Name: Protokoll für die Mikroplastik Probenahme auf der Meeresoberfläche und Probenanalyse (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-12-16T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 16 s
Description: Erfahren Sie die standardisierte Methode zur Mikroplastik-Probenahme auf der Meeresoberfläche mit Manta-Netz und ATR FT-IR-Spektroskopie. Dieses Protokoll ermöglicht vergleichbare Daten zur Meeresmüll-Überwachung.

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Die Entwicklung dieses Protokoll wurde von IPA Adria grenzüberschreitende Kooperationsprogramm gegründet 2007-2013, innerhalb des DeFishGear Projekt (1 ° str / 00010).

1. Die Probenahme von Mikroplastik auf der Meeresoberfläche <ol><li> Stellen Sie das manta Netz von der Seite des Schiffes einen Spinnakerbaum oder »A-Frame« mit Linien und Karabinern verwenden. </li><li> Stellen Sie das manta Netz aus dem wake Zone (ca. 3 -. 4 m Abstand vom Boot aus), um zu verhindern, dass Wasser durch Turbulenzen in der Folge Zone betroffen zu sammeln. </li><li> Schreiben Sie die ersten GPS-Koordinaten nach unten und die Anfangszeit im Datenblatt. </li><li> Beginnen Sie in einer geraden Richtung mit einer Geschwindigkeit von ca. bewegen. 2 - 3 Knoten für 30 Minuten und die Zeitmessung beginnen. </li><li> Nach 30 Minuten das Boot stoppen und letzten GPS-Koordinaten aufschreiben, die Länge der Strecke (der richtige Weg ist, um die Länge von der GPS-Koordinaten zu berechnen) und die durchschnittliche Bootsgeschwindigkeit in das Datenblatt und heben Sie den manta Netz aus das Wasser. </li><li> Spülen Sie die manta Netz gründlich von außen des Netzes mit Meerwasser eine Tauchpumpe oder Wasser aus dem Boot wa mitter Reservoir. Spülen Sie in der Richtung von der manta Mund zum Steert, um alle Teilchen zu dem Netz in den Steert eingehalten zu konzentrieren. Hinweis: Niemals spülen Sie die Probe durch die Öffnung des Netzes, um eine Verunreinigung zu verhindern. </li><li> Sicher das Steert entfernen und die Probe im Kabeljau Sieb mit einer 300 &amp; mgr; m Maschenweite Sieb oder weniger am Ende durch. </li><li> Spülen Sie den Steert gründlich von außen und gießen Sie den Rest der Probe durch das Sieb. Wiederholen Sie diesen Schritt, bis es nicht mehr irgendwelche Partikel im Inneren des Steert sind. </li><li> Konzentrieren Sie das gesamte Material auf dem Sieb in einem Teil des Siebes. </li><li> Mit der Verwendung eines Trichters, spülen Sie das Sieb in ein Glas-Glas oder Plastikflasche mit 70% Ethanol. </li><li> Schließen Sie die Flasche, wischen Sie sie mit Papiertüchern und den Deckel beschriften und außerhalb des Gefäßes mit dem Sample-Namen und das Datum mit wasserdichten Marker (Sie können auch ein zweites Etikett geschrieben mit einem Bleistift auf Velum Papier in einem Glas setzen sollte den möglichen Verlust zu vermeiden vonder Probenname auf dem Glas auf dem gelöschten Etikett wegen). Übertragen markierte Plastikflasche in die Kühlbox. Hinweis für die allgemeine Probennahmebedingungen: Die Windgeschwindigkeit nicht mehr als 2 Beaufort sein sollte, da die Wellen zu hoch sind und das Netz ist nicht stabil auf der Meeresoberfläche. Es ist wichtig, einen stetigen linearen Verlauf mit einer konstanten Geschwindigkeit während der Schleppnetzen aufrechtzuerhalten. Die Hälfte der manta Netzöffnung sollte während der Probenahme untergetauchte werden. Dauer der Probenahme sollte ca. 30 Minuten (in den Fällen, in denen es eine große Menge an natürlichen Material, zB Planktonblüte, die Dauer der Probenahme kann kürzer sein). Vermeiden Sie die Verwendung von Kunststoff-Werkzeuge und Behälter. Vermeiden Sie synthetische Kleidung (zB Vlies), Seile und Kontakt von Mantas Netz mit Gefäß Kontamination der Probe zu verhindern. Seien Sie sehr vorsichtig, nicht die manta Netz oder den Bootsrumpf zu beschädigen, während die Bereitstellung und die Erfassung der Netz. </li></ol> 2. Trennung von Mikroplastik von der Meeresoberfläche Proben <ol><li> Wenn die Probe nicht enthältalle Elemente, die größer als 25 mm und wird mit Schritt 3 direkt sauber, auch weiterhin sein. </li><li> Gießen Probe durch das Sieb (≤300 um Maschenweite) und entfernen Sie alle natürlichen oder künstlichen Wurf Objekte mit einer Größe&gt; 5 mm (Makro und Mezzo Wurf) aus der Probe, unter Verwendung von visuellen Identifikation und Pinzette. Achten Sie darauf, jede entfernt Objekt sorgfältig mit destilliertem Wasser, um zu spülen jede Mikroplastik Wurf daran haften zu entfernen. Speichern Sie alle natürlichen und künstlichen Wurf Objekte in getrennten Behältern. Trocknen Sie alle natürlichen und künstlichen Wurf Objekte in einem Exsikkator (oder im Freien, sondern in einer geschlossenen Schale) und gewogen. Identifizieren Sie alle Streu Objekte&gt; 25 mm (Makro Wurf) nach dem Master - Liste der Kategorien von Litter Artikel 16. </li><li> Nachdem alle größeren Objekten zu entfernen, konzentrieren alle verbleibenden Stücke in einem Teil des Siebes mit Sprühflaschen oder Leitungswasser. Die Probe wird in einen Glasbehälter, eine Mindestmenge von 70% igem Ethanol mit Hilfe eines funn Verwendungel. Anmerkung: In diesem Schritt die Verwendung von 70% Ethanol ist entscheidend, um die Probe zu erhalten. Auch in dem Schritt der visuellen Inspektion der Probe, Ethanol hilft, die Organismen und bunte Kunststoffe daher leichter zu finden, zu verfärben. </li><li> Nehmen Sie eine kleine Menge der Probe (Substichprobe) und in eine Petrischale aus Glas gießen. Analysieren Sie die Probe mit der Verwendung eines Stereomikroskops (20 - 80x Zoom) und die Suche nach Mikroplastikpartikel. </li><li> Jeder Mikroplastikpartikel sollte in eine der in Tabelle 1 und in eine Petrischale oder andere Glasfläschchen mit einem Kategorienamen markiert setzen aufgeführten Kategorien eingeteilt werden. Die Petrischale muss jederzeit geschlossen werden. Hinweis: Bei der Trennung von Mikroplastik aus Ihrer Probe konservativ sein und wählen Sie eher mehr als weniger Partikel für die Analyse. Die eigentliche chemische Struktur von Partikeln wird später noch bestimmt werden. Achten Sie darauf, größere Objekte von allen Seiten zu analysieren, wie Mikroplastik geklebt werden kann und daher unter größere Gegenstände versteckt.Es kann auch hilfreich sein, bereits analysierten Objekte an einer Seite der Petrischale zu bewegen. </li><li> Legen Sie die Petrischale unter dem Mikroskop mit Messtechnik (okulare Lineal durch den Mikrometer Folie oder Bildanalyse-Software kalibriert) und messen Sie die Größe der einzelnen Partikel (messen die längste Diagonale), außer Fäden, und seine Farbe beachten. Jede Teilprobe sollte von einer anderen Person überprüft werden. Seien Sie vorsichtig, um die Glasbehälter mit der Probe zu spülen, damit alle Partikel an den Glaswänden haften in die Schale Petri gewaschen werden. </li><li> Wiegen Sie die mikroplastische Partikel jeder Kategorie separat durch die Verwendung von analytischen Maßstab. Mikroplastikpartikel müssen vor dem Wiegen getrocknet werden. Die geschlossene Petrischale in einem Exsikkator oder die Proben genommen werden kann gelassen werden, um eine geschlossene Schale trocknen, bis Teilchen trocken wurde (das Gewicht der verschlossenen Petrischale mit Partikeln ist konstant). </li><li> Identifizieren Mikro Wurf. Wenn eine Probe auf der Suche nach Mikroplastik Analyse, beachten Sie bitte, dasseinige Partikel leicht sichtbar (Farbe, Form, Größe) sein, während andere schwieriger zu finden sein können. Unten sind ein paar Features, die Mikroplastikpartikel in der Probe identifizieren: Zum Beispiel, keine Zellstruktur, uneben, scharf, krumme Kanten, gleichmäßige Dicke, markante Farben (blau, grün, gelb, etc.). </li></ol> 3. Chemische Identifizierung von Mikroplastik <ol><li> ATR-FTIR - Spektroskopie <ol><li> Vor der Analyse reinigen das Detektionssystem mit Alkohol und einem fusselfreien Tuch. </li><li> Nehmen Sie ein Hintergrundspektrum. Legen Sie die Probe auf dem Probenhalter und sammeln die Spektren. Identifizieren Sie die erhaltenen ATR- FTIR-Spektren eines automatisierten Vergleich des erhaltenen Spektrums mit Spektren in einer Datenbank. </li></ol></li><li> Micro ATR-FTIR - Spektroskopie <ol><li> Vor der Analyse reinigen das Detektionssystem mit Alkohol und einem fusselfreien Tuch. </li><li> Legen Sie die Probe auf einem Glasfilter. Hinweis: Weitere Filter können unsed aber ihre Polymer Natur kann sich mit der Charakterisierung stören. </li><li> Setzen Sie den Filter mit der Probe auf dem automatischen Scantisch und verwenden Sie den Joystick, um die Probe zu lokalisieren. </li><li> Nehmen Sie ein optisches Bild und markieren einen Bereich (zB 20 bis 20 &amp; mgr; m), wo die Probe charakterisiert werden. </li><li> Nehmen Sie ein Hintergrundspektrum. </li><li> Legen Sie die Probe auf dem Probenhalter und sammeln die Spektren in der vordefinierten Stelle. </li><li> Identifizieren Sie die erhaltenen Mikro ATR-FTIR Spektren einen automatisierten Vergleich des erhaltenen Spektrums mit Spektren in einer Datenbank. </li></ol></li></ol>

