Name: Ein Modell der kardialen Remodeling Durch Zusammenziehen der Bauchaorta bei Ratten (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-12-02T10:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 31 s
Description: Lernen Sie ein minimal-invasives Verfahren zur Bauchaortenkonstriktion bei Ratten zur Induktion kardialer Hypertrophie und Remodeling. Diese Methode ermöglicht reproduzierbare Ergebnisse für die Erforschung kardiovaskulärer Mechanismen.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Die Arbeit der Autoren wurde durch ein Stipendium des Ministeriums für Wissenschaft und Technologie (MOST 103-2320-B-002-068-MY2), des National Health Research Institute (NHRI-EX104-10418SC) und der National Taiwan University (NTU 104R4000) unterstützt.

Alle Tierversuche wurden in Übereinstimmung mit dem Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Labortieren, veröffentlicht von der US-amerikanischen National Institutes of Health (NIH Publikation Nr. 85-23, überarbeitet 1996). Dieses Protokoll wurde von und in Übereinstimmung mit den Richtlinien der Institutional Animal Care und Use Committee an der National Taiwan University dargelegt genehmigt. 1. Tierchirurgie <ol><li> Bereiten Sie eine 22 G Spritzennadel durch auf einem Honstein die Spitze der Nadel Abstumpfung. Mit einer Zange, Plicate die Nadel zu einem rechten Winkel. </li><li> Vor der Operation vorbereiten die erforderlichen chirurgischen Instrumenten und Materialien, sowie einen Erholungskäfig. Autoclave alle Instrumente und chirurgische Versorgung vor dem Gebrauch. </li><li> Pflegen Sie die Ratten rund 200 g und halten sie unter 12 Stunden Licht / Dunkel-Zyklen bei kontrollierter Temperatur (21 ± 2 ° C) mit freiem Zugang zu Nahrung und Wasser. Fügen Sie mindestens 6 Ratten in jeder Gruppe. Anästhesieren die Ratten mit Pentobarbital(75 mg / kg in 0,5 ml, ip) oder einem anderen geeigneten Anästhetikum. Bestätigen Sie die Tiefe der Anästhesie durch Testen der Schwanz Reflex. HINWEIS: Die Abwesenheit von tail reflex ist ein Indikator für eine ausreichende Anästhesie. </li><li> Legen Sie eine Ratte in Rückenlage auf einer Operation Plattform mit einem Heizkissen, die Körpertemperatur zu halten. Rasieren Sie die Bauchregion der Ratte mit einem Tierhaarschneider und Haarentferner Lotion auf chirurgische Kontaminationen zu vermeiden. Scrub die sauber rasierten Bauch mit Betadin oder einem anderen Reinigungs Reagenz vor der Operation. Hinweis: Es ist wichtig, einen sterilen Bereich während des gesamten Verfahrens aufrecht zu erhalten. </li><li> Machen Sie eine 2 cm lange Inzision entlang der Mittellinie des Bauches mit einem Skalpell. Mit normaler Kochsalzlösung, halten Sie die Bauchorgan feucht während der Operation. Verdrängen die Verdauungsorgane sorgfältig auf die Seite mit Wattebällchen die untere Hohlvene zu machen, die in der hinteren Peritonealdialyse Region liegt. Identifizieren Sie die Bauchaorta, die und in der Regel nebeneinander liegt auf derder inferior vena cava gelassen. HINWEIS: Die Bauchaorta ist das Gefäß, das mit der Herzfrequenz in der Zeit pulsiert. </li><li> Pierce das Peritoneum mit einer Pinzette die Gefäße unter aufzudecken. Isolieren Sie vorsichtig die Bauchaorta neben den Nierenarterien und eine 8 cm lange 4-0 Seidennaht unterhalb der Bauchaorta zwischen den Ursprüngen des rechten und linken Nierenarterien passieren. </li><li> Machen Sie einen losen doppelten Knoten mit der Naht; lassen einen Durchmesser von 3 mm Schleife und legen Sie die stumpfe und gebogen 22 G-Nadel in der Schleife. Ziehen Sie den Knoten um die Aorta und der Nadel, und dann entfernen Sie die Nadel sofort einen Durchmesser von 0,7 mm Verengung zu erreichen. </li><li> Schließen Sie die Bauchhöhle mit 6-0 resorbierbares Nahtmaterial. Nähen Sie die Muskel- oder Hautschnitte mit einfachen Nähten. Um eine Infektion zu verhindern, reiben Sie die Operationsstelle mit einer Jodtinktur. </li><li> Beobachten Sie das Tier vorsichtig, bis es ausreichend, das Bewusstsein wiedererlangt, wie durch freie Bewegung angezeigtund die Nahrungsaufnahme. Verwenden Sie kein Tier unbeaufsichtigt lassen, bis es genügend Bewusstsein zu halten Brustlage wiedergewonnen hat. Um zu verhindern, Schmerzen nach der Operation, behandeln die Ratte mit Paracetamol (300 mg / kg in 0,5 ml, ip). HINWEIS: Die Benutzer sollten Analgetika verabreichen, wie durch institutionelle Politik genehmigt. </li></ol> 2. Gewebe und Blut-Beispielsammlung <ol><li> Bei 10 Wochen nach der Operation, wiegen die Ratte und anästhesieren es mit Pentobarbital (75 mg / kg in 0,5 ml, ip). Vor der Operation bestätigen die Tiefe der Anästhesie am Schwanz Reflex zu testen. Legen Sie die Ratte auf einer Metallplatte. </li><li> Machen