Name: Umfassendes Verständnis der inaktivitätsinduzierten Gangveränderung bei Nagetieren (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-07-06T13:10:00.000+00:00
Duration: 4 min 37 s
Description: Lernen Sie die dreidimensionale Bewegungsanalyse zur Untersuchung von Gangveränderungen bei Ratten nach Hinterbeinentlastung. Diese Methode ermöglicht präzise Gelenkwinkelbestimmung für biomechanische Forschung.

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Diese Studie wurde teilweise von der Japan Society for the Promotion of Science (JSPS) KAKENHI (Nr. 18H03129, 21K19709, 21H03302, 15K10441) und der Japan Agency for Medical Research and Development (AMED) (Nr. 15bk0104037h0002) unterstützt.

Die vorliegende Studie wurde vom Kyoto University Animal Experimental Committee (Med Kyo 14033) genehmigt und in Übereinstimmung mit den Richtlinien des National Institute of Health (Guide for the Care and Use of Laboratory Animals, 8th Edition) durchgeführt. Für die vorliegende Studie wurden 7 Wochen alte männliche Wistar-Ratten verwendet. Ein Schema, das die Abfolge der Verfahren darstellt, ist in der Zusatzdatei 1 enthalten.
1. Ratten mit dem Laufbandlaufen vertraut machen
HINWEIS: Einzelheiten zum Verfahren entnehmen Sie bitte dem zuvor veröffentlichten Bericht13 .
<ol><li>Setzen Sie die Ratte auf ein Laufband für Nagetiere (siehe Materialtabelle). Lassen Sie das Tier in der ersten Sitzung das Laufband erkunden, um sich an die Umgebung zu gewöhnen. HINWEIS: Dieser Vorgang dauert ca. 5 Min.</li>
	<li>Erhöhen Sie allmählich die Geschwindigkeit des Gürtels auf das gewünschte Niveau (20 cm / s) und gehen Sie mit der Ratte. Verwenden Sie bei Bedarf einen elektrischen Schlag am Ende des Laufbandes14. HINWEIS: Eine Wanderung dauert ca. 10-20 min.</li>
	<li>Wiederholen Sie diesen Vorgang jeden zweiten Tag für 1 Woche oder häufiger, falls erforderlich15,16,17. HINWEIS: Beginnen Sie die Einarbeitungszeit 1 Woche vor Schritt 2.</li>
	<li>Halten Sie die Ratten in Gruppen in Käfigen (2-3 Ratten in jedem Käfig) mit einem 12-stündigen Hell-Dunkel-Zyklus. Stellen Sie Nahrung und Wasser ad libitum zur Verfügung.</li>
</ol>2. Anwendung der Entladung der Hinterbeine bei den Ratten und Setzen von Gelenkmarkern
ANMERKUNG: Heben Sie die Hinterbeine der Ratte mit Faden und Klebeband an, die am Schwanz befestigt sind, wie in früheren Berichten18,19,20 beschrieben. Stellen Sie sicher, dass der Faden und das Klebeband an der Basis des Schwanzes befestigt sind, um ein Verrutschen der Schwanzhaut zu verhindern. Überwachen Sie die Tiere gründlich und passen Sie bei Bedarf die Entladehöhe oder Dichtheit des Bandes an.
<ol><li>Unter 2-5% Isofluran-Inhalation mit einer Anästhesiemaske die erste Hälfte eines 30 cm langen Klebebandstreifens um den proximalen Teil des Rattenschwanzes wickeln.</li>
	<li>Falten Sie einen 1 m langen Baumwollfaden (Küchengarn aus Baumwolle, ca. 1 mm Durchmesser) zur Hälfte. Machen Sie eine Schlaufe, indem Sie einen Knoten an der gefalteten 50 cm Mitte binden. Der Knoten muss ca. 5 cm von der Spitze entfernt sein, um eine 10 cm Umfangsschlaufe zu hinterlassen.</li>
	<li>Lassen Sie die restlichen 15 cm des Klebebandes einmal durch die Fadenschlaufe passieren, um das Band zu sichern. Wickeln Sie das verbleibende Band um den distalen Teil des Schwanzes.</li>
	<li>Befestigen Sie die andere Spitze des Fadens auf der Überkopfplattform des Käfigs. Halten Sie die Tiere in einem Käfig, der hoch genug ist, um ihre Hinterbeine am Schwanz anzuheben. Stellen Sie neben dem Entladen die gleiche Umgebung wie für die Strrl-Gruppe bereit, z. B. Lebensmittel, Wasser und Bodenbettwäsche.</li>
	<li>Richten Sie die Verbindungsmarker und die Software ein (siehe Materialtabelle), indem Sie die folgenden Schritte ausführen. HINWEIS: Einzelheiten zu diesem Schritt finden Sie in Wang et al.13.<ol><li>Unter 2-5% Isofluran-Inhalation farbige halbkugelförmige Marker (3 mm Durchmesser) auf der rasierten Haut befestigen, die knöchernen Landmarken entsprechen. Halten Sie den Isofluranspiegel so niedrig wie möglich, um eine sehr tiefe Anästhesie zu vermeiden.</li>
		<li>Stellen Sie sicher, dass die Orientierungspunkte die vordere obere Beckenwirbelsäule (ASIS), Trochanter major (Hüftgelenk), Kniegelenk (Knie), lateraler Malleolus (Knöchel) und fünftes Metatarsophalangealgelenk (MTP) sind21. HINWEIS: Malen Sie die Zehenspitze, wenn der Winkel der Zehe benötigt wird. Verwenden Sie einen Farbmarker auf Ölbasis (siehe Materialtabelle). Flüssigkleber ist für Klebstoff vorzuziehen, da die flüssige Form schneller trocknet.</li>
	</ol></li>
</ol>3. Marker-Tracking mit aufgenommenen Videos
