Carprofen. </li><li> Verwalten postoperativen Analgesie gegebenenfalls (zB Carprofen oder Meloxicam) für 3 Tage nach surgery. </li></ol> 3. Repräsentative Ergebnisse Für die Histologie wurden die Proben in 4% Formalin, dehydratisiert in einer abgestuften Serie von Alkohol fixiert und infiltriert in einem Gemisch (MMA I) von 80% Methylmethacrylat und 20% Dibutylphthalat für 1 Tag, MMA I mit 1% Trockensubstanz Benzoylperoxid 1 Tag und MMA I mit 3% Trockensubstanz Benzoylperoxid (MMA III) für 1-2 Tage bei 4 ° C Danach wurden die Proben in frischem MMA III in Glasfläschchen in einem Wasserbad auf einer vorpolymerisierten Basis polymerisiert. Langsam wurde die Polymerisation, indem sie die Fläschchen bei 26 ° C über Nacht erreicht, Erhöhung der Temperatur auf 28 ° C am nächsten Morgen, und dann schrittweise Erhöhung der Temperatur um 0,5 ° C über 12 h, bis die Polymerisation aufgetreten. Die polymerisierten Blöcken wurden bei 5 mu m Dicke mit Hilfe eines MICROM HM 360 Mikrotom mit einer Wolframcarbid-Messer ausgestattet geschnitten. Um den Ursprung der proliferierenden Zellen (1) zu identifizieren, skollidiert wurden mit Antikörpern identifiziert entweder das grün fluoreszierende Protein (GFP) oder Ratte gefärbt MHC-I und menschlichen glatten Muskelzellen. Für diese Studien wurde menschliches IMA mit dem GFP-Reportergen über Nacht unter Verwendung lentivirale Partikel für eine stabile Transduktion von IMA-Zellen inkubiert. Die Aufteilung Tochter Zellen aus menschlichen Ursprungs konnte durch Expression von GFP identifiziert werden. Nach der Entparaffinierung, wird die Wärme-induzierte Epitopdemaskierung durch Erhitzen der Folien in der Antigen-Retrieval-Lösung mit einem Dampfer durchgeführt. Der Image-iT FX Signal Enhancer kann für die Sperrung Schritt verwendet werden. Zellen menschlichen Ursprungs werden anhand der monoklonalen Maus-Antikörper gegen GFP (1:100 in primären Antibody Diluent (Dako), verdünnt), und weiter mit Ziege-anti-Maus-IgG, Alexa Fluor 488 (1:1000 verdünnt in sekundären Antikörper Verdünnungsmittel beschriftet ). Die glatten Muskelzellen wurden mit dem Kaninchen-polyklonale Anti-glatte Muskulatur α-Aktin (1:100 in primärem Antikörper verdünnt) markiert, gefolgt von Ziege-anti-Kaninchen-IgG, Alexa FluoR 555 (1:1000 in sekundären Antikörper Verdünnungsmittel verdünnt). Jeder Antikörper Inkubationsschritt bei 37 ° C für 1 Stunde mit PBS dreimal gewaschen zwischen durchgeführt. Die Zellkerne sind mit DAPI für 10 Minuten gefärbt. Nach der Montage der Folien mit Gold-Verlängern antifade Reagenz wurden die Proben analysiert mit Hilfe der konfokalen Mikroskopie. <img alt="1" src="/files/ftp_upload/3663/3663fig1.jpg" /> Abbildung 1. Die Neointima Zellen wie humanen glatten Muskelzellen A:.. Grün = anti-GFP, die Markierung von Zellen menschlichen Ursprungs; rot = anti menschliche glatte Muskelzellen Aktin; blau = DAPI, Identifizierung Zellkerne B: Grün = anti Ratte MHC-I-, Etikettier Zellen der Ratte Herkunft, rot = anti menschliche glatte Muskelzellen Aktin; blau = DAPI, Identifizierung Zellkerne. Proliferierenden Zellen werden als glatte Muskelzellen und positiv für GFP identifiziert, aber negativ für den Ratten-MHC-I-Molekül. Daher sind proliferierenden Zellen menschlichen Ursprungs.