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</ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Mikroplastik Probenahme an der Meeresoberfläche von Mantas net ist eine weit verbreitete Methode für die Probenahme von Mikroplastik auf der Meeresoberfläche, aber es hat bisher keine einheitliche Methodik gewesen. Ein großes Volumen an Wasser kann durch den manta Netz gefiltert werden, so dass die Möglichkeit, eine entsprechende Anzahl von Mikroplastik des Einfangens ist hoch, und die Ergebnisse werden wahrgenommen als zuverlässig. Die Vergleichbarkeit der Ergebnisse zwischen den verschiedenen Proben wird durch Normalisierung gewährleistet. In unserem Fall wurden die Konzentrationen auf das abgetastete Bereich im Zusammenhang mit Schleppabstand durch die horizontale Breite der Netzöffnung multipliziert wird. Eine weitere Möglichkeit ist es, einen Durchflussmesser zu verwenden, an der Netzöffnung befestigt. Die Verwendung eines Strömungsmessers ist möglich, da die manta Netz mit seinen seitlichen Flügel auf der Meeresoberfläche sehr stabil ist und daher auf den Wellen-Hopping ist minimal. Ein Durchflussmesser erfasst das Volumen des gefilterten Wassers und ermöglicht somit die Normalisierung der Ergebnisse pro Volumen von abgetasteten Wasser 16. <p class="jove_content"&gt; Die am häufigsten verwendeten manta Netze haben etwa 300 &amp; mgr; m Maschenweite und 3-4,5 m lang. Diese Abmessungen wurden optimiert Verstopfen des Netzes zu vermeiden und um das Abtasten eines Wassermenge so groß wie möglich zu ermöglichen. Trawling Geschwindigkeit wird empfohlen, zwischen 2 bis - 3 Knoten, aber es ist abhängig von Wellenhöhe, Windgeschwindigkeit und Meeresströmungen. Es ist sehr wichtig, dass die manta Netz unter Aufsicht ist die ganze Zeit während der Probenahme und wenn es Hopping beginnt, muss die Geschwindigkeit Schleppen reduziert werden. Die Schleppzeit wird empfohlen etwa 30 min zu sein, sondern hängt von seston Konzentrationen. Es kann vorkommen, dass seston manchmal die manta Netz verstopft. In diesem Fall hat der Schlepp sofort gestoppt werden, da sonst die Mikroplastikpartikel verloren gehen kann und das Netz beschädigt werden kann. Manta net ist, die am häufigsten von der Seite des Schiffes befestigt. Dies ist auch der am besten geeignete Option, während der manta Netz sicher aus der Wake Zone ist. In einigen Umfragen wurde manta Netz aus dem Heck des Schiffes befestigt17, 18, aber in diesem Fall , dass Sie sicher sein , haben , dass das Netz aus dem Wach - Zone ist. Der Abstand, auf dem das Schleppnetz wird für die Abtastung eingestellt, sollte individuell festgelegt werden, da die Zone der Turbulenz durch den Behälter verursacht variiert von der Größe des Behälters und von der Geschwindigkeit des Bootes 19, 20. Die Trennung von Mikroplastikpartikel von der Meeresoberfläche Proben wird meist nur durch eine visuelle Identifizierung 21 getan. Partikel größer als 1 mm durch das bloße Auge leicht identifiziert werden, während Teilchen kleiner als 1 mm die Verwendung eines Stereomikroskops erforderlich. die Möglichkeit der Verwechslung der nicht-Kunststoff-Teilchen mit solche aus Kunststoff zu reduzieren, wird die Polarisationslicht auf Stereomikroskopen mit empfohlen. Die Möglichkeit einer falschen Identifizierung von Kunststoffpartikeln wird mit kleineren Partikeln höher. Somit Partikel&gt; 0,5 mm nur visuell 21, durch die Verwendung von Stereomikroskop identifiziert werden. Für Partikel, die kleiner als 0,5 mmeine zusätzliche, genauere Methode ist zB Mikro ATR-FTIR - Spektroskopie 21 erforderlich. Während des Prozesses der Mikroplastik Trennung von der Probe die Möglichkeit einer Probenverunreinigung mit den airborne Filamente ist sehr hoch. Aus diesem Grund kontrollieren Petrischalen auf dem Arbeitstisch offen gelassen werden für die Identifizierung von potentiellen Kontaminanten Schwebeteilchen dringend empfohlen. Nämlich hängt die Qualität der Daten stark von: 1) die Genauigkeit der Person mit der Probe arbeiten, 2) die Qualität und die Vergrößerung des Stereomikroskops und 3) die Menge an organischer Substanz in der Probe 16. Nach visuelle Identifizierung wird dringend empfohlen , die sortierten Partikel mit einer der verfügbaren Techniken zur chemischen Identifizierung des Materials 8 zu analysieren. Es gibt mehrere Verfahren für die Polymer Identifizierung, unter denen die FTIR-Spektroskopie und Raman-Spektroskopie die meisten frequen sindtly 22 verwendet. FTIR und Raman-Spektroskopie sind ergänzende Techniken und ihre Genauigkeit ist ähnlich. In unserem Protokoll, das FTIR und Mikro FTIR-Spektroskopie mit &quot;abgeschwächte Totalreflexion&quot; (ATR) vorgestellt. Sie sind einfach zu bedienen und sie ermöglichen eine schnelle und präzise Ergebnisse. Kunststoffpolymere besitzen hochspezifischen Infrarot (IR) Spektren mit unterschiedlichen Bandmuster, wodurch die IR - Spektroskopie eine optimale Technik zur Identifizierung von Mikroplastik 21. Die Energie des IR - Strahlung regt eine spezifische molekulare Schwingung , wenn sie mit einer Probe in Wechselwirkung, die die Messung von charakteristischen IR - Spektren 22 ermöglicht. FTIR - Spektroskopie können auch zusätzliche Informationen über Partikel liefern, wie der Intensität der Oxidation 23 und Abbaugrad 24. Während ATR-FTIR zur chemischen Identifizierung von größeren Teilchen (&gt; 0,5 mm), Mikro ATR-FTIR-Spektroskopie geeignet ist, kann &amp; # Informationen über die chemische Struktur von Partikeln bereitzustellen60; 0,5 mm, da es die Funktion eines Mikroskops und einem Infrarot-Spektrometer kombiniert. Vor der Verwendung von FTIR und Mikro FTIR - Spektroskopie, haben Mikroplastikpartikel zuvor getrocknet zu werden, da Wasser stark IR - Strahlung 22 und gereinigt, im Falle absorbiert werden sie mit Biofilmen bedeckt und / oder anderen organischen und anorganischen Haft-, welche die IR - Spektren beeinflussen können. Die meisten nicht-invasive Weise Proben zu reinigen ist durch Rühren und Spülen mit Frischwasser 25. Ist dies nicht genug ist, dann ist die Verwendung von 30% igem Wasserstoffperoxid zu empfehlen. Alle anderen Methoden können negative Auswirkungen auf die Mikroplastikpartikel (zB Ultraschallreinigung kann weiter Partikel brechen, stark sauren oder alkalischen Lösungen können mehrere Kunststoff-Polymere beschädigen, etc.) und damit deren Verwendung wird nicht empfohlen. Versprechender ist die Verwendung eines sequenziellen enzymatischen Verdau als Kunststoff freundlichen Reinigungsschritt. Die Reinigung verschiedener technischer Enzyme (zB Lipase, einmylase, Proteinase, Chitinase, Cellulase, Proteinase-K) wurde zur Reduktion einer biologischen Matrix von Plankton erfolgreich angewendet und erwies sich somit als eine wertvolle Technik zu sein Matrix - Artefakte während der FTIR - Spektroskopie - Messungen 22 zu minimieren. Die Trennung von Mikroplastik durch visuelle Identifizierung und chemische Identifizierung von ausgewählten Teilchen sind beide extrem zeitaufwändige Prozesse. Diese Arbeit muss durch eine genaue und geduldige Person durchgeführt werden, die Erfahrung mit Stereomikroskopen hat, nicht nur die Kunststoffpartikel zu erkennen, sondern auch biologische Materie zu erkennen. Selbst ein erfahrener Mensch kann nicht alle möglichen Mikroplastikpartikel eindeutig aus Chitin oder Diatomeen - Fragmente 22 unterscheiden. Daher reicht die Fehlerrate der visuellen Sortierung von 20% 26-70% 21 und nimmt mit abnehmender Korngröße.