Sie eine 2 cm lange Inzision entlang der Mittellinie des Halses mit einem Skalpell. Verdrängen die Muskeln vorsichtig mit einer Pinzette in die Trachea zu belichten. Beachten Sie den Karotisarterien zu identifizieren, die an der Trachea parallel sind und pulsieren im Takt der Herzfrequenz. </li><li> Sammeln Sie das Blut aus der Arteria carotis in ein Röhrchen zur Blutsammlung mit EDTA beschichtet. unmittelbar Zentrifugedas Blut für 15 min bei 2000 xg und sammeln des Plasmas. Lagern Sie das Blutplasma bei -80 ° C bis benötigt. </li><li> Machen Sie eine 5 cm lange Inzision im Bereich der Brustwirbelsäule, um die Mittellinie des Xyphoid Prozess. Pierce die Membran mit scharfen Pinzette. Mit einer Schere, schneiden und den Brustkorb entlang der Mitte der clavicular Linien auf beiden Seiten entfernen, um das Herz aussetzen. Excise das Herz sorgfältig entlang der Herz- und Gefäß Grenzen. Entfernen Sie das Herz sanft ohne das Gewebe zu greifen. </li><li> Montieren Sie das Herz auf einem Langendorff Perfusionsgerät modifiziert, indem der Aorten-Stamm zur Perfusion Nadel zu binden. Perfundieren das Herz mit Krebs - Puffer (enthaltend 110 mM NaCl, 2,6 mM KCl, 1,2 mM KH 2 PO 4, 1,2 mM MgSO 4, 25 mM NaHCO 3 und 11 mM Glucose [pH 7,4]) , um das Blut auszuwaschen. Wiegen Sie das Herz und berechnen das Herz-Gewicht-zu-Körper-Gewichts-Verhältnis. Befestigen Sie das Herz mit 4% Paraformaldehyd auf dem Eis. Denken Sie daran, eine Maske zu tragen, da Paraformaldehyddampf tox istic. </li></ol> 3. Gewebsfibrose Quantifizierung <ol><li> Legen Sie das Paraformaldehyd-fixierten Herzgewebe auf einer Gewebetrennvorrichtung und schneiden 2 mm dicke Abschnitte. Legen Sie die Gewebeschnitte in einer Einbettungskassette. Dehydratisieren, um das Gewebe durch eine Reihe von abgestuften Alkoholbädern (50%, 75%, 95% und 100% für 1 h jeweils). </li><li> Infiltrieren des Gewebes mit Xylol für 1 Stunde und schließlich in Wachs für 1 Stunde. Legen Sie das infiltrierte Gewebe in eine Einbettungskassette und betten mit Paraffinwachs. Lagern Sie die eingebetteten Gewebe in Paraffinblöcken bei Raumtemperatur bis Mikrotom. </li><li> Schneiden Sie das eingebettete Gewebe in 4 um dicke Abschnitte. Legen Sie die Abschnitte in einem 45 ° C Wasserbad. Tauchen Sie ein Glasobjektträger in das Wasserbad in einem Winkel und nähern sich allmählich der Paraffinschnitt Kanten teilweise die Befestigung an der Folie zu ermöglichen. </li><li> Bewegen des Schlittens in und aus dem Bad potentiellen Lufttaschen unter dem Gewebeschnitt zu entfernen und eine bessere Befestigung zu erleichtern. Dry ter gleitet bei 37 ºC für 1 Stunde und lagern Sie sie bei Raumtemperatur für eine histologische Färbung. </li><li> Legen Sie die Folie in einen Tank. Entparaffinieren Objektträger mit Xylol für 30 min und rehydratisieren in sequenziell verdünnten Alkohol (95%, 75% und 50% für 3 min jeweils) und schließlich in destilliertem Wasser. Eine ausreichende Picrosirius rote Lösung, um vollständig die Gewebeschnitte für 1 h abdecken. Spülen Sie die Folien in einer 0,5% igen Essigsäurelösung für zwei Änderungen vor, und führen Sie dann zwei Spülungen in absolutem Alkohol. </li><li> die Folie der Luft trocknen und die Folie in Kunstharz mit einem Deckglas montieren. Fotografieren Sie die Folie in einem sichtbaren Lichtbereich. HINWEIS: Der rote Bereich in der Fotografie zeigt eine Picrosirius rot positive Zone unter einem Mikroskop bei 200-facher Vergrößerung. Berechnen Sie den Prozentsatz der Picrosirius rot positive Zone über die gesamte Fläche, die das Ausmaß der Fibrose zeigt 11. </li></ol> 4. Blut Troponin Quantifizierung <ol><li> Quantifizieren Plasma Troponin Ebenenunter Verwendung eines Enzym-linked immunosorbent assay (ELISA). Assay jede Probe in zweifacher Ausfertigung. Last 50 ul Blutplasma und 50 ul einer Antikörper-Cocktail in die Vertiefungen. Verschließen Sie die Platte und Inkubation für 1 Stunde bei Raumtemperatur auf einem Plattenschüttler bei 400 Umdrehungen pro Minute. HINWEIS: Cardiac Troponin in Plasma ist ein Marker für Herzschädigung. </li><li> Saugen Sie die Flüssigkeit und Waschen jeder Vertiefung mit 250 ul Waschpuffer dreimal. Nach der letzten Waschung, kehren die Platte und tupfen sie gegen die saubere Papiertücher überschüssige Flüssigkeit zu entfernen. </li><li> 100 l Tetramethylbenzidinsubstrat in jede Vertiefung und Inkubation für 10 min im Dunkeln auf einem Plattenschüttler bei 400 Umdrehungen pro Minute. 100 l Stopplösung in jede Vertiefung geben. Schütteln Sie die Platte auf einem Plattenschüttler für 1 min zu mischen. Aufzeichnen der optischen Dichte (OD) bei 450 nm. HINWEIS: Die Troponin-Konzentration auf dem OD-Wert verhältnismäßig ist. </li></ol>