<ol><li>Deuse, T., Ikeno, F., Robbins, R. C., Schrepfer, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+In-Stent+Restenosis%3A+An+Inexpensive%2C+Reliable%2C+and+Rapid+Preclinical+Model%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Imaging In-Stent Restenosis: An Inexpensive, Reliable, and Rapid Preclinical Model.</a> J. Vis. Exp. (31), e1346(2009).</li>
<li>Oyamada, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Trans-iliac+rat+aorta+stenting%3A+a+novel+high+throughput+preclinical+stent+model+for+restenosis+and+thrombosis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Surg.+Res%22%5BJournal%5D)">Trans-iliac rat aorta stenting: a novel high throughput preclinical stent model for restenosis and thrombosis.</a> J. Surg. Res. 166, e91-e95 (2011).</li>
<li>Chamberlain, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+mouse+model+of+in+situ+stenting%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovascular+research%22%5BJournal%5D)">A novel mouse model of in situ stenting.</a> Cardiovascular research. 85, 38-44 (2010).</li>
<li>Deuse, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Introducing+the+first+polymer-free+leflunomide+eluting+stent%5BTitle%5D)+AND+%22Atherosclerosis%22%5BJournal%5D)">Introducing the first polymer-free leflunomide eluting stent.</a> Atherosclerosis. 200, 126-134 (2008).</li>
<li>Finn, A. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+healing+after+sirolimus%2C+paclitaxel%2C+and+bare+metal+stent+placement+in+combination+with+peroxisome+proliferator-activator+receptor+gamma+agonists%3A+requirement+for+mTOR%2FAkt2+in+PPARgamma+activation%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+research%22%5BJournal%5D)">Differential healing after sirolimus, paclitaxel, and bare metal stent placement in combination with peroxisome proliferator-activator receptor gamma agonists: requirement for mTOR/Akt2 in PPARgamma activation.</a> Circulation research. 105, 1003-1012 (2009).</li>
<li>Tellez, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coronary+bare+metal+stent+implantation+in+homozygous+LDL+receptor+deficient+swine+induces+a+neointimal+formation+pattern+similar+to+humans%5BTitle%5D)+AND+%22Atherosclerosis%22%5BJournal%5D)">Coronary bare metal stent implantation in homozygous LDL receptor deficient swine induces a neointimal formation pattern similar to humans.</a> Atherosclerosis. 213, 518-524 (2010).</li>
<li>Suzuki, Y., Yeung, A. C., Ikeno, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+pre-clinical+animal+model+in+the+translational+research+of+interventional+cardiology%5BTitle%5D)+AND+%22JACC+Cardiovasc.+Interv%22%5BJournal%5D)">The pre-clinical animal model in the translational research of interventional cardiology.</a> JACC Cardiovasc. Interv. 2, 373-383 (2009).</li>
<li>Holt, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intimal+proliferation+in+an+organ+culture+of+human+internal+mammary+artery%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovascular+research%22%5BJournal%5D)">Intimal proliferation in an organ culture of human internal mammary artery.</a> Cardiovascular research. 26, 1189-1194 (1992).</li>
<li>Swanson, N., Javed, Q., Hogrefe, K., Gershlick, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+internal+mammary+artery+organ+culture+model+of+coronary+stenting%3A+a+novel+investigation+of+smooth+muscle+cell+response+to+drug-eluting+stents%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Sci.+%28Lond%29%22%5BJournal%5D)">Human internal mammary artery organ culture model of coronary stenting: a novel investigation of smooth muscle cell response to drug-eluting stents.</a> Clin. Sci. (Lond). 103, 347-353 (2002).</li>
</ol>

Keine Interessenskonflikte erklärt.

Obwohl verschiedene In-vivo-Forschung werden bestehende Modelle, die Entwicklung der Intimahyperplasie nach Stentimplantation zu untersuchen, diese Modelle noch immer vor translationale Hürden zu überwinden. Darüber hinaus sind Großtiermodellen teure und spezielle Haltungsbedingungen sowie chirurgische Geräte ist nicht für alle Laboratorien zur Verfügung. Mit Hilfe eines menschlichen IMA, um die Entwicklung der menschlichen Intimaproliferation und In-Stent Restenose zu studieren wur...

