Name: Nahes Infrarot (NIR) Licht Erhöht Ausdruck einer Markierung der Funktion der Mitochondrien im Maus Vestibular Sinnesepithel (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-03-14T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 56 s
Description: Erfahren Sie die neuroprotektive Wirkung von Nahinfrarotlicht auf das vestibuläre Sinnesepithel alternder Mäuse. Diese nicht-invasive Methode verbessert die Mitochondrienfunktion und erhöht die Expression antioxidativer Gene signifikant.

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Die Autoren danken Dr. Paul Witting und Frau Genevieve Fong für ihre Unterstützung bei der mRNA-Extraktion und PCR zu bestätigen, und die Garnett Passe und Rodney Williams Memorial Foundation für die Unterstützung.

Ethik Hinweise: Alle nachstehend beschriebenen Verfahren wurden von der University of Sydney Tierethikkommission genehmigt. 1. Tiere HINWEIS: 1 und 8-9 Monate alten Mäusen (C57BL / 6) aus dem Tier Resources Centre (Perth, Australien) erhalten. Die Mäuse wurden in der Bosch-Nager-Einrichtung an der Universität von Sydney untergebracht. <ol><li> Hausmäuse in Standardmäusekäfige auf einer 12/12 Stunden Licht / Dunkel-Zyklus mit Zugang zu Futter und Wasser ad libitum. </li><li> Teilen Sie Mäusen in jeder Altersgruppe in der Nähe von Infrarot (NIR) behandelt oder scheinbehandelten (Kontroll-) Gruppen zum Vergleich. </li></ol> 2. nahes Infrarot (NIR) Bestrahlung und Sham-Behandlung <ol><li> Rasur der Haare am Kopf und Halsbereich der Maus mit einem elektrischen Rasierer so eng wie möglich, um schnelle Nachwachsen der Haare vor der Beendigung der Behandlungsregime zu verhindern. Um die pathogenfreien Zustand der Mäuse zu erhalten, verwenden Sie 70% EthanolInstrumente zwischen Rasieren Tiere und F10 Veterinärdesinfektionsmittel zwischen Tieren aus getrennten Käfigen reinigen. Tun Sie dies 2-3 Tage vor Beginn der Behandlung, damit Tiere nicht über abgewickelt. </li><li> Restrain Maus, indem das proximale Ende des Schwanzes und lassen Sie ihn in der Handfläche einer Hand oder Tisch entspannen, so dass Stress die zu falschen Ergebnissen führen könnte minimieren. </li><li> Halten Sie die NIR (670 nm) LED (Leuchtdiode) Gerät 1-2 cm von der exponierten (rasiert) Bereich und schalten Sie das Gerät für 90 Sekunden (Abbildung 1A). HINWEIS: Die Temperaturänderung als Ergebnis von 90 Sek Belichtung wurde mit &lt;0,2 ° C in 100 ml Wasser gemessen. </li><li> Wiederholen Sie die Schritte 2,2-2,3 für die Scheinbehandlung Gruppe von Tieren, aber lassen Sie das Gerät ausgeschaltet (Abbildung 1B). </li><li> Wiederholen Sie die Schritte 2,2-2,3 für den NIR-blockiert Behandlung Gruppe von Tieren, sondern decken Sie das Gerät mit Aluminiumfolie. </li><li> Wiederholen Sie die Schritte 2,2-2,5 täglich um approximatE 24-Stunden-Intervallen an 5 aufeinander folgenden Tagen. </li><li> Entpacken Sie die vestibulären Sinnesepithel (3 Cristae und 1 utrikulären Makula) aus beiden Ohren am fünften Tag nach der Behandlung (siehe Abschnitt 3 unten). </li></ol> 3. Die Gewebeextraktion 20 <ol><li> Bereiten 300 ml einer Glycerinbasis künstliche cerebrospinale Flüssigkeit (ACSF), bestehend aus (in mM): 26 NaHCO 3, 11 Glucose, 250 Glycerin, 2,5 KCl, 1,2 NaH 2 PO 4, 1,2 MgCl 2, 2,5 CaCl 2. Vor der Zugabe von CaCl 2, Gas der Lösung mit Carbogen (95% O 2 und 5% CO 2), um einen pH von 7,4 herzustellen und vermeiden Calciumpräzipitation (Trübung). Kühlen Sie die Lösung in einen -80 ° C Gefrierschrank für 45 Minuten, so dass ein Eisbrei gebildet. </li><li> Bereiten Sie die RNA-Isolierung Lysepuffer in markierter Schraubverschluss Mikroröhrchen (stoppt das Knallen der Deckel bei Rohrdruckänderungen zwischen Einfrieren und Auftauen in flüssigem Stickstoff) nachden Anweisungen des Herstellers oder üblichen Laborpraxis. Haben flüssigem Stickstoff fertig in einem Aluminium Dewargefäß. HINWEIS: Verwenden Sie Schutzkleidung und eyeware beim Umgang mit flüssigem Stickstoff. Stellen Sie sicher, dass flüssiger Stickstoff befindet sich in einem gut belüfteten Raum verwendet, da das Volumen der Gasform ist etwa 700 mal so seiner flüssigen Form und können Ersticken verursachen. </li><li> Tief anaesthetize Mäuse mit Ketamin (400 mg / kg) über eine intraperitoneale Injektion. Lassen Sie die Hintergliedmaße Reflex vollständig als Hinweis darauf, dass Mäuse vollständig betäubt abklingen. </li><li> Enthaupten Mäusen mit scharfen Edelstahl Schere und einen Einschnitt entlang der sagittalen Haut des Schädels mit einer Rasierklinge (gerundet # 22). An dieser Stelle und in Schritte von 3,5 bis 3,9, halten das Schädeldach, Gehirn, und die zugrunde liegenden Vestibularapparat so kühl wie möglich durch die regelmäßige Anwendung der eiskalten ACSF über das Gewebe. </li><li> Mit dem spitzen Arm Standardmuster Schere einen small Einschnitt in den Schädel zu Lambda und entlang der Pfeilnaht geschnitten. </li><li> Schieben Sie den Arm von einem flachen Rongeure unter dem Scheitelbein hält die Klinge so nah wie möglich an der unteren Oberfläche des Knochens, ohne Ziehen des Gehirns. Sichern Sie und ziehen weg die Scheitelbein seitlich und das Hinterhauptbein hinten, bis das Gehirn ausgesetzt ist. </li><li> Verwenden Sie einen kleinen Spatel aus rostfreiem Stahl, und heben Sie das Gehirn weg von der vorderen und mittleren Schädelgrube, um die Gleichgewichtsnerv (CN VIII) aus. Durchschneiden den Nerv, um unnötige Spannung auf die primären afferenten Axone, die direkt innervieren die vestibulären Haarzellen zu verhindern. </li><li> Entfernen Sie das Gehirn in toto nach Durchtrennung des KN-VIII. </li><li> Beachten Sie die knöchernen Labyrinth mit der Cochlea und der peripheren vestibulären Organe in der mittleren Schädelgrube. Machen Sie zwei kleine Schnitte neben jeder knöchernen Labyrinth und Verbrauchsteuern die gesamte Struktur, indem Sie den vorderen Bogengangs und später ziehenVerbündeter. </li><li> Sofort tauchen exzidierten Labyrinthe in einer Sezieren Schale mit eiskaltem ACSF-Lösung (wie in Schritt 3.1 beschrieben), während kontinuierlich mit Carbogen Perfusion. </li><li> Unter einem Stereomikroskop, halten Sie durch das Labyrinth der Cochlea und befestigen Sie sie am Boden der Schale mit einer Pinzette. <ol><li> Verwenden Sie gerade feinen Pinzette, eine kleine Öffnung in der Knochen über der vorderen Bogengangs (SSC) Ampulle kratzen. </li><li> Vergrößern Sie vorsichtig diese Öffnung durch das Erreichen unmittelbar unter dem Knochen und schnippte nach außen weg von der Ampulle. Seien Sie vorsichtig, hier nicht schieben Pinzette in die Öffnung und Beschädigung des fragilen häutige Labyrinth unten. Fahren Sie auf diese Weise, bis der Utriculus, vorderen und seitlichen Ampullen alle ausgesetzt sind. Wenn möglich, entfernen Sie auch die hinteren Ampulle. </li></ol></li><li> Mit feinen Pinzette vorsichtig heben Sie den Utriculus und Ampullen aus dem knöchernen Labyrinth, bis sie vollständig gelöst sind. Wo es möglich ist, halten Sie siedurch die damit verbundenen Bogengänge um eine Beschädigung der Sinnesepithel. In einigen Fällen muss der proximale Teil des halbkreisförmigen membranöse Kanal mit Irisschere geschnitten, um die Ampullen aus dem Knochen zu lösen. </li><li> Sicher erfassen die Vestibularorgane zwischen der Spitze der Pinzette und Stelle in den Lysepuffer zuvor in Schritt 3.2 vorbereitet. Vorsichtig schwenken die Zange um im Puffer, um sicherzustellen, Vestibularorgane wurden aus der Zange abgelöst. Überprüfen Sie in diesem Fall, indem die Zange unter dem Stereomikroskop ist. <ol><li> Schrauben Sie den Deckel Mikrotubuli und frieren die Probe in flüssigem Stickstoff unmittelbar. </li></ol></li></ol> 4. RNA-Extraktion und RT-PCR <ol><li> Folgen Standardmethoden der Boten-RNA (mRNA) Extraktion gemäß den Anweisungen des Herstellers oder bevorzugte Laborprotokollen. HINWEIS: Ein handelsüblicher Kit, das Träger RNAs verwendet werden, um zu isolieren geringe Ausbeuten an mRNA wurde in diese verwendetProtokoll. Nieder Elutionsvolumina verwendet, um Endkonzentrationen von mRNA zu erhöhen. HINWEIS: Negative &quot;kein Enzym&quot; Kontrollen (NEC) und &quot;keine DNA-Template&quot; Kontrollen (NTC) müssen ebenfalls durchgeführt werden, um die Gültigkeit der beobachteten Effekte zu gewährleisten. </li><li> Anwenden von Standardverfahren der reversen Transkription von mRNA komplementäre DNA (cDNA) und die Amplifikation von Zielgenen 21-23. </li></ol>

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Die Autoren erklären, sie haben keine konkurrierenden finanziellen Interessen.

Die hier beschriebenen repräsentativen Ergebnisse zeigen, dass kurze transkranielle Lieferung von NIR-Licht (90 sec / Tag für 5 Tage) ist ausreichend, um das Niveau der Antioxidantien Ausdruck in älteren Mäusen zu erhöhen, wenn mit scheinbehandelten Mäusen verglichen. Während abgegebene Wärme könnte eine Quelle der mitochondrialen und / oder neuronale Aktivierung darstellen, wie Ratte berichtet vestibulären Afferenzen 24 - unsere Messung von Wärme durch die NIR emittierten LED-Gerät war &lt;0,2 ° C über 90 s,...

Degressiven Leistung und anschließende Wasserfälle sind häufig, und leider oft kennzeichnenden Merkmale des natürlichen Alterungs 1. Die Auswirkungen dieser Rückgang ist sowohl physisch als auch sozial sein, und für ältere Menschen deutlich reduziert die Lebensqualität. Als Reaktion darauf haben physikalische Therapie und Rehabilitation im Mittelpunkt der Forschung im Bereich Wasserfälle gewesen, aber noch nicht mit der konsequenten Reduzierung der Prävalenz von wiederholten Stürzen in Verbindung gebracht. Zur gleichen Zeit, Arbeit untersucht Veränderungen im peripheren oder zentralen vestibulären Systems (die für das Gleichgewicht zu halten verantwortlich System) ist knapp, und mögliche therapeutische Strategien zugunsten solcher Systeme und die zugrunde liegenden Ursachen des Ungleichgewichts begrenzt. Jüngste Arbeiten auf altersbedingte neurodegenerative Erkrankungen einschließlich altersbedingter Makuladegeneration 2-4, Alzheimer-Krankheitsmodellen 5-8 und Parkinson 9-12 neuroprotektive Wirkungen si gezeigtenmple nicht-invasive Anwendung von Nahinfrarot (NIR). Ferner wird in dem Gleichgewichtsorgan, NIR verwendet wurde, um die Aktivität der vestibulären primären afferenten Neuronen in vitro 13 zu erhöhen. Während der Mechanismus der NIR-Licht ist nicht gut verstanden, haben die meisten Studien mit NIR vorgeschlagen, dass NIR stimuliert Mitochondrien Komplex IV (Cytochrom-c-Oxidase) 14-17 auf den Zellstoffwechsel zu erleichtern. In der vestibulären Sinnesepithel der subkutanen Platte vom Typ I Haarzellen dicht in Mitochondrien 18 und können als solche einen Wirkort für therapeutische NIR-Behandlung darstellen. Hier eine kurze, nicht-invasive Behandlung Regime transkraniell angewendet NIR, die verwendet werden können, um den Zellstoffwechsel zu messen (und implizit auch die Funktion der Mitochondrien) in der Maus vestibulären Sinnesepithel beschrieben. Ebenfalls diskutiert ist eine Vorbereitung des vestibulären Sinnesepithel und es wird gezeigt, dass NIR erhöht die Expression eines ubiquitous Antioxidans (Superoxiddismutase 1) im Riechepithel - früher gezeigt wichtig für Cochlea Haarzellüberleben 19 zu sein.

<table><tbody><tr><td>Quantum WARP 10</td><td>Quantum Devices</td><td>2070N030-A</td><td></td></tr><tr><td>Mikrotubuli mit Schraubverschluss</td><td>Qualität Scientific Plastics</td><td>520-GRD-Q</td><td></td></tr><tr><td>Ketamin</td><td>Parnell, Alexandria Australien</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Schere mit Standardmuster</td><td>FST</td><td>14001-12</td><td></td></tr><tr><td>Chirurgische Klingen aus Kohlenstoffstahl #22</td><td>Livingstone</td><td>SBLDCL 22</td><td></td></tr><tr><td>Friedman-Pearson rongeurs</td><td>FST</td><td>16221-14</td><td></td></tr><tr><td>Stereomikroskop</td><td>Leica Microsystems</td><td>A60S</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #5 SF Pinzette</td><td>FST</td><td>11252-00</td><td></td></tr><tr><td>Isolate II RNA Micro Kit</td><td>Bioline</td><td>BIO-52075</td><td></td></tr></tbody></table>

nahes infrarot (nir) licht erhöht ausdruck einer markierung der funktion der mitochondrien im maus vestibular sinnesepithel

Near Infrared (NIr) Light Increases Expression of a Marker of Mitochondrial Function in the Mouse Vestibular Sensory Epithelium

Strategien zur Dämpfung Rückgang der Abgleichfunktion mit zunehmendem Alter sind überwiegend konzentrierte sich auf physikalische Therapien einschließlich Balance Aufgaben und Bewegung. Allerdings sind diese Ansätze sich nicht auf die zugrunde liegenden Ursachen von Balance Rückgang. Verwendung von Mäusen wurde die Auswirkung von Licht im nahen Infrarot (NIR) auf den Stoffwechsel der Zellen in der vestibulären Sinnesepithel beurteilt. Die gesammelten Daten zeigen, dass diese einfache und sichere Intervention dieser gefährdeten Zellen vor den schädlichen Wirkungen der natürlichen Alterung schützen. mRNA wurde aus der isolierten peripheren vestibulären Sinnesepithel (crista ampullaris und utricular Makula) extrahiert und anschließend in einer cDNA-Bibliothek transkribiert. Diese Bibliothek wurde dann für die Expression von ubiquitären Antioxidans (SOD-1) sondiert. Antioxidans-Genexpression wurde dann verwendet, um den Zellstoffwechsel zu quantifizieren. Mit Hilfe der transkraniellen Lieferung von NIR bei jungen (4 Wochen) und älteren (8-9 Monate) Mäuse und eine kurze Behandlungsregime (90 sec / Tag für 5 days), diese Arbeit legt nahe, NIR allein kann ausreichen, um die Funktion der Mitochondrien im vestibulären Sinnesepithel verbessern. Da gibt es gegenwärtig keine verfügbaren, preiswert, nicht-invasive Therapieverfahren zur vestibulären Haarzellfunktion verbessern, die Anwendung von externen NIR-Strahlung stellt eine mögliche Strategie, um die Auswirkungen der Alterung auf den Zellstoffwechsel inder vestibulären Sinnesepithel entgegenzuwirken.

So vergleichen Sie die Auswirkungen der NIR-Behandlung bei jungen (4 Wochen) und älteren (8-9 Monate) Mäusen messen wir die Expression von antioxidativen Superoxid-Dismutase 1 (SOD-1) in junge (n = 16) und ältere (n = 20) Mäuse, die NIR-behandelten scheinbehandelten oder NIR-blockiert waren. Figur 2 zeigt eine signifikante Zunahme der β-Actin-normalisierten SOD-1-Expression von mehr als 2-fach in jungen NIR-behandelten Tieren im Vergleich zu jungen scheinbehandelten Tieren (p &lt;0,01) und junge NIR-blo...

Mitochondriale Dysfunktion ist ein Markenzeichen von Zellalterung. Dieser Aufsatz benutzt nicht-invasive nahen Infrarot (NIR) Behandlung die Mitochondrienfunktion im alternden Maus vestibulären Sinnesepithel verbessern.

Nahes Infrarot (NIR) Licht Erhöht Ausdruck einer Markierung der Funktion der Mitochondrien im Maus Vestibular Sinnesepithel

Strategies for attenuating decline in balance function with increasing age are predominantly focused on physical therapies including balance tasks and ...

Das übergeordnete Ziel des folgenden Experiments besteht darin, die potenzielle neuroprotektive Wirkung von nahinfrarotem Licht auf das vestibuläre Sinnesepithel der Maus zu untersuchen. Dies wird durch eine einfache, kurzfristige transkranielle Anwendung von nahinfrarotem Licht an Mäusen in verschiedenen Entwicklungsstadien erreicht. In einem zweiten Schritt werden die knöchernen Labyrinthe der behandelten Tiere präpariert, um das vestibuläre Sinnesepithel zu isolieren. Anschließend wird die Expression des antioxidativen Gens der Wahl mittels R-T-P-C-R gemessen, um die Wirkung der Behandlung auf die mitochondriale Leistungsfähigkeit zu beurteilen. Abschließend erfolgt eine Densitometrie, um den Effekt einer kurzen Nahinfrarotlichtbehandlung auf die Expression spezifischer antioxidativer Gene bei Mäusen zu bewerten. Der Hauptvorteil dieser Nahinfrarotbehandlungstechnik liegt darin, dass sie einfach und nichtinvasiv ist und somit weitere nachgeschaltete physiologische, molekulare und verhaltensbezogene Analysen nach der Behandlung ermöglicht.Die Implikationen dieser Technik reichen von einem möglichen neuroprotektiven Effekt auf das periphere vestibuläre System während des normalen Alterns bis hin zur Verbesserung der Gleichgewichtsleistung nach einer vestibulären Erkrankung oder Schädigung. Zwei bis drei Tage vor Beginn des Experiments sollte das Fell im Kopf- und Nackenbereich jeder Maus so kurz wie möglich abrasiert werden, um ein Nachwachsen der Haare vor Abschluss des Behandlungsprotokolls zu verhindern. Um den keimfreien Status der Tiere aufrechtzuerhalten, müssen die Instrumente zwischen den einzelnen Rasierungen mit 70 %igem Ethanol gereinigt werden.Dann am Tag der Behandlung für jedes Versuchstier heben Sie die Maus am proximalen Ende des Schwanzes auf und lassen Sie sie sich in der Handfläche einer Hand entspannen, um den Stress für die mit Nahinfrarot behandelten Tiere zu minimieren. Für jedes Tier halten Sie ein 670 Nanometer LED-Gerät ein bis zwei Zentimeter von der rasierten Stelle entfernt und schalten das Gerät 90 Sekunden lang ein. Für die Scheinbehandlungsgruppe wiederholen Sie den Behandlungsablauf auf dieselbe Weise, jedoch mit ausgeschaltetem Gerät. Für die Gruppe mit blockiertem Nahinfrarot behandeln Sie die Tiere genauso wie die mit Nahinfrarot behandelte Gruppe, jedoch mit dem Gerät, das mit Aluminiumfolie abgedeckt ist.Nachdem die Behandlungen für jede Gruppe an fünf aufeinanderfolgenden Tagen in Abständen von 24 Stunden wiederholt wurden, frisch zubereitete, auf Glycerin basierende künstliche zerebrospinale Flüssigkeit oder A CSF im Gefrierschrank bei minus 80 Grad Celsius 45 Minuten lang einfrieren, bis sich ein Eisschlamm bildet. Als Nächstes für jedes Mausexemplar mit einer abgerundeten Rasierklinge Nummer 22 einen Schnitt entlang der sagittalen Haut des Schädels durchführen, wobei die Schädelkalotte, das Gehirn und der darunterliegende Vestibularapparat durch regelmäßige Zugabe eiskalter A CSF über das Gewebe so kühl wie möglich gehalten werden. Danach mit dem spitzen Arm eines Paars Standardschere eine kleine Öffnung im Schädel am Lambda anlegen und entlang der sagittalen Naht schneiden.Danach schieben Sie vorsichtig einen Arm eines flachen URS unter den Scheitelbein und fixieren Sie das Scheitelbein, ziehen es seitlich und das Hinterhauptbein nach posterior, bis das Gehirn freigelegt ist. Verwenden Sie anschließend einen kleinen Spatel aus rostfreiem Stahl, um das Gehirn von der vorderen und mittleren Schädelgrube abzuheben. Um den Nervus vestibulocochlearis freizulegen, durchtrennen Sie den Nerv, um unnötige Zugspannung auf die primären afferenten Axone zu vermeiden, die direkt die Haarzellen des Vestibularorgans innervieren.Entfernen Sie dann das Gehirn vollständig und betrachten Sie das knöcherne Labyrinth, das die Cochlea und die peripheren vestibulären Organe in der Schädelgrube enthält. Führen Sie nun zwei kleine Einschnitte neben jedem knöchernen Labyrinth durch und halten und ziehen Sie den vorderen Bogengang lateral, um die gesamte Struktur zu entfernen. Tauchen Sie das entfernte Labyrinth anschließend unverzüglich in eine Petrischale mit eiskalter A-CSF-Lösung ein, während es kontinuierlich mit Carbogen perfundiert wird.Der schwierigste Teil dieses Verfahrens besteht darin, für jedes Tier konsistente Mengen an lebensfähigem Gewebe zu gewinnen; wir empfehlen daher sorgfältige Beobachtung und eine gezielte Beleuchtung des Gewebes. Halten Sie danach unter einem Stereomikroskop das Labyrinth am Schnecke fest und befestigen Sie das Gewebe mit einer geraden feinen Pinzette am Boden der Schale. Kratzen Sie eine kleine Öffnung in den Knochen oberhalb des vorderen Bogengangs. Danach sofort unterhalb des Knochens greifen und vorsichtig nach außen schnipsen, weg von der ULA, um die Öffnung sanft zu vergrößern. Auf diese Weise fortfahren, bis das Utrikel sowie der vordere und seitliche Pule vollständig freigelegt sind. Anschließend feine Pinzette verwenden, um Utrikel und Pule vorsichtig vom knöchernen Labyrinth anzuheben, bis sie vollständig gelöst sind.Schließlich die Vestibularorgane sicher mit der Spitze der Pinzette greifen und sie in frisch zubereitete Lysepufferlösung in einem verschraubbaren Mikroröhrchen platzieren; die Pinzette vorsichtig in dem Puffer bewegen, um die Vestibularorgane zu lösen. Danach unter dem Stereomikroskop bestätigen, dass keine Gewebestücke mehr an der Pinzette haften, das Mikroröhrchen verschließen und die Probe unverzüglich in flüssigem Stickstoff einfrieren, um die Wirkung der Nahinfrarotbehandlung zwischen jungen und älteren Mäusen vergleichen zu können.Messenger-RNA wurde in komplementäre DNA revers transkribiert, anschließend wurde die Expression der antioxidativen Superoxiddismutase 1 (SOD 1) mittels Densitometrie analysiert. Im Vergleich zu jungen Placebo-behandelten Tieren und jungen Tieren mit blockiertem Nahinfrarotlicht zeigte sich bei jungen, mit Nahinfrarotlicht behandelten Tieren eine signifikante, um mehr als das Zweifache erhöhte, auf Beta-Aktin normalisierte SOD-1-Expression. Auch ältere, mit Nahinfrarotlicht behandelte Tiere wiesen im Vergleich zu älteren Tieren mit blockiertem Nahinfrarotlicht eine mehr als zweifache Hochregulierung von SOD 1 auf. Nach diesem Verfahren können Verhaltens-, molekulare oder physiologische Experimente durchgeführt werden, um weitere Fragen zu beantworten, beispielsweise, ob Nahinfrarotlicht die Expression weiterer Gene oder Proteine im vestibulären Sinnesepithel erhöht.Oder verbessert nahinfrarotes Licht die allgemeine Gleichgewichtsleistung der behandelten Mäuse?

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Research

Forschung

JoVE Journal

Biology

Biologie

Fibroblasten von Patienten mit Mutationen in der Parkinson-Krankheit verursachenden Gene stellen ein leicht...

Die Verwendung von primären humanen Fibroblasten zur Überwachung Mitochondriale Phänotypen auf dem Gebiet der Parkinson-Krankheit

Quelle: Zhang, L., et al. Nahinfrarotlicht (NIr) erhöht die Expression eines Markers für die mitochondriale Funktion im vestibulären sensorischen Epithel der Maus. J. Vis. Exp. (2015)Dieses Video zeigt den Prozess der Anwendung von NIr-Licht auf einer rasierten Mauskopfhaut, um vestibuläre Neuronen zu aktivieren und die Produktion von Superoxiddismutase-1 (SOD-1) zu stimulieren, wodurch die neuronale Funktion unterstützt wird. Das Verfahren unterstreicht die NIr-Therapie als neuroprotektive...

Modulation der sensorischen neuronalen Signalübertragung in einem Mausmodell unter Verwendung von Nahinfrarotlicht

Dieses Video zeigt ein Verfahren, mit einem klinischen 3 T Scanner, für kontrastverstärkte MR-Bildgebung des naiven Maus visuelle Projektion und für sich wiederholende und Längs in-vivo-Studien der Sehnerv-Degeneration mit akuter Sehnerven Quetschverletzung und chronische Degeneration des Sehnervs an assoziierten Knock-out-Mäusen (p50 KO).

In-vivo-Imaging von Optic Nerve Fiber Integrität von Contrast-Enhanced MRI in Mäuse

Nichtkohärentes Xenonlicht wurde durch schmalbandige Interferenz- und Neutraldichtefilter geleitet, um kultivierten Zellen Licht unterschiedlicher Wellenlänge und Intensität zuzuführen. Dieses Protokoll wurde verwendet, um die Auswirkungen der Rot-/Nahinfrarotlichttherapie auf die Produktion reaktiver Spezies in vitro zu bewerten: Unter Verwendung der getesteten Parameter wurden keine Effekte beobachtet.

Verfahren zur Beurteilung der Auswirkungen einer Reihe von Wellenlängen und Intensitäten von Rot / Nah-Infrarot-Licht-Therapie auf oxidativen Stress In-vitro-

Photobiomodulation Therapie ist eine innovative nicht-invasive Modalität für die Behandlung einer Vielzahl von neurologischen und psychiatrischen Erkrankungen und auch gesunde Gehirnfunktion verbessern kann. Dieses Protokoll enthält eine schrittweise Anleitung zum Durchführen von Gehirn Photobiomodulation bei Mäusen durch transkranielle Lichtleitung, die für den Einsatz in anderen Labors Nagetiere angepasst werden können.

Ein Protokoll für die transkranielle Photobiomodulation Therapie bei Mäusen

Hier stellen wir ein Protokoll vor, das nahezu infrarote Farbstoffe in Verbindung mit Immunhistochemie und hochauflösendem Scannen verwendet, um Proteine in Hirnregionen zu untersuchen.

Einsatz von Infrarot-Fluoreszenz und hochauflösendem Scannen zur Messung des Protein-Expression im Rodentrains

Das vorliegende Protokoll beschreibt eine detaillierte Echtzeit-NIR-II-Fluoreszenz-Bildgebungsoperation einer Maus unter Verwendung eines NIR-II-optischen Bildgebungsgeräts.

Eine helle NIR-II-Fluoreszenzsonde für die Gefäß- und Tumorbildgebung

Hier beschreiben wir eine Datenerhebung und Datenanalyse-Verfahren für die funktionelle Nahinfrarot-Spektroskopie (fNIRS), eine neue, nicht-invasive Bildgebung des Gehirns System in den kognitiven Neurowissenschaften, insbesondere in das Studium Kind die Entwicklung des Gehirns. Diese Methode bietet einen universellen Standard für die Datenerfassung und Analyse entscheidend für die Interpretation der Daten und der wissenschaftlichen Entdeckung.

Exploring Cognitive Functions in Babies, Kinder &amp; Erwachsene mit Nahinfrarot-Spektroskopie

Dieses Verfahren zeigt, wie die Gene Pulser MXcell Elektroporation System nutzen, um schnell und einfach identifizieren die besten Bedingungen für die Elektroporation embryonalen Maus-Fibroblasten (MEFs) oder andere Primärzellen. Überlegungen zur Fehlerbehebung sind auch in den zugehörigen Video diskutiert.

Mit dem Gene Pulser MXcell Elektroporation System zur Primary Cells mit hohem Wirkungsgrad zu transfizieren

Die Hallo-C-Methode ermöglicht unvoreingenommene, genomweite Identifizierung von Chromatin-Wechselwirkungen (1). Hallo-C Paare Ligationssysteme und massiv parallele Sequenzierung. Die resultierenden Daten können verwendet werden, um genomische Architektur auf mehreren Skalen zu studieren: die ersten Ergebnisse identifizierten Features wie Chromosom Gebiete, Segregation von offenen und geschlossenen Chromatin und Chromatin-Struktur an der Megabasen.

Hallo-C: eine Methode, um die dreidimensionale Architektur des Genoms Study.

Erfahren Sie die neuroprotektive Wirkung von Nahinfrarotlicht auf das vestibuläre Sinnesepithel alternder Mäuse. Diese nicht-invasive Methode verbessert die Mitochondrienfunktion und erhöht die Expression antioxidativer Gene signifikant.

Nahes Infrarot (NIR) Licht Erhöht Ausdruck einer Markierung der Funktion der Mitochondrien im Maus Vestibular Sinnesepithel

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