<ol><li>Houser, S. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+heart+failure%3A+a+scientific+statement+from+the+American+Heart+Association%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Animal models of heart failure: a scientific statement from the American Heart Association.</a> Circ Res. 111, 131-150 (2012).</li>
<li>Towbin, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inherited+cardiomyopathies%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+J%22%5BJournal%5D)">Inherited cardiomyopathies.</a> Circ J. 78, 2347-2356 (2014).</li>
<li>Breckenridge, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heart+failure+and+mouse+models%5BTitle%5D)+AND+%22Dis+Model+Mech%22%5BJournal%5D)">Heart failure and mouse models.</a> Dis Model Mech. 3, 138-143 (2010).</li>
<li>van Bilsen, M., van Nieuwenhoven, F. A., van der Vusse, G. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metabolic+remodelling+of+the+failing+heart%3A+beneficial+or+detrimental%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovasc+Res%22%5BJournal%5D)">Metabolic remodelling of the failing heart: beneficial or detrimental?</a> Cardiovasc Res. 81, 420-428 (2009).</li>
<li>Patten, R. D., Hall-Porter, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+animal+models+of+heart+failure%3A+development+of+novel+therapies%2C+past+and+present%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Heart+Fail%22%5BJournal%5D)">Small animal models of heart failure: development of novel therapies, past and present.</a> Circ Heart Fail. 2, 138-144 (2009).</li>
<li>Gu, W. L., Chen, C. X., Huang, X. Y., Gao, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+angoroside+C+on+pressure+overload-induced+ventricular+remodeling+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Phytomedicine%22%5BJournal%5D)">The effect of angoroside C on pressure overload-induced ventricular remodeling in rats.</a> Phytomedicine. 22, 705-712 (2015).</li>
<li>Zhang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alteration+of+cardiac+ACE2%2FMas+expression+and+cardiac+remodelling+in+rats+with+aortic+constriction%5BTitle%5D)+AND+%22Chin+J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Alteration of cardiac ACE2/Mas expression and cardiac remodelling in rats with aortic constriction.</a> Chin J Physiol. 57, 335-342 (2014).</li>
<li>Tardif, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nestin+upregulation+characterizes+vascular+remodeling+secondary+to+hypertension+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Nestin upregulation characterizes vascular remodeling secondary to hypertension in the rat.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 308, H1265-H1274 (2015).</li>
<li>Li, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myeloid+mineralocorticoid+receptor+deficiency+inhibits+aortic+constriction-induced+cardiac+hypertrophy+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Myeloid mineralocorticoid receptor deficiency inhibits aortic constriction-induced cardiac hypertrophy in mice.</a> PLoS One. 9, e110950(2014).</li>
<li>Ku, H. C., Su, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DPP4+deficiency+preserved+cardiac+function+in+abdominal+aortic+banding+rats%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">DPP4 deficiency preserved cardiac function in abdominal aortic banding rats.</a> PLoS One. 9, e85634(2014).</li>
<li>Lee, S. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Caffeic+acid+ethanolamide+prevents+cardiac+dysfunction+through+sirtuin+dependent+cardiac+bioenergetics+preservation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Sci%22%5BJournal%5D)">Caffeic acid ethanolamide prevents cardiac dysfunction through sirtuin dependent cardiac bioenergetics preservation.</a> J Biomed Sci. 22, 80(2015).</li>
<li>Gs, A. K., Raj, B., Santhosh, K. S., Sanjay, G., Kartha, C. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ascending+aortic+constriction+in+rats+for+creation+of+pressure+overload+cardiac+hypertrophy+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Ascending aortic constriction in rats for creation of pressure overload cardiac hypertrophy model.</a> J Vis Exp. , e50983(2014).</li>
<li>deAlmeida, A. C., van Oort, R. J., Wehrens, X. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transverse+aortic+constriction+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Transverse aortic constriction in mice.</a> J Vis Exp. , e1729(2010).</li>
<li>Schaefer, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+New+Animal+Model+for+Investigation+of+Mechanical+Unloading+in+Hypertrophic+and+Failing+Hearts%3A+Combination+of+Transverse+Aortic+Constriction+and+Heterotopic+Heart+Transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">A New Animal Model for Investigation of Mechanical Unloading in Hypertrophic and Failing Hearts: Combination of Transverse Aortic Constriction and Heterotopic Heart Transplantation.</a> PLoS One. 11, e0148259(2016).</li>
<li>Rodriguez-Iturbe, B., Quiroz, Y., Kim, C. H., Vaziri, N. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hypertension+induced+by+aortic+coarctation+above+the+renal+arteries+is+associated+with+immune+cell+infiltration+of+the+kidneys%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Hypertens%22%5BJournal%5D)">Hypertension induced by aortic coarctation above the renal arteries is associated with immune cell infiltration of the kidneys.</a> Am J Hypertens. 18, 1449-1456 (2005).</li>
<li>Ku, H. C., Lee, S. Y., Yang, K. C., Kuo, Y. H., Su, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modification+of+Caffeic+Acid+with+Pyrrolidine+Enhances+Antioxidant+Ability+by+Activating+AKT%2FHO-1+Pathway+in+Heart%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Modification of Caffeic Acid with Pyrrolidine Enhances Antioxidant Ability by Activating AKT/HO-1 Pathway in Heart.</a> PLoS One. 11, e0148545(2016).</li>
<li>Bovill, J. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravenous+anesthesia+for+the+patient+with+left+ventricular+dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22Semin+Cardiothorac+Vasc+Anesth%22%5BJournal%5D)">Intravenous anesthesia for the patient with left ventricular dysfunction.</a> Semin Cardiothorac Vasc Anesth. 10, 43-48 (2006).</li>
<li>Inoko, M., Kihara, Y., Morii, I., Fujiwara, H., Sasayama, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transition+from+compensatory+hypertrophy+to+dilated%2C+failing+left+ventricles+in+Dahl+salt-sensitive+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Transition from compensatory hypertrophy to dilated, failing left ventricles in Dahl salt-sensitive rats.</a> Am J Physiol. 267, H2471-H2482 (1994).</li>
<li>Heyen, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural%2C+functional%2C+and+molecular+characterization+of+the+SHHF+model+of+heart+failure%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Structural, functional, and molecular characterization of the SHHF model of heart failure.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 283, H1775-H1784 (2002).</li>
</ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Hypertensive Herzkrankheiten, ein schwerwiegendes Gesundheitsproblem, das stark zur Morbidität und Mortalität beiträgt, können zu Herzhypertrophie und Herzinsuffizienz führen5. Die Pathogenese und das Fortschreiten der hypertensiven Herzkrankheit beim Menschen sind komplex, daher ist ein geeignetes Tiermodell entscheidend, um die zugrunde liegenden Mechanismen zu untersuchen und neuartige Therapeutika zu testen, die darauf abzielen, die Herzstruktur und -funktion zu verbessern5. Das Modell der Bauch...