Die Verschmutzung durch Mikroplastik im Meer stellt ein wachsendes Problem für die heutige Gesellschaft dar, aufgrund der ständigen Zunahme der Plastikproduktion und ihrer anschließenden Entsorgung und Akkumulation in der Meeresumwelt1. Selbst wenn kein Makromüll mehr in die Meere gelangen würde, würde die Verschmutzung durch Mikroplastik aufgrund der Fragmentierung des bereits vorhandenen Plastikmülls im Meer weiter zunehmen2. Die meisten Studien zur Verschmutzung durch Mikroplastik wurden in Meeres- und Süßwasserökosystemen durchgeführt und befassten sich hauptsächlich mit der Verschmutzung der Meeresoberfläche3.
Der Begriff Mikroplastik bezieht sich auf Kunststoffpartikel, die kleiner als 5 mm in der Größe4 sind. Dieser Begriff beschreibt ein heterogenes Gemisch von Partikeln, das sich in Größe (von wenigen Mikrometern bis zu mehreren Millimetern), Farbe und Form (von sehr unterschiedlichen Formen von Fragmenten bis hin zu langen Fasern) unterscheiden kann. Mikroplastikpartikel können primären oder sekundären Ursprungs sein5. Mikroplastik primären Ursprungs wird in Form von kleinen Partikeln hergestellt, die in der Kosmetikindustrie (Pillingcreme usw.) oder in der chemischen Industrie als Vorprodukt für andere Kunststoffprodukte (z. B. Kunststoffgranulate, die in der Kunststoffindustrie verwendet werden) verwendet werden. Mikroplastik sekundären Ursprungs entsteht durch den Abbau größerer Kunststoffteile in der Umwelt durch physikalische und chemische Prozesse, induziert durch Licht, Wärme, Sauerstoff, Wasser und Organismen6. Im Jahr 2015 wurden vier Arten von Mikroplastikquellen definiert: größere Plastikabfälle, Reinigungsmittel, Medikamente und Textilien6. Es wird davon ausgegangen, dass die Hauptquelle (80 %) für größere Kunststoffabfälle an Landliegt 7. Mikroplastik aus Kosmetikprodukten, Medikamenten und Textilien gelangt über Abwasser und Regenwasser in die Wasserökosysteme6. Mikroplastikpartikel, die am häufigsten in Wasserökosystemen vorkommen, sind Fragmente von größerem Plastikmüll und Textilfasern8. 
Mikroplastik hat mehrere negative Auswirkungen auf die Umwelt. Ihre geringe Größe ermöglicht es ihnen, durch Aufnahme durch Meeresorganismen in das Nahrungsnetz einzudringen9, 10. Aufgenommene Partikel können körperliche Schäden verursachen oder das Verdauungssystem von Tieren blockieren11. Partikel können auch Träger von persistenten organischen Schadstoffen (POP) sein. Ihre hydrophobe Oberfläche und ihr günstiges Verhältnis von großer Oberfläche zu kleinem Volumen ermöglichen es POPs, an das Mikroplastik zu adsorbieren12. In der Umwelt oder im Verdauungssystem von Tieren, die sie aufnehmen, können POPs und andere Kunststoffzusätze aus Mikroplastikpartikeln ausgelaugt werden13. 
Frühere Studien berichteten über das allgegenwärtige Vorhandensein von Mikroplastik in der Meeresumwelt3, von der Wassersäule bis zu den Bodensedimenten. Die Bedrohung durch die Verschmutzung durch Mikroplastik wurde bereits in der Meeresstrategie-Rahmenrichtlinie in der EU festgestellt und daher eine obligatorische Überwachung von Mikroplastik empfohlen14. Dementsprechend hat die Technische Untergruppe der EU für Abfälle im Meer (TSG-ML) Empfehlungen für das Monitoring von Mikroplastik in den europäischen Meeren erarbeitet15. Daher sind die Videoleitfäden für die Probenahme von Mikroplastik von hoher Bedeutung, da sie ein vergleichendes Monitoring und einen kohärenten Managementprozess auf der ganzen Welt unterstützen.
Dieses Protokoll wurde im Rahmen des DeFishGear-Projekts für die erste Überwachung der Mikroplastikverschmutzung in der Adria entwickelt. Dabei wurden Empfehlungen aus dem Dokument "Guidance on Monitoring of Marine Litter in European Seas" der TSG-ML15 berücksichtigt. Dieses Protokoll beschreibt die Methodik für die Probenahme von Mikroplastik auf der Meeresoberfläche, die Trennung von Mikroplastik aus den Proben und die chemische Analyse von Mikroplastikpartikeln, um zu bestätigen, dass die Partikel aus Kunststoff stammen, und um die Art des Kunststoffs zu identifizieren. Die Probenahme erfolgte mit Hilfe eines Mantanetzes, das für die Probenahme in ruhigen Gewässern am besten geeignet ist16. Die Trennung von Mikroplastik aus den Proben erfolgte durch visuelle Identifizierung mit einem Stereomikroskop. Isolierte Partikel wurden später mittels Fourier-Transformations-Infrarotspektroskopie (FTIR) und Mikro-FTIR-Spektroskopie chemisch identifiziert.