<table border="1"><tbody><tr><td> Name des Reagenzes </td><td> Firma </td><td> Katalog-Nummer </td><td> Kommentare </td></tr><tr><td> 2 Französisch Fogarty-Katheter </td><td> Baxter Healthcare, Deerfield, IL, USA </td><td> 120602F </td><td></td></tr><tr><td> Yukon-Stent </td><td> Translumina GmbH, Hechingen, Deutschland </td><td></td><td> Verwenden Sie den Stent Ihrer Wahl nach Ihren Studienprotokoll </td></tr><tr><td> RPMI-Medium </td><td> Biochrom </td><td> Nr.F1275 </td><td></td></tr><tr><td> Heparin </td><td> Baxter </td><td> 2B0953 </td><td></td></tr><tr><td> Isofluran </td><td> Abt </td><td> B506 </td><td></td></tr><tr><td> Provo-Jod </td><td> Betadine Puredue Pharma </td><td> EAN: 5995327165830 </td><td></td></tr><tr><td> 80% Ethanol </td><td> Geyer </td><td> ETV 80/0500 </td><td></td></tr><tr><td> Micro Klemme </td><td> Harvard Apparatus </td><td> PY2-61 bis 0186 </td><td></td></tr><tr><td> Nahtmaterial 8-0 </td><td> Johnson &amp; Johnson, </td><td> 2808G </td><td></td></tr><tr><td> Nahtmaterial 6-0 </td><td> Johnson &amp; Johnson, </td><td> 1698 H </td><td></td></tr><tr><td> Carprofen </td><td> Feizer Vet </td><td> PZN: 0110208 </td><td></td></tr><tr><td> Metamizol </td><td> Ratiopharm </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Target Retrieval Solution, pH 9 </td><td> Dako </td><td> S2368 </td><td></td></tr><tr><td> Bild-iT FX Signal Enhancer </td><td> Invitrogen </td><td> I36933 </td><td></td></tr><tr><td> monoklonalen Maus-Anti-GFP-Antikörper </td><td> BD Living Colors </td><td> 632381 </td><td></td></tr><tr><td> Primärantikörper Verdünnungsmittel </td><td> Dako </td><td> S3022 </td><td></td></tr><tr><td> Ziege-anti-Maus-IgG, Alexa Fluor 488 </td><td> Invitrogen </td><td> A11017 </td><td></td></tr><tr><td> sekundären Antikörper Verdünnungsmittel </td><td> Dako </td><td> S0809 </td><td></td></tr><tr><td> Kaninchen polyklonale anti-smooth muscle α-Aktin </td><td> Abcam, </td><td> ab5694 </td><td></td></tr><tr><td> Ziege-Anti-Kaninchen-IgG, Alexa 555 </td><td> Invitrogen </td><td> A21430 </td><td></td></tr><tr><td> Verlängern Sie Gold-Reagenz antifade </td><td> Invitrogen </td><td> P36930 </td><td></td></tr></tbody></table>

menschliche arteria mammaria interna (ima) transplantation und stenting: a human model um die entwicklung von in-stent restenose studie

Human Internal Mammary Artery (IMA) Transplantation and Stenting: A Human Model to Study the Development of In-Stent Restenosis

Präklinische Forschung in vivo Modelle zu pathobiologischen und pathophysiologischen Prozessen in der Entwicklung der Intimahyperplasie nach Gefäß-Stents zu untersuchen sind entscheidend für translationale Ansätze 1,2. Die am häufigsten verwendeten Tiermodelle gehören Mäuse, Ratten, Kaninchen, Schweine und 3-5. Allerdings bleibt die Übersetzung dieser Modelle in den klinischen Alltag schwierig, da diese biologischen Prozesse bereits in der Tier-Gefäße untersucht werden, aber nie in der menschlichen Forschung Modelle 6,7 durchgeführt. In diesem Video zeigen wir einen neuen humanisierten Modell, um diese Lücke zu überwinden translationale. Das gezeigte Verfahren ist reproduzierbar, einfach und schnell durchzuführen und geeignet ist, die Entwicklung von Intimahyperplasie und die Anwendbarkeit von verschiedenen Stents zu studieren. Dieses Video zeigt, wie die Stent-Technik in der menschlichen Gefäße durch Transplantation in immundefizienten Ratten folgten durchzuführen, undbezeichnet die Herkunft von proliferierenden Zellen als Menschen.