Herzinsuffizienz ist ein komplexes klinisches Syndrom, die Symptome von denen Müdigkeit, Dyspnoe, Belastungsintoleranz und Flüssigkeitsretention in den peripheren Geweben. Es ist die häufigste Todesursache in den Industrieländern 1. Abgesehen von ererbten Kardiomyopathie verursacht durch Mutationen in Sarkomers Proteine oder Ionenkanäle 2 können myokardialen Dysfunktion durch eine Vielzahl von medizinischen Bedingungen verursacht werden, einschließlich Bluthochdruck, Herzklappenerkrankungen, Fettleibigkeit, Diabetes und 3. Veränderungen der myokardialen Struktur, die elektrische Leitfähigkeit und den Energiestoffwechsel führen zu einer unzureichenden Herzpumpleistung Kreislauf- Anforderungen gerecht zu werden, was letztlich bei Herzinsuffizienz ergibt 3,4. Untersuchung der Mechanismen Herzinsuffizienz zugrunde liegt, ist daher kritisch im Bereich der Herz-Kreislauf-Forschung. molekularen Mechanismen identifizieren zu Herzinsuffizienz Progression führt, kann in der Entdeckung neuer therapeutischer Targets oder nützliche Biomarker schließlich helfen <sup&gt; 1. Es ist daher wichtig , Herzinsuffizienz Tiermodelle , die teilen wichtigsten klinischen Merkmale mit Herzinsuffizienz beim Menschen 5 zu entwickeln. Herzhypertrophie und Remodellierung spielt eine kritische Rolle in der Entwicklung von Herzinsuffizienz. Hypertensive Herzkrankheit ist der Schlüssel Faktor der Herzhypertrophie und der unpassenden Remodeling bei menschlichen Patienten gesehen 1. Um diese menschlichen Bedingungen, Tiermodelle imitieren häufig durch chirurgische Verfahren etabliert. Insbesondere kann die Quer oder abdominalen Aorta eingeschnürt werden, um den Widerstand gegen den linken Ventrikel zu erhöhen, die letztlich in dem Herzen zu einer Drucküberlastung führt. Dieses Phänomen führt in der Regel Herzhypertrophie, eine physiologische Kompensation der Kardiomyozyten die funktionelle Nachfrage des kardiovaskulären Systems zu erfüllen. Allerdings überschreibt die funktionelle Forderung, die normalen physiologischen Kompensationsmechanismen, was zu Herzfibrose und contracFliesen Beeinträchtigung. Quer Aortakonstriktion (TAC) Chirurgie umfasst oft komplizierte Verfahren, einschließlich Thorakotomie, mechanische Belüftung und die Trennung des Thymus und Fettgewebe aus dem Aortenbogen. Im Gegensatz dazu benötigt Bauch - Aorten - Verengung einfacher experimentelle Techniken 6-8. Die abdominale Aorta, zwischen der linken und der rechten Nierenarterien, ist während der Operation eingeschnürten. Herzhypertrophie und Umbau kann mehrere Wochen nach der Bauch Aortakonstriktion Chirurgie 6-8 beobachtet werden; sie produzieren robuste hypertensive Herzerkrankung ähnlich der 9,10 durch die Quer Aortakonstriktion Operation erzeugt. Hier beschreiben wir ein Protokoll abdominal aortic Einschnürung in Ratten durchzuführen unter Verwendung eines effizienten, hoch reproduzierbar und minimal-invasive Verfahren. Die Bauchaorta neben den Nierenarterien wird durch eine 0,72 mm Schleife durch einen 4-0 Seidenfaden gebildet schnürt. Zehn Wochen nach der Operation, Herzhypertrophie und remodeling beobachtet werden. Das Rattenmodell der abdominal aortic Einschnürung induzierter bietet Herzhypertrophie eine Plattform zur Untersuchung von Krankheitsmechanismen und Pathophysiologie sowie die Entwicklung von potentiellen Therapeutika.