<table><tbody><tr><td>In diesem Protokoll wurden keine spezifischen Geräte oder Reagenzien verwendet.</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

protokoll für die mikroplastik probenahme auf der meeresoberfläche und probenanalyse

Protocol for Microplastics Sampling on the Sea Surface and Sample Analysis

Die Verschmutzung durch Mikroplastik in der Meeresumwelt ist ein wissenschaftliches Thema, das in den letzten zehn Jahren zunehmend Aufmerksamkeit erhalten hat. Der Großteil der wissenschaftlichen Veröffentlichungen befasst sich mit der Mikroplastikverschmutzung der Meeresoberfläche. Das folgende Protokoll beschreibt die Methodik für die Probenahme, Probenvorbereitung, Trennung und chemische Identifizierung von Mikroplastikpartikeln. Für die Beprobung diente ein Mantanetz, das an einem an der Seite des Schiffes befestigten »A-Rahmen« befestigt war. Mikroplastikpartikel, die sich im Steert des Netzes verfangen hatten, wurden durch visuelle Identifizierung und den Einsatz von Stereomikroskopen von den Proben getrennt. Die Partikel wurden mit einem Bildanalyseprogramm auf ihre Größe und mittels ATR-FTIR und Mikro-FTIR-Spektroskopie auf ihre chemische Struktur analysiert. Das beschriebene Protokoll steht im Einklang mit den Empfehlungen für die Überwachung von Mikroplastik, die von der Technischen Untergruppe "Abfälle im Meer" der Meeresstrategie-Rahmenrichtlinie (MSRL) veröffentlicht wurden. Dieses schriftliche Protokoll mit Videoguide wird die Arbeit von Forscherinnen und Forschern unterstützen, die sich weltweit mit dem Mikroplastik-Monitoring beschäftigen.