Dieses Video zeigt ein Modell zur Entwicklung von Intimahyperplasie nach der Entfaltung des Stents unter Verwendung einer menschlichen Gefäß (IMA) in einem immundefizienten Rattenmodell zu untersuchen.

Menschliche Arteria mammaria interna (IMA) Transplantation und Stenting: A Human Model um die Entwicklung von In-Stent Restenose Studie

Präklinische In-vivo-Forschungsmodelle zur Untersuchung pathobiologischer und pathophysiologischer Prozesse bei der Entwicklung einer Intimahyperplasie nach Gefäß...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, die Entwicklung einer intimalen Hyperplasie in einem humanisierten Modell zu untersuchen. Dies wird erreicht, indem zunächst ein Abschnitt der menschlichen Arteria mammaria interna (IMA) mithilfe eines zweifranzigen Fogarty-Katheters entepithelialisiert wird. Anschließend wird eine Stent in die IMA eingesetzt.Dann wird ein Segment der Bauchaorta der Ratte durch eine gestentete IMA ersetzt. Abschließend wird die Wunde vernäht, und das Tier erholt sich. Die endotheliale Schädigung infolge des invasiven Eingriffs der Ballondilatation und Stentimplantation führt zu einer Entzündungsreaktion und zur Produktion entzündlicher Zytokine. Dies bewirkt die Proliferation von glatten Muskelzellen, die progressiv das Gefäßlumen verengen und so zur Stenose führen.Schließlich können Ergebnisse erzielt werden, die die Proliferation menschlicher glatter Muskelzellen mittels immunfluoreszenzbasierter konfokaler Mikroskopie zeigen. Heute stellen wir Ihnen ein Modell zur Beurteilung einer Handgelenkstenose in menschlichen Arterien in einem roten Wirt vor. Der Vorteil dieses Modells im Vergleich zu bestehenden Techniken wie der abdominalen nassen aortalen Stentimplantation besteht darin, dass wir menschliche Stents in menschlichem Gewebe bewerten können.Die Idee zu dieser Methode entstand ursprünglich, als wir ein translational relevantes In-vivo-Modell für die Gefäßremodelierung entwickeln wollten. Um die A. mammaria interna vorzubereiten, beginnen Sie mit einem zwei French betragenden Fogarty-Arterien-Embolektoniekatheter, mit dem Sie das arterielle Endothel durch Vorschieben des Katheters in das Gefäß abzuschälen, um eine endotheliale Schädigung sicherzustellen. Führen Sie einen humanen Stent mit einer Länge von acht Millimetern und einem Durchmesser von 2,5 bis drei Millimetern in das Gefäß ein.Setzen Sie den Stent unter Verwendung des geeigneten Ballondrucks ein, um den gewünschten Durchmesser zu erreichen. Lagern Sie den stentversorgten IMA auf Eis bei vier Grad Celsius in RPMI und Heparin bis zur Transplantation. Nach der Anästhesie einer Ratte mit Isofluran rasieren Sie das Bauchhaar, platzieren eine Gesichtsmaske über Nase und Mund, um eine 2 %ige Anästhesie aufrechtzuerhalten, desinfizieren den Bauchbereich großflächig mit Proviodin und anschließend mit 80 %igem Ethanol.Wiederholen Sie diese Schritte zweimal. Kneifen Sie die Hinterpfoten, um sicherzustellen, dass die Ratte ausreichend sediert ist. Führen Sie anschließend eine mediane oberbauchchirurgische Laparotomie durch, um die infrarenale Bauchaorta freizulegen.Danach die Därme in einen mit Kochsalzlösung befeuchteten Handschuh legen und den Handschuh um die Därme herum zusammenfalten, um Feuchtigkeitsverlust zu verhindern. Unter einem Operationsmikroskop die Aorta vom infrarenalen Bereich bis zur Bifurkation freilegen, wobei darauf geachtet werden muss, die Seitenäste der Gefäße nicht zu beschädigen. Um den Blutfluss in der Aorta zu stoppen, zunächst das proximale Ende mit Mikroklemmen abklemmen, danach das distale Ende. Ein etwa 0,5 bis 0,7 Millimeter langes aortales Segment entfernen und die verbleibende Aorta mit 200 Einheiten Heparin spülen.Als Nächstes die stentversorgte A. mammaria auf eine geeignete Länge verkürzen und in die aortale Lücke positionieren. Anschließend mittels fortlaufender Nähte die A. mammaria mit der Empfängeraorta verbinden. Vorsichtig zuerst die kaudale und danach die kraniale Klemme öffnen.Es sollte ein sichtbarer Puls in der transplantierten A. IMA und am distalen Ende der Aorta zu erkennen sein. Bringen Sie die Eingeweide zurück in den Bauchraum und spülen Sie diesen mit vorgewärmter steriler Kochsalzlösung aus. Schließen Sie die MuskelSchicht der Bauchwand mit sechs fortlaufenden Aut-Prolin-Nähten, gefolgt von der HautSchicht.Während die Ratte noch unter einer subkutanen Anästhesie steht, injizieren Sie vier bis fünf Milligramm pro Kilogramm Carprofen. Überwachen Sie das Tier täglich bis zur Entfernung der IMA, um den Ursprung der Proliferation zu identifizieren.Menschliches IMA wurde stabil transduziert, um GFP im Gefäß überzuexprimieren. Histologische Schnitte wurden mit Antikörpern gegen GFP, hier in grün dargestellt, und gegen menschliches glattes Muskelaktin oder SMA, das in rot erscheint, gefärbt. Die Zellkerne sind blau gefärbt.Hier ist ein aufgenommenes konfokales Bild zu sehen, das den Ursprung proliferierender Zellen zeigt. Dieses 3D-Video zeigt die Kolokalisation von SMA in Rot und GFP in Grün nach der Operation. Weitere Methoden wie die histopathologische Untersuchung und die konfokale Immunfluoreszenzmikroskopie können durchgeführt werden, um Fragen bezüglich der Luminalverschlussbildung, der Morphologie und der Zellularity zu beantworten.Diese Methode ist ein aussichtsreiches Modell für die translationale Forschung. Vielen Dank fürs Zuschauen und viel Erfolg bei Ihren Experimenten.