<ol><li>Öffnen Sie die MotionRecorder-App (siehe Materialtabelle) und schalten Sie das Laufband ein. Legen Sie die Ratte auf den Laufbandgürtel. HINWEIS: Die vier Kameras für die Videoaufnahme (siehe Materialtabelle) sind entlang der langen Kanten des Laufbandes angeordnet: zwei Kameras an jeder Kante, ca. 50 cm x 50 cm voneinander entfernt, in der Mitte des Laufbandbereichs.</li>
	<li>Erhöhen Sie die Bandgeschwindigkeit auf bis zu 20 cm/s. Wenn die Ratte normal mit der gewünschten Geschwindigkeit zu laufen beginnt, klicken Sie auf das Aufnahmesymbol , um die Videoaufnahme zu starten. Sobald genügend Schritte (5 aufeinanderfolgende Schritte, vorzugsweise 10 Schritte) erreicht sind, stoppen Sie die Aufnahme, indem Sie erneut auf das Aufnahmesymbol klicken. HINWEIS: Erfassen Sie Daten über mehrere Tiere in einem Experiment. Versuchen Sie es bis zu fünf Mal für jede Ratte. Wenn eine Ratte nicht läuft, fangen Sie eine andere und versuchen Sie die erste später. Die Aufnahmerate der Kamera betrug 120 Bilder/s.</li>
	<li>Öffnen Sie die 3DCalculator-App (siehe Materialtabelle) und die zu analysierende Videodatei.</li>
	<li>Schneiden Sie das Video zu, indem Sie den horizontalen Schieberegler oben so anpassen, dass er eine ausreichende Anzahl aufeinanderfolgender Schritte enthält. Aufgenommene Bildänderungen durch Ziehen der Endspitzensymbole des gelben Schiebereglers.</li>
	<li>Um die Marker zu erfassen, wählen Sie die Markerlegenden aus, indem Sie auf die Markerlegenden auf dem Stickbildmodell klicken, sie auf die entsprechende Markierung auf dem aufgenommenen Video ziehen und die Schaltfläche loslassen. Dieser Prozess ordnet die Farbe des Markers der Markerlegende im Stickbild zu. Wiederholen Sie diesen Vorgang für jeden Marker, der verfolgt werden soll.</li>
	<li>Klicken Sie auf das Symbol Automatische Ablaufverfolgung . Wenn das System Marker nicht genau verfolgt oder der Tracking-Prozess aufgrund von Markerverlust anhält, wechseln Sie in den manuellen Modus. HINWEIS: Dieser automatische Prozess wird nicht angehalten, es sei denn, die Marker werden übersehen. Wenn Stopps häufiger als alle paar Frames auftreten, sollten Sie die verlorenen Marker neu positionieren.</li>
	<li>Wenn der manuelle Modus erforderlich ist, klicken Sie auf das Symbol Manuell , um zu wechseln. Klicken Sie auf die fehlende Markerlegende auf dem Stickbild und die entsprechende Markierung auf dem Video. Das Video wird mit einem Frame für jeden Klick im manuellen Modus fortgesetzt. HINWEIS: Verwenden Sie frei verfügbare Apps, die das automatische Klicken ermöglichen, um Ermüdung derjenigen zu verhindern, die die Marker verfolgen (digitalisieren) (siehe Materialtabelle).</li>
</ol>4. Berechnung der gewünschten Parameter
<ol><li>Öffnen Sie die KineAnalyzer-App (siehe Materialtabelle) und laden Sie die Datei.</li>
	<li>Wechseln Sie zum Menü Ansicht > Markermaster bearbeiten . Es öffnet sich das Fenster "Marker Master Edit". HINWEIS: Erfasste Marker haben einfache Nummern, bis sie beschriftet sind.</li>
	<li>Klicken Sie auf dem Marker-Tab auf das gewünschte Label (Landmark) und dann auf die gewünschte Farbe. Bei diesem Prozess wird jeder Marker einem bestimmten Orientierungspunkt zugeordnet.</li>
	<li>Wechseln Sie zur Registerkarte Link . Erstellen Sie Linien, indem Sie nacheinander auf zwei Markierungen klicken. Dieser Prozess erstellt Linien, die jedem Glied mit beschrifteten Markern entsprechen.</li>
	<li>Weisen Sie den erstellten Linien Farben zu, indem Sie die gewünschte Farbe in der Spalte Farbe auswählen.</li>
	<li>Definieren Sie Winkel, indem Sie Referenz-/Bewegungslinien und Richtungen der Winkel zuweisen. Gehen Sie zur Registerkarte Winkel . Nachdem Sie den Winkel benannt haben, weisen Sie Vektor A (Referenzlinie) und Vektor B (bewegliche Linie) zu, indem Sie auf die Markierungen klicken, die jedem Orientierungspunkt entsprechen. Definieren Sie dann die Richtung des Winkels mit einem Wert im Bedienabschnitt auf derselben Registerkarte. HINWEIS: Für die vorliegende Studie konzentrierten sich die hauptsächlich fokussierten Parameter in der Mitte der Standphase (Midstance): KSt (Kniewinkel), ASt (Knöchelwinkel), MHD (Metatarso-Hüftabstand: entspricht der Höhe der Hüfte, siehe nächster Abschnitt). Kniewinkel und Knöchelwinkel wurden definiert als der Winkel zwischen Femur und Tibia bzw. Tibia bzw. fünftem Mittelfußknochen. Ein Winkel von 0° bedeutet, dass das Gelenk vollständig gebeugt wurde.</li>
	<li>Definieren Sie auf der Registerkarte Abstand den Entfernungsparameter (MHD). Wählen Sie im Abschnitt "Entfernungseinstellung " zwei entsprechende Markierungen aus. Gelenktrajektorien als Funktion des normalisierten Schrittzyklus werden ebenfalls verfügbar sein. HINWEIS: Das Definieren von Winkeln/Parametern muss nur einmal durchgeführt werden. Die Einstellungen der Parameter stehen nach Abschluss dieses Definitionsprozesses für spätere Auswertungen zur Verfügung.</li>
</ol>