Das erste Ergebnis des beschriebenen Protokolls sind Mikroplastikpartikel in sechs Kategorien eingeteilt nach ihren visuellen Merkmalen (Tabelle 1). Die erste Kategorie, und in der Regel die am reichlichsten ein, sind Fragmente (Abbildung 1). Sie sind steif, dick, mit scharfen schiefen Kanten und eine unregelmäßige Form. Sie können in einer Vielzahl von verschiedenen Farben sein. Die zweite Kategorie sind Filme (Abbildung 2). Sie erscheinen auch in unregelmäßiger Form, aber im Vergleich mit Fragmenten, sie sind dünn und flexibel und in der Regel transparent. Die dritte Kategorie sind Pellets (Abbildung 3), in der Regel aus der Kunststoffindustrie stammen. Sie sind unregelmäßig, runde Formen und normalerweise größer in der Größe etwa 5 mm im Durchmesser. Sie sind in der Regel auf der einen Seite flach und kann in verschiedenen Farben sein. Die vierte Kategorie sind Granulate (Abbildung 4). Im Vergleich zu Pellets, sie haben einen regelmäßigen runden Form und in der Regel eine kleinere Größe, etwa 1 mm im Durchmesser. Sie erscheinen in den natürlichen Farben(Weiß, beige, braun). Die fünfte Kategorie sind Filamente (Abbildung 5). Sie sind, neben Fragmente, die am häufigsten vorkommende Art von Mikroplastikpartikel. Sie können kurz oder lang sein, mit unterschiedlichen Stärken und Farben. Die letzte Kategorie sind Schäume (Abbildung 6). Sie am häufigsten kommen aus großen Partikeln aus Styropor. Sie sind eine weiche, unregelmäßige Form und weiß bis gelb in der Farbe. Das Hauptergebnis der Mikroplastik Probenahme und Probenanalyse ist die Anzahl der Mikroplastikpartikel pro Probe. Diese Daten können weiter normalisiert werden pro km 2. Die Formel für die Normalisierung verwendet wird: Mikroplastikpartikel pro Probe / Probefläche, (; 7 Tabellen 2, 3), wo Probefläche wird durch Multiplikation Abtastweg durch die Breite der Öffnung des manta Netz berechnet. Darüber hinaus können Partikel mit im analysiert werden,Altersanalyse-Software. Die Ergebnisse sind: maximale Länge und Fläche jedes Teilchens (Tabelle 4). 8a zeigen Teilchen vor der Bildanalyse und 8b ist nach der Bildanalyse, wobei jedes Teilchen gemessen und gezählt. Schließlich wird eine chemische Analyse der gesamten oder höchstmögliche Anzahl von Teilchen pro Probe empfohlen. Verwendung von Fourier-Transformation-Infrarot-Spektroskopie ein Spektrum des ausgewählten Partikels erfaßt wird, wie auf der Abbildung 9. dann mit den Spektren von der Software-Bibliothek (10) verglichen wird Dieses Spektrum gezeigt. Das endgültige Ergebnis wird zeigen, ob ein bestimmtes Teilchen Kunststoff ist oder nicht, und geben Sie die Art von Kunststoff aus der chemischen Struktur. <table fo:keep-together.within-page="1"><tbody><tr><td> 1 </td><td> Fragmente </td></tr><tr><td> 2 </td><td> Filme </td></tr><tr><td> 3 </td><td> Pellets </td></tr><tr><td> 4 </td><td> Granulat </td></tr><tr><td> 5 </td><td> Filaments </td></tr><tr><td> 6 </td><td> Schaum<html> s </td></tr></tbody></table> Tabelle 1: Kategorien der Mikroplastikpartikel. <img alt="Abbildung 1" src="/files/ftp_upload/55161/55161fig1.jpg" /> Abbildung 1: Beispiel von Partikeln aus der Kategorie: Fragmente. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55161/55161fig1large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier</a> , um <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55161/55161fig1large.jpg" target="_blank">eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> <img alt="Figur 2" src="/files/ftp_upload/55161/55161fig2.jpg" /> Abbildung 2: Beispiel von Partikeln aus der Kategorie: Filme. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55161/55161fig2large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier</a> , um <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55161/55161fig2large.jpg" target="_blank">eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> /55161fig3.jpg &quot;/&gt; Abbildung 3: Beispiel von Partikeln aus der Kategorie: Pellets. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55161/55161fig3large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier</a> , um <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55161/55161fig3large.jpg" target="_blank">eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> <img alt="Abbildung 4" src="/files/ftp_upload/55161/55161fig4.jpg" /> Abbildung 4: Beispiel von Partikeln aus der Kategorie: Granulat. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55161/55161fig4large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier</a> , um <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55161/55161fig4large.jpg" target="_blank">eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> <img alt="Abbildung 5" src="/files/ftp_upload/55161/55161fig5.jpg" /> Abbildung 5: Beispiel von Partikeln aus der Kategorie: Filaments. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55161/55161fig5large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier</a> , um <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55161/55161fig5large.jpg" target="_blank">eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> Abbildung 6: Beispiel von Partikeln aus der Kategorie: Foams. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55161/55161fig6large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier</a> , um <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55161/55161fig6large.jpg" target="_blank">eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> <table fo:keep-together.within-page="1"><tbody><tr><td> Sampling Entfernung [km] </td><td> 2 </td></tr><tr><td> Manta Breite [km] </td><td> 0,0006 </td></tr><tr><td> Sampling - Bereich [km 2] </td><td> 0,0012 </td></tr></tbody></table> Tabelle 2: Beispiel für Daten aus Umfrage, für die Berechnung der Mikroplastikpartikel pro km 2. <table fo:keep-together.within-page="1"><tbody><tr><td></td><td> Nein </td><td> Nein / km 2 </td></tr><tr><td>Fragmente </td><td> 301 </td><td> 250833 </td></tr><tr><td> Filme </td><td> 45 </td><td> 37500 </td></tr><tr><td> Pellets </td><td> 15 </td><td> 12500 </td></tr><tr><td> Granulat </td><td> 8 </td><td> 6667 </td></tr><tr><td> Schäume </td><td> 33 </td><td> 27500 </td></tr><tr><td> Filamente </td><td> 223 </td><td> 185833 </td></tr></tbody></table> Tabelle 3: Beispiel der Ergebnisse aus der Umfrage, wo die klassifizierten Daten in 6 Gruppen gezählt werden und normalisiert pro km 2 (Nein - Anzahl der Teilchen). <img alt="7" src="/files/ftp_upload/55161/55161fig7.jpg" /> Abbildung 7: Beispiel für repräsentative Ergebnisse nach visuellen Kategorisierung von pArtikel (Nein - Anzahl der Teilchen). <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55161/55161fig7large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier</a> , um <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55161/55161fig7large.jpg" target="_blank">eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> <table fo:keep-together.within-page="1"><tbody><tr><td> Index Region </td><td> Fläche [mm²] </td><td> Maximale Länge [mm] </td></tr><tr><td> 1 </td><td> 8,010 </td><td> 5,506 </td></tr><tr><td> 2 </td><td> 10,517 </td><td> 5,628 </td></tr><tr><td> 3 </td><td> 12,185 </td><td> 5,429 </td></tr><tr><td> 4 </td><td> 3,367 </td><td> 3,367 </td></tr><tr><td> 5 </td><td> 2,475 </td><td> 2,155 </td></tr><tr><td> 6 </td><td> 1,809 </td><td> 2,943 </td></tr><tr><td> 7 </td><td> 6,604 </td><td> 5,238 </td></tr><tr><td> 8 </td><td> 5,779 </td><td> 4,037 </td></tr><tr><td> 9 </td><td> 4,472 </td><td> 3,791 </td></tr><html><tr><td> 10 </td><td> 16,907 </td><td> 5,355 </td></tr><tr><td> 11 </td><td> 7,246 </td><td> 3,733 </td></tr><tr><td> 12 </td><td> 7,867 </td><td> 4,622 </td></tr><tr><td> 13 </td><td> 6,411 </td><td> 5,056 </td></tr><tr><td> 14 </td><td> 3,281 </td><td> 3,070 </td></tr><tr><td> 15 </td><td> 12,937 </td><td> 5,554 </td></tr><tr><td> 16 </td><td> 6,709 </td><td> 3,716 </td></tr></tbody></table> Tabelle 4: Beispiel für Bildanalyseergebnisse in dem Bereich [mm 2] und die maximale Länge [mm] jedes Teilchens gemessen werden. <img alt="Abbildung 8" src="/files/ftp_upload/55161/55161fig8.jpg" /> Abbildung 8: Beispiel für das Bild erworben a) vor und b) nach der Bildanalyse von Teilchen mit Bildanalysesoftware.ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55161/55161fig8large.jpg &quot;target =&quot; _ blank &quot;&gt; Bitte hier klicken, um eine größere Version dieser Figur zu sehen. <img alt="9" src="/files/ftp_upload/55161/55161fig9.jpg" /> Abbildung 9: Beispiel eines Spektren auf einem ausgewählten Partikels gemessen mit markierten Peaks und deren Wellenlängen [cm -1]. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55161/55161fig9large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier</a> , um <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55161/55161fig9large.jpg" target="_blank">eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> <img alt="10" src="/files/ftp_upload/55161/55161fig10.jpg" /> Abbildung 10: Beispiel für den Vergleich der aufgenommenen Spektren von ausgewählten Teilchen auf beste Übereinstimmung aus der ATR-FTIR Spektrenbibliothek. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55161/55161fig10large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier</a> , um <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55161/55161fig10large.jpg" target="_blank">eine größere Version dieses f anzuzeigen</a>ild.