human-internal-mammary-artery-ima-transplantation-stenting-human

Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Dieses Video zeigt, wie eine präklinische kostengünstige und zuverlässige Modell nutzen, um pathobiologischen und pathophysiologische Prozesse in-Stent-Restenose Entwicklung zu studieren. Longitudinal in vivo-Überwachung mit OCT (Optical Coherence Tomography) und die Analyse von OCT-Bilder werden auch gezeigt.

Imaging In-Stent-Restenose: eine kostengünstige, zuverlässige und schnelle Präklinische Modell

Ein Modell der Stent-Implantation in Maus Halsschlagader beschrieben. Im Vergleich zu anderen ähnlichen Methoden ist dieses Verfahren sehr schnell, einfach und zugänglich, bietet die Möglichkeit, auf bequeme Weise die Gefäßwand Reaktion auf verschiedene Medikamente-freisetzende Stents und die molekularen Mechanismen der Restenose zu studieren.

Ein Mausmodell der Stentimplantation in der Arteria carotis für das Studium der Restenose

Restenose nach Herz-Kreislauf-Verfahren (Bypass-Chirurgie, Angioplastie oder Stenting) ist ein wichtiges Problem der Verringerung der Haltbarkeit dieser Verfahren. Eine ideale Therapie würde die Proliferation der glatten Muskelzelle (VSMC) hemmen und gleichzeitig die Regeneration des Endothels fördern. Wir beschreiben ein Modell zur gleichzeitigen Beurteilung der VSMC-Proliferation und Endothelfunktion in vivo.