<table><tbody><tr><td>22 G Spritzennadel&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp; BD Biowissenschaften&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td></td><td></td>309572</tr><tr><td>EDTA-Blutentnahmeröhrchen</td><td>&nbsp; &nbsp; BD Biowissenschaften&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td></td><td></td>REF365974</tr><tr><td>4-0 Seidennaht&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>Sharpoint&Handel; Produkte&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>DC-2515N</td><td></td></tr><tr><td>6-0 Seidennaht&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>Sharpoint&Handel; Produkte&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>DC-2150N</td><td></td></tr><tr><td>Pentobarbital&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>Sigma Aldrich&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td></td><td></td>1507002</tr><tr><td>Paraformaldehyd&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>Sigma Aldrich&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td></td><td></td>441244</tr><tr><td>Paracetamol</td><td>Sigma Aldrich&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>A7085</td><td></td></tr><tr><td>Picrosirius-rote Lösung&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>Abcam&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>ab150681</td><td></td></tr><tr><td>Troponin-Kit für das Herz &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; Abcam&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>ab200016</td><td></td></tr><tr><td>Imagequant</td><td>Molekulardynamik</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Langendorff&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; ADInstrumente&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td></td><td></td>ML870B2</tr></tbody></table>

ein modell der kardialen remodeling durch zusammenziehen der bauchaorta bei ratten

A Model of Cardiac Remodeling Through Constriction of the Abdominal Aorta in Rats

Herzinsuffizienz ist eine der häufigsten Todesursachen weltweit. Es handelt sich um ein komplexes klinisches Syndrom, das Müdigkeit, Dyspnoe, Belastungsintoleranz und Flüssigkeitsretention umfasst. Veränderungen der Myokardstruktur, der elektrischen Leitung und des Energiestoffwechsels entwickeln sich mit Herzinsuffizienz, was zu kontraktiler Dysfunktion, erhöhtem Risiko für Herzrhythmusstörungen und plötzlichem Tod führt. Hypertensive Herzkrankheiten sind einer der Hauptfaktoren für den kardialen Umbau im Zusammenhang mit Herzinsuffizienz. Das am häufigsten verwendete Tiermodell, das eine hypertensive Herzkrankheit nachahmt, entsteht durch chirurgische Eingriffe, wie z. B. durch Verengung der Aorta. Die Bauchaortenverengung ist eine nützliche experimentelle Technik, um eine Drucküberlastung zu induzieren, die zu Herzinsuffizienz führt. Die Operation kann problemlos durchgeführt werden, ohne dass eine Brustöffnung oder eine mechanische Beatmung erforderlich ist. Die durch eine abdominale Aortenkonstriktion induzierte kardiale Pathologie schreitet allmählich fort, was dieses Modell für die klinische hypertensive Herzinsuffizienz relevant macht. Herzschäden und -umbau können 10 Wochen nach der Operation beobachtet werden. Das hier beschriebene Verfahren bietet einen einfachen und effektiven Ansatz zur Herstellung eines Tiermodells für hypertensive Herzkrankheiten, das für die Untersuchung von Krankheitsmechanismen und für die Erprobung neuartiger Therapeutika geeignet ist.

10 Wochen nach der Bauch Aortakonstriktion Chirurgie, die resultierende Herzpathologie untersucht. Die Herz Histologie wurde durch Berechnung des Verhältnisses des Herzgewichtes zum Körpergewicht und durch Detektieren der Menge von Kollagen in das Herz gemessen. Herzschädigung wurde durch Messung der Plasma-Troponin-Konzentration bestätigt. Wie in 1A gezeigt, wurde die Herzgröße nach abdominal aortic Einschnür...