Das Protokoll unten beschreibt die Methodik für: Mikroplastik Probenahme auf der Meeresoberfläche, die Trennung von mikro und chemische Identifizierung von Partikeln. Dieses Protokoll ist in Einklang mit den Empfehlungen für Mikroplastik Überwachung durch die MSFD Technical Subgroup am Marine Litter veröffentlicht.

Protokoll für die Mikroplastik Probenahme auf der Meeresoberfläche und Probenanalyse

Microplastic pollution in the marine environment is a scientific topic that has received increasing attention over the last decade. The majority of ...

Dieses Protokoll beschreibt die Probenahme und Analyse von Mikroplastik an der Meeresoberfläche. Probenahme an der Meeresoberfläche. Setzen Sie das Manta-Netz von der Seite des Schiffes aus mit Hilfe einer Spinnakerstange oder eines A-Rahmens unter Verwendung von Tauen und Karabinerhaken ein.Setzen Sie das Manta-Netz außerhalb der Sogzone ein, um Wasser zu sammeln, das nicht von Turbulenzen innerhalb der Sogzone beeinflusst wurde. Notieren Sie die anfänglichen GPS-Koordinaten und die Startzeit auf dem bereitgestellten Datenerfassungsblatt. Bewegen Sie sich für dreißig Minuten in eine gerade Richtung mit einer Geschwindigkeit von etwa 2–3 Knoten und beginnen Sie gleichzeitig mit der Zeitmessung.Nach dreißig Minuten stoppen Sie das Boot und notieren die endgültigen GPS-Koordinaten, die Länge der Strecke und die durchschnittliche Bootsgeschwindigkeit in das bereitgestellte Datenerfassungsblatt. Ziehen Sie das Manta-Netz aus dem Wasser. Spülen Sie das Manta-Netz gründlich von außen mit Meerwasser ab, indem Sie eine Tauchpumpe oder Wasser aus dem Wassertank des Bootes verwenden.Spülen Sie in Richtung vom Munder des Mantas zum Cod-End, um alle am Netz haftenden Partikel im Cod-End zu sammeln. Hinweis: Spülen Sie die Probe niemals durch die Öffnung des Netzes, um eine Kontamination zu vermeiden. Entfernen Sie das Cod-End sicher und sieben Sie die Probe im Cod-End durch ein Sieb mit einer Maschenweite von 300 Mikrometern oder kleiner. Spülen Sie das Ende des Fangbeutels gründlich von außen ab und gießen Sie den Rest der Probe durch das Sieb. Wiederholen Sie diesen Schritt, bis sich keine Partikel mehr im Ende des Fangbeutels befinden. Konzentrieren Sie das gesamte Material auf dem Sieb an einer Stelle des Siebs.Unter Verwendung eines Trichters wird das Sieb mit 70 % Ethanol in ein Glasgefäß oder eine Plastikflasche gespült. Verschließen Sie die Flasche, wischen Sie sie mit Papiertüchern ab und beschriften Sie den Deckel sowie die Außenseite des Gefäßes mit dem Probennamen und dem Datum. Trennung von Mikroplastik aus Proben der Meeresoberfläche.Wenn die Probe keine Partikel enthält, die größer als 25 mm sind, und sauber erscheint, fahren Sie direkt mit Schritt 3 fort. Andernfalls gießen Sie die Probe durch das Sieb und entfernen Sie mithilfe visueller Identifizierung und einer Pinzette alle natürlichen oder künstlichen Litterpartikel, die größer als 5 mm sind. Achten Sie darauf, jeden entfernten Gegenstand vorsichtig mit destilliertem Wasser abzuspülen, um anhaftenden Mikroplastik-Litter zu entfernen.Bewahren Sie alle natürlichen und künstlichen Abfallgegenstände in separaten Behältern auf. Trocknen Sie alle natürlichen und künstlichen Abfallgegenstände in einem Exsikkator oder an der Luft, jedoch in einer geschlossenen Schale, und wiegen Sie sie. Identifizieren Sie alle Abfallgegenstände größer als 25 mm gemäß der Masterliste der Kategorien von Abfallgegenständen.Nachdem alle größeren Objekte entfernt wurden, konzentrieren Sie alle verbleibenden Teile mit Hilfe von Sprühflaschen oder Leitungswasser an einer Stelle des Siebs. Gießen Sie die Probe mithilfe eines Trichters unter Verwendung einer geringstmöglichen Menge 70 %igem Ethanol in ein Glasgefäß. Nehmen Sie eine kleine Menge der Probe und gießen Sie sie in eine Glas-Petrischale.Analysieren Sie die Probe mithilfe eines Stereomikroskops und suchen Sie nach Mikroplastikpartikeln. Sobald ein Mikroplastikpartikel gefunden wird, klassifizieren Sie ihn gemäß einer der Kategorien aus Tabelle 1 und legen Sie ihn in eine Petrischale oder ein anderes Glasgefäß, das mit dem Kategorienamen gekennzeichnet ist. Die Petrischale muss stets geschlossen sein.Stellen Sie die Petrischale unter ein Mikroskop mit Messvorrichtung und messen Sie die Größe jedes Partikels. Messen Sie die längste Diagonale, mit Ausnahme von Filamenten, und notieren Sie deren Farbe. Wiegen Sie die Mikroplastikpartikel jeder Kategorie getrennt voneinander. Mikroplastikpartikel müssen zuvor getrocknet werden. Wie identifiziert man Mikroplastik? Keine Zellstruktur.Ungleichmäßige Dicke. Unterscheidbare Farben. Seien Sie vorsichtig und entfernen Sie beim Trennen von Mikroplastik aus Ihrer Probe mehr statt weniger. Die tatsächliche chemische Struktur der Partikel kann später dennoch bestimmt werden.Chemische Charakterisierung. Die attenuierte Reflexions-Fourier-Transform-Infrarotspektroskopie, oder ATR FT-IR, ist eine häufig verwendete Methode zur Charakterisierung von Kunststoffen. Die Materialzusammensetzung und in einigen Fällen auch der Grad der Degradation können bestimmt werden.Vor der Analyse muss das Detektionssystem mit Alkohol und einem fusselfreien Tuch gereinigt werden, und eine spezielle Platte für kleine Partikel wird auf dem Probenhalter angebracht. Anschließend wird ein Hintergrundspektrum aufgezeichnet. Die Probe wird dann auf den Probenhalter gelegt und festgezogen.Wenn die Aufnahme des Probenspektrums gestartet wird, sendet der Detektor einen Strahl von Infrarotlicht durch den ATR-Kristall, sodass er an der Probe, die mit der Probe in Kontakt steht, reflektiert wird. Diese Reflexion dringt leicht in die Probe ein, wodurch die Aufzeichnung eines Spektrums ermöglicht wird. Der Strahl wird anschließend vom Detektor erfasst, während er den Kristall verlässt, und schließlich wird ein Spektrum erhalten.Spektren sind charakteristisch für jedes Material, daher erfolgt die Identifizierung durch automatischen Vergleich des erhaltenen Spektrums mit Spektren in einer Datenbank. ATR FT-IR-Mikroskop. Ein FT-IR-Mikroskop kombiniert die Funktion eines Mikroskops mit der eines Infrarot-Spektrometers.Dadurch wird es ermöglicht, ein Spektrum in einem sehr kleinen Bereich aufzunehmen, das für die Analyse von Mikroplastik mit einer Größe von weniger als 1 mm geeignet ist. Das Mikroskop wird meist im ATR-Modus verwendet, obwohl auch Transmission- und Reflexionsmodi möglich sind. Die Analyse beginnt damit, dass die Probe auf einen Glasfilter platziert wird.Es können andere Filter verwendet werden, aber ihre polymeren Eigenschaften können die Charakterisierung stören. Der Filter mit der Probe wird auf den automatischen Scannertisch platziert, und der Joystick wird verwendet, um die Probe zu positionieren und ein optisches Bild aufzunehmen. Auf diesem Bild markieren wir einen 20x20 Mikrometer großen Bereich, in dem die Probe charakterisiert wird.Es wird zunächst eine Hintergrundmessung durchgeführt, gefolgt von der Aufnahme des Spektrums an der definierten Position. Ein ATR-FT-IR-Spektrum wird erhalten und mit den Spektren in der Datenbank verglichen, um die Zusammensetzung der Probe zu identifizieren. Ergebnisse. Das beschriebene Protokoll liefert grundlegende Ergebnisse, bei denen Mikroplastikpartikel entsprechend ihrer visuellen Merkmale in sechs Kategorien eingeteilt werden.Die erste Kategorie, und normalerweise die am häufigsten vorkommende, sind Bruchstücke. Diese sind starr, dick, besitzen scharfe, gezackte Kanten und unregelmäßige Formen. Sie treten in einer Vielzahl unterschiedlicher Farben auf.Die zweite Kategorie sind Folien. Diese treten ebenfalls in unregelmäßigen Formen auf, sind jedoch im Vergleich zu Fragmenten dünn, biegsam und in der Regel durchsichtig. Die dritte Kategorie sind Pellets, die gewöhnlich aus der Kunststoffindustrie stammen.Ihre Formen sind unregelmäßig und rund und normalerweise größer, etwa 5 mm im Durchmesser. Sie sind meist auf einer Seite flach und können in verschiedenen Farben auftreten. Die vierte Kategorie sind Granulate.Im Vergleich zu Pellets erscheinen sie in einer regelmäßigen, runden Form und normalerweise in kleineren Größen von etwa 1 mm Durchmesser. Sie weisen natürliche Farben auf. Die fünfte Kategorie sind Filamente.Sie sind nach Fragmenten die häufigste Art von Mikroplastikpartikeln. Sie können kurz bis lang sein und weisen unterschiedliche Dicken und Farben auf. Die letzte Kategorie sind Schäume.Sie stammen oft von großen Styropor-Partikeln. Sie sind weich, unregelmäßig geformt und weiß bis gelblich gefärbt. Das wichtigste erhaltene Ergebnis ist die Anzahl der Mikroplastikpartikel pro Probe.Diese Daten können zusätzlich pro Quadratkilometer normalisiert werden. Die Formel, die für die Normalisierung verwendet wird, lautet: Mikroplastikpartikel pro Probe geteilt durch die Probenahmefläche, wobei die Fläche durch die Multiplikation der Probenahmedistanz mit der Manta-Breite berechnet wird. Hier sehen Sie ein Beispiel für normalisierte Daten, dargestellt in Tabelle 3 und Abbildung 1.Außerdem können Partikel mit einer Bildanalyse-Software ausgewertet werden. Die Ergebnisse umfassen die maximale Länge und die Fläche jedes Partikels. Abschließend wird die chemische Analyse der Gesamtanzahl beziehungsweise der maximal möglichen Anzahl von Partikeln pro Probe empfohlen.Mithilfe der Fourier-Transform-Infrarotspektroskopie wird ein Spektrum von ausgewählten Partikeln erfasst, wie auf diesem Diagramm zu sehen ist. Dieses Spektrum wird anschließend mit den Spektren aus der Softwarebibliothek verglichen. Die endgültigen Ergebnisse zeigen, ob ein Partikel Kunststoff ist oder nicht, und welcher Art der Kunststoff hinsichtlich seiner chemischen Struktur ist. Schlussfolgerung.Mithilfe dieses Protokolls werden genaue und zuverlässige Ergebnisse zur Mikroplastikkonzentration an der Meeresoberfläche erzielt, die mit anderen bestehenden Studien verglichen werden können.

protocol-for-microplastics-sampling-on-sea-surface-sample

Research

Forschung

JoVE Journal

Environment

Umwelt

Mikroplastiken wirken als Vektor potenziell toxischer organischer Verunreinigungen mit unvorhersehbaren Wirkungen. Dieses Protokoll beschreibt eine alternative Methode zur Beurteilung der Konzentrationen von Organochlor-Pestiziden, die an Kunststoff-Pellets adsorbiert sind, und die Identifizierung der chemischen Polymerstruktur. Der Schwerpunkt liegt auf der Druckfluid-Extraktion und der abgeschwächten Totalreflexion Fourier-Transformations-Infrarotspektroskopie.

Extraktion von Organochlor-Pestiziden aus Kunststoff-Pellets und Kunststoff-Typ-Analyse

Plankton und Schwebeteilchen spielen eine wichtige Rolle in den biogeochemischen Zyklen im Ozean. Hier bieten wir eine Ultra-clean, low-Stress-Methode für die Sammlung verschiedener Größen von Partikeln und Plankton auf hoher See mit der Fähigkeit zur Handhabung großer Mengen von Meerwasser.

Eine Ultra-clean Multilayer Vorrichtung zum Sammeln von Größe fraktioniert Meeresplankton und Schwebeteilchen

Die meisten Microplastic Forschung bis jetzt aufgetreten in marinen Systemen wo abgehängte solide relativ niedrig sind. Fokus ist jetzt verschiebt sich auf Süßwasser-Systeme, die hohe Sedimentfracht und Treibgut bieten kann. Dieses Protokoll Adressen sammeln und Analysieren von Microplastic Proben von aquatischen Umgebungen, die hohe hängende solide Lasten enthalten.

Probenahme, Sortieren und Charakterisierung Mikroplastik in aquatischen Umgebungen mit hohen abgehängte Sedimentfracht und große schwimmende Trümmer

Das Protokoll konzentriert sich auf die Sammlung von Meeresschildkröten-Proben, die alle Schritte von der Tiergewinnung und Nekropsie bis zur Klassifizierung und Quantifizierung von aufgenommenen Meeresmüll beschreiben. Darüber hinaus zeigen die repräsentativen Ergebnisse, wie die gesammelten Daten genutzt werden können, um die möglichen Schwellenwerte für einen guten Umweltstatus zu erarbeiten.

Datenerhebung über Meeresmüll in Meeresschildkröten und Scheren für guten Umweltstatus

Diese Studie beschreibt ein zuverlässiges und kostengünstiges Protokoll für die Sammlung und Erkennung von Mikroplastik aus dem täglichen Gebrauch von Kunststoffprodukten.

Probenahme, Identifizierung und Charakterisierung von Mikroplastik, das aus der Babyflasche aus Polypropylen während des täglichen Gebrauchs frei wird

Hier wird eine Methode vorgestellt, um Mikroplastik aus dem Boden zu extrahieren und deren Polymertypen zu identifizieren. Die Methode wurde hinsichtlich Ausführung, Anwendbarkeit und Kosteneffizienz optimiert. Sie legt eine wissenschaftliche Grundlage für die Standardisierung der Analysemethode zur Identifizierung von Mikroplastik in Böden.

Abtrennung und Identifizierung von konventionellem Mikroplastik aus landwirtschaftlichen Böden

Hier stellen wir ein Protokoll vor, das ein optisch transparentes und flaches Substrat für die optimierte Erfassung und Analyse von Schadstoffpartikeln im Trinkwasser zeigt. Hier wird die Silicon Nanomembrane Analysis Pipeline (SNAP) vorgestellt: eine flexible Pipeline für die Abscheidung, Quantifizierung und Identifizierung von Partikeln in flüssigen Medien.

Multimodale Analyse von Mikroplastik im Trinkwasser mit Hilfe einer Silizium-Nanomembran-Analyseleitung

Im Folgenden wird detailliert beschrieben, wie mit Hilfe eines eigens entwickelten patentierten Probenahmesystems Grundwasser aus einem Bohrloch für die Mikroplastikanalytik entnommen wurde. Das Protokoll beschreibt die Methoden zur Probenahme von Mikroplastik aus Bohrlöchern sowie die Trennung und chemische Identifizierung von Mikroplastik.

Probenahme und Identifizierung von Mikroplastik im Grundwasser

Schnelle Biobewertungsprotokolle mit benthischen Makroinvertebraten werden oft verwendet, um die Wasserqualität zu überwachen und zu bewerten. Ein effizientes Protokoll beinhaltet die Sammlung von oberflächenschwimmenden Puppenexuvien (SFPE) von Chironomidae. Hier werden Techniken für die Feldsammlung, die Laborverarbeitung, die Montage von Objektträgern und die Identifizierung von Chironomidae SFPE beschrieben.

Die Nutzung Chironomidae (Diptera) Oberflächenschwimm Pupal Exuviae als schnelle Bioassessment Protokoll für die Wasserkörper

Wir präsentieren ein Protokoll zur Messung der thermischen Eigenschaften von synthetischen hydrathaltigen Sedimentproben, die Sand, Wasser, Methan und Methanhydrat enthalten.

Protokoll zur Messung der thermischen Eigenschaften einer unterkühlten Synthetic Sand-Wasser-Gas-Methanhydrat Probe

Erfahren Sie die standardisierte Methode zur Mikroplastik-Probenahme auf der Meeresoberfläche mit Manta-Netz und ATR FT-IR-Spektroskopie. Dieses Protokoll ermöglicht vergleichbare Daten zur Meeresmüll-Überwachung.

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