Murine Aortic Crush Injury: Eine effiziente<em&gt; In vivo</em&gt; Modell der glatten Muskelzellproliferation und Endothelfunktion

Diese Arbeit zeigt einen neuartigen Ansatz zur Bewertung der Proliferations-, Differenzierungs- und Gefäßbildungspotenziale vaskulärer endothelialer Stammzellen (VESCs) durch Mamma-Fett-Pad-Transplantation, gefolgt von einer ganzheitlichen Gewebepräparation für die mikroskopische Beobachtung. Eine Abstammungsstrategie zur Untersuchung des Verhaltens von VESCs in vivo wird ebenfalls vorgestellt.

Eine neuartige Mamma-Fat-Pad-Transplantationstechnik zur Visualisierung der Gefäßerzeugung von vaskulären endothelialen Stammzellen

Dieser Artikel beschreibt ein Mausmodell zur Untersuchung der Entwicklung der Myointimal Hyperplasie (MH) nach Verletzung der Aorta Ballon.

Ballon-basierte Verletzungen induzieren Myointimal Hyperplasie in der Bauchschlagader Maus

Das vorliegende Protokoll zielt darauf ab, experimentell venöse Intimhyperplasie zu erzeugen, indem Venen arteriellen Blutdruck für die Entwicklung von Strategien zur Abschwächung venöser Intimhyperplasie nach Revaskularisationsoperationen mit Venentransplantaten ausgesetzt werden.

A Rabbit Venous Interposition Model Mimicking Revascularization Surgery using Vein Grafts to Assess Intimal Hyperplasia under Arteriellen Blutdruck

Dieses Protokoll beschreibt die Implantation menschlicher koronarer Stents in die Bauchaorta von Ratten mit einemApoE-/- Hintergrund unter Verwendung eines transfemoralen Zugangs. Im Vergleich zu anderen Tiermodellen bieten murine Modelle die Vorteile eines hohen Durchsatzes, der Reproduzierbarkeit, der einfachen Handhabung und des Gehäuses sowie einer breiten Verfügbarkeit molekularer Marker.

Implantation von menschengroßen koronaren Stents in Ratte Abdominal Aorta mit einem transfemoralen Zugang

In diesem Protokoll wurde eine neuartige Schweinevenen-Bypass-Transplantation durch einen kleinen Schnitt in der linken Brustwand ohne kardiopulmonalen Bypass durchgeführt. Es wurde eine postoperative pathologische Studie durchgeführt, die eine Verdickung der Intima zeigte.

Etablierung und Evaluierung eines Porcine Vent Graft Disease Modells

Hier stellen wir ein Mausmodell für die Anastomose der Oberschenkelarterie vor, das den Forschern ein wertvolles Tiermodell zur Untersuchung und Simulation einer vaskulären Anastomosenstenose bietet. Diese Entwicklung ist entscheidend, um unser Verständnis der Pathophysiologie, die dieser Erkrankung zugrunde liegt, zu verbessern und eine genauere und effektivere Erforschung von Gefäßerkrankungen zu ermöglichen.

Entwicklung eines Mausmodells für die Anastomosenstenose der Arteria femoralis

Dieses Video zeigt die orthotopen Aorten-Transplantat-Modell als ein einfaches Modell für die Entwicklung der Transplantatvaskulopathie (TVP) in Ratten zu untersuchen.

Orthotopen Aorten-Transplantation: Ein Rattenmodell die Entwicklung von chronischen Vaskulopathie Study

Erfahren Sie ein humanisiertes Rattenmodell zur Untersuchung von Intima-Hyperplasie nach Stent-Implantation in menschlicher Arteria mammaria interna. Diese Methode ermöglicht die Analyse humaner Gefäßremodellierung in vivo.

Menschliche Arteria mammaria interna (IMA) Transplantation und Stenting: A Human Model um die Entwicklung von In-Stent Restenose Studie (Video) | JoVE Journal

Menschliche Arteria mammaria interna (IMA) Transplantation und Stenting: A Human Model um die Entwicklung von In-Stent Restenose Studie

Weitere Videos entdecken