Ein Rattenmodell der abdominalen Aortenverengung, das Herzhypertrophie und Umbau induziert, wird beschrieben. Eine effiziente, hochgradig reproduzierbare und minimal-invasive Methode wird verwendet, um eine einfache, aber nützliche Plattform für die Erforschung von Myokardhypertrophie und -dysfunktion bereitzustellen.

Ein Modell der kardialen Remodeling Durch Zusammenziehen der Bauchaorta bei Ratten

Heart failure is one of the leading causes of death worldwide. It is a complex clinical syndromethat includes fatigue, dyspnea, exercise intolerance, and ...

Das übergeordnete Ziel des chirurgischen Eingriffs besteht darin, eine einfache Plattform zur Untersuchung von myokardialer Hypertrophie, Remodeling und Dysfunktion bereitzustellen. Diese Methode kann helfen, zentrale Fragen im kardiovaskulären Bereich zu beantworten, beispielsweise Signalkaskaden, die an der kardialen Hypertrophie und dem Remodeling beteiligt sind, sowie die Identifizierung neuer therapeutischer Zielstrukturen bei hypertensiver Herzerkrankung.Der Hauptvorteil dieser Technik liegt darin, dass es sich um ein minimalinvasives Verfahren handelt, das nur sehr einfache chirurgische Techniken erfordert und dennoch äußerst reproduzierbare Ergebnisse liefert. Die Bedeutung dieser Techniken reicht bis in die Therapie der hypertensiven Herzerkrankung hinein. Da die Einengung der Bauchaorta einen Drucküberlastzustand verursacht, der letztendlich zur kardialen Hypertrophie, Remodeling und Herzinsuffizienz führt.Beginnen Sie damit, eine 22-Gauge-Spritzennadel vorzubereiten, indem Sie die Spitze mit einem Schleifstein abstumpfen. Biegen Sie die Nadel anschließend mit einer Zange im rechten Winkel um. Bereiten Sie die erforderlichen chirurgischen Materialien vor, einschließlich des Erholungskäfigs, und autoklavieren Sie die chirurgischen Instrumente.Halten Sie die Ratten bei etwa 200 Gramm und unter 12-Stunden-Licht-Dunkel-Zyklen bei kontrollierter Temperatur mit freiem Zugang zu Futter und Wasser. Legen Sie die Ratte in Rückenlage auf eine Operationsplattform mit einer Heizplatte, um die Körpertemperatur aufrechtzuerhalten. Rasieren Sie den Operationsbereich vollständig, um eine Kontamination der Wunde durch Berührung mit Fell zu vermeiden.Danach mit Betaisodona oder einem anderen Reinigungsmittel den sauber rasierten Bauch abreiben. Anschließend mit einem Skalpell einen zwei Zentimeter langen Schnitt entlang der Bauchmitte durchführen. Danach die Bauchorgane mit physiologischer Kochsalzlösung befeuchten und während der Operation feucht halten.Verwenden Sie Wattebäusche, um die Verdauungsorgane vorsichtig zur Seite zu schieben und die untere Hohlvene sowie den hinteren Peritonealbereich freizulegen. Identifizieren Sie dann die Bauchaorta, die direkt benachbart liegt und gewöhnlich links der unteren Hohlvene verläuft. Durchstoßen Sie nun mit einer Pinzette das Peritoneum, um die darunterliegenden Gefäße freizulegen.Isolieren Sie vorsichtig die Bauchaorta neben den Nierenarterien und führen Sie einen acht Zentimeter langen 4/0-Seidenfaden unterhalb des Gefäßes zwischen den Ursprüngen der rechten und linken Nierenarterie hindurch. Machen Sie eine lockere Doppelschlinge mit dem Faden und lassen Sie eine Schleife mit einem Durchmesser von drei Millimetern stehen. Platzieren Sie dann die abgestumpfte und gebogene Nadel der Größe 22 in der Schleife.Ziehen Sie den Knoten um die Aorta und die Nadel fest und entfernen Sie die Nadel sofort, um eine Einschnürung mit einem Durchmesser von 0,7 Millimetern zu erzielen. Schließen Sie mit 6/0-Nähten die Bauchhöhle. Anschließend verschließen Sie die Muskel- und Hautinzisionen mit einfachen unterbrochenen Nähten.Desinfizieren Sie die Operationsstelle mit Jodtinktur, um eine Infektion zu verhindern. Um postoperative Schmerzen zu vermeiden, behandeln Sie das Tier mit Acetaminophen und beobachten Sie es genau, bis es ausreichend bei Bewusstsein ist, was durch freie Bewegung und Nahrungsaufnahme angezeigt wird, und Sternumlage beibehält. Wiegen Sie die Ratte 10 Wochen nach der Operation.Nach der Anästhesie des Tieres und Bestätigung der Anästhesietiefe wird die Ratte auf ein Metalltablett platziert. Führen Sie nun einen fünf Zentimeter langen Schnitt im thorakalen Bereich um die Mittellinie des Processus xiphoideus herum durch. Durchstechen Sie mithilfe einer scharfen Pinzette das Zwerchfell.Danach mit einer Schere den Rippenkorb beidseits entlang der mittelklavikulären Linien durchschneiden und entfernen, um das Herz freizulegen. Das Herz vorsichtig entlang der kardialen und vaskulären Grenzen herausschneiden. Anschließend das Herz behutsam entfernen, ohne das Gewebe zu greifen.Montieren Sie das Herz an einer modifizierten Langendorff-Perfusionsapparatur, indem Sie den Aortenstamm an die Perfusionsnadel binden. Anschließend perfundieren Sie das Herz mit Krebs-Puffer, um das Blut auszuwaschen. Wiegen Sie das Herz und berechnen Sie das Verhältnis von Herzgewicht zu Körpergewicht.Dann das Organ unter Verwendung einer Maske in 4 % Paraformaldehyd geben und über Nacht auf Eis fixieren. Nach der Fixierung des Herzgewebes dieses auf ein Gewebeschnidgerät legen, in zwei Millimeter dicke Schnitte zerlegen und die Schnitte in eine Einbettungskassette geben. Nach der Paraffineinbettung und weiteren Schnitten gemäß dem Textprotokoll die Objektträger entspannen, indem sie für 30 Minuten in ein Gefäß mit Xylol gegeben werden.Anschließend das Gewebe in einer nacheinander verdünnten Alkoholreihe und danach in destilliertem Wasser rehydrieren. Danach ausreichend Picrosiriusrot-Lösung verwenden, um die Gewebeschnitte vollständig zu bedecken, und eine Stunde inkubieren. Anschließend die Objektträger zweimal mit einer 0,5-%igen Essigsäurelösung spülen.Spülen Sie die Proben zweimal in absolutem Alkohol aus. Lassen Sie die Proben an der Luft trocknen und betten Sie sie in synthetisches Harz mit einem Deckglas ein. Verwenden Sie dann sichtbares Licht bei einer 200-fachen Vergr&ouml;&szlig;erung unter dem Mikroskop, um die Objekttr&auml;ger abzubilden.Schließlich berechnen Sie den Prozentsatz der picrosiriusrot positiven Fläche im Verhältnis zur Gesamtfläche, was das Ausmaß der Fibrose angibt. Wie hier gezeigt, nahm das Herzvolumen nach der Operation zur Aortenkonstriktion im Bauchbereich zu. Dies zeigt sich auch in einem höheren Herzgewichts- zu Körpergewichtsverhältnis, das ein Indikator für eine kardiale Hypertrophie ist.Mithilfe der Picrosiriusrot-Färbung kann fibrotisches Myokard mit erhöhtem Kollageangehalt von normalen Bereichen unterschieden werden. Wie an diesen gefärbten Proben gezeigt, war die kardiale Fibrose nach einer Operation zur Abdominalaortenstenose im Vergleich zu Kontrollen erhöht. Sobald die chirurgische Technik beherrscht ist, kann der Eingriff bei korrekter Durchführung innerhalb von 30 Minuten durchgeführt werden.Nach Durchführung dieses Verfahrens können weitere Methoden wie die Echokardiographie angewendet werden, um zusätzliche Fragestellungen zur Herzfunktion zu untersuchen. Nach ihrer Einführung ebnete diese Technik den Forschern auf dem Gebiet der hypertensiven Herzerkrankung den Weg, um die Mechanismen der Kardiomyohypertrophie, des Remodeling und des Versagens zu erforschen. Nach Anschauen dieses Videos sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man eine abdominale Aortenkonstriktion durchführt, um Kardiomyohypertrophie und myokardiales Remodeling bei Ratten zu induzieren.

a-model-cardiac-remodeling-through-constriction-abdominal-aorta

Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Dieses Video demonstriert die Technik der Aortendebandierung, die zu einem umgekehrten Umbau führen kann, um das Fortschreiten zur Herzinsuffizienz in einem Mausmodell zu begrenzen. Nach der Debandierung löst eine signifikante Verringerung der ventrikulären Nachlast eine Rückbildung der ventrikulären Hypertrophie und Fibrose aus, was zu einer Wiederherstellung der Herzfunktion führt.

Chirurgische Aortendebandierung: Ein Verfahren zur Untersuchung des linksventrikulären umgekehrten Umbaus im Mausmodell der Aortenverengung

Wir beschreiben einen schrittweisen Verfahren zum Bilden von Drucklast und der linksventrikulären Hypertrophie in Wistar-Ratten durch Verengung der aufsteigenden Aorta unter Verwendung einer kleinen Metallclips. Dieses Modell wird weitgehend für das Studium Umbau Veränderungen während der Herzhypertrophie und zur Identifizierung und Bewertung von Strategien für die Regression von solchen Änderungen verwendet.

Aufsteigend Aortakonstriktion bei Ratten zur Erstellung von Drucküberlast Herzhypertrophie Modell

Polyurethan-Katheter Einfügung in die Aorta Lumen und Naht Ligatur der Aorta verursachen chronische Hypoxie durch Minderdurchblutung der adventitial Vasa Vasorum. Dieser Artikel beschreibt eine neuartige Tiermodell der abdominalen Aortenaneurysma (AAA) mit Eigenschaften ähnlich denen von AAA beim Menschen.