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</ol>

Die Autoren erklären, dass kein Interessenkonflikt besteht.

Die Veränderung von Umgebungen führt zu fluktuierenden funktionellen Aspekten und muskuloskelettalen Komponenten des Bewegungsapparates26,27. Aberrationen in kontraktilen Strukturen oder Umgebungen können die funktionellen Fähigkeiten beeinträchtigen und auch nach Auflösung mechanischer / Umweltverzerrungen bestehen bleiben19. Die objektive Bewegungsanalyse hilft, diese funktionellen Fähigkeiten quantitativ zu messen. Wie oben gezeigt, ist...

Mangelnde körperliche Aktivität oder Nichtgebrauch führt zur Verschlechterung der motorischen Effektoren, wie Muskelschwund und Knochenschwund1 und Ganzkörperdekonditionierung2. Darüber hinaus wurde kürzlich festgestellt, dass Inaktivität nicht nur strukturelle Aspekte der Muskel-Skelett-Komponenten, sondern auch qualitative Aspekte der Bewegung betrifft. Zum Beispiel unterschieden sich die Gliedmaßenpositionen von Ratten, die einer simulierten Mikrogravitationsumgebung ausgesetzt waren, von denen intakter Tiere auch 1 Monat nach Ende der Intervention 3,4. Dennoch wurde wenig über Bewegungsdefizite berichtet, die durch Inaktivität verursacht werden. Auch die umfassenden Bewegungsmerkmale der Verschlechterungen sind nicht vollständig bestimmt.
Das aktuelle Protokoll demonstriert und diskutiert die Anwendung der kinematischen Auswertung zur Visualisierung von Bewegungsänderungen unter Bezugnahme auf Gangbewegungsdefizite, die durch Nichtanwendung bei Ratten hervorgerufen werden, die einer Entladung der Hinterbeine unterzogen wurden.
Es wurde gezeigt, dass Hyperextensionen von Gliedmaßen beim Gehen nach einer simulierten Mikrogravitationsumgebung