Erstellung eines Nagetier Modells der abdominalen Aortenaneurysma Vaskulogenese Adventitial Vasa Vasorum Perfusion

Hier beschreiben wir ein Schritt-für-Schritt-Protokoll der chirurgischen Aortendepaling im etablierten Mäusemodell der Aortenverengung. Dieses Verfahren ermöglicht es nicht nur, die Mechanismen zu untersuchen, die dem linksventrikulären Reverse Remodeling und der Regression von Hypertrophie zugrunde liegen, sondern auch neue therapeutische Optionen zu testen, die die Myokardregeneration beschleunigen könnten.

Untersuchung des linksventrikulären Reverse Remodeling durch Aortendefletieren bei Nagetieren

Wir beschreiben die Erstellung eines Rattenmodells von drucküberlastinduzierter moderater Umgestaltung und frühsystolischer Dysfunktion, bei der Signaltransduktionswege aktiviert werden, die an der Einleitung des Umbauprozesses beteiligt sind. Dieses Tiermodell wird bei der Identifizierung molekularer Ziele für die Anwendung von frühtherapeutischen Anti-Remodeling-Strategien für Herzinsuffizienz helfen.

Ein Rattenmodell von Drucküberlastung induziert moderate Remodeling und systolische Dysfunktion im Gegensatz zu overt systolische Herzinsuffizienz

Das vorliegende Protokoll beschreibt einen chirurgischen Eingriff zur Entfernung von aufsteigender Aortenbande in einem Rattenmodell der pulmonalen Hypertonie aufgrund einer Erkrankung des linken Herzens. Diese Technik untersucht endogene Mechanismen des umgekehrten Remodells im Lungenkreislauf und im rechten Herzen und informiert so über Strategien zur Umkehrung der pulmonalen Hypertonie und / oder der rechtsventrikulären Dysfunktion.

Ein Modell des umgekehrten vaskulären Remodells bei pulmonaler Hypertonie aufgrund von Linksherzerkrankungen durch Aortendebandation bei Ratten

Das vorliegende Protokoll beschreibt ein schrittweises Verfahren zur Etablierung eines Minipig-Modells der Herzinsuffizienz mit erhaltener Ejektionsfraktion unter Verwendung absteigender Aortenkonstriktion. Die Methoden zur Beurteilung der Herzmorphologie, Histologie und Funktion dieses Krankheitsmodells werden ebenfalls vorgestellt.

Ein chirurgisches Modell der Herzinsuffizienz mit erhaltener Ejektionsfraktion bei tibetischen Minischweinen

Das vorliegende Protokoll beschreibt eine neue Technik der Aortenbandbildung bei Mäusen, um eine Drucküberlastung der Herzhypertrophie zu induzieren. Zum Banderolieren wird ein Gummiring mit festem Innendurchmesser verwendet. Diese neue Technik verspricht weniger Varianz und reproduzierbarere Daten für zukünftige Experimente.

O-Ring-Aortenband versus traditionelle transversale Aortenverengung zur Modellierung von Drucküberlastung-induzierter Herzhypertrophie

Diese Studie demonstriert eine reproduzierbare heterotope abdominale Herztransplantationstechnik bei Ratten, die Anfänger erlernen und durchführen können. Darüber hinaus wird ein neuartiges Aorteninsuffizienzmodell bei Ratten generiert, indem eine heterotope abdominale Herztransplantation durchgeführt und die Aortenklappe des Spenders nach der Entnahme mit einem Führungsdraht geschädigt wird.

Modifizierte heterotope abdominale Herztransplantation und ein neuartiges Aorteninsuffizienzmodell bei Ratten

Dieses Protokoll beschreibt ein minimal-invasives chirurgisches Verfahren zur aufsteigenden Aortenbänder beim Schwein.

Ein minimal-invasives Modell der Aortenstenose beim Schwein

Die Rechtsherzinsuffizienz (RHF) ist gekennzeichnet durch eine rechtsseitige Herzdilatation und Hypertrophie, die zu ventrikulären und atrialen Fehlfunktionen führt. Herz-Lungen-Erkrankungen im Zusammenhang mit RHF gehen mit einem erhöhten Risiko für Herzrhythmusstörungen einher. In diesem Artikel wird ein standardisiertes Modell der durch Lungenarterienbanding induzierten RHF beschrieben, das mit einer verstärkten ventrikulären und atrialen Arrhythmogenese einhergeht.

Rattenmodell des rechtsseitigen kardialen Umbaus und der Arrhythmie unter Verwendung von Lungenarterienbändern

Lernen Sie ein minimal-invasives Verfahren zur Bauchaortenkonstriktion bei Ratten zur Induktion kardialer Hypertrophie und Remodeling. Diese Methode ermöglicht reproduzierbare Ergebnisse für die Erforschung kardiovaskulärer Mechanismen.

Ein Modell der kardialen Remodeling Durch Zusammenziehen der Bauchaorta bei Ratten

Weitere Videos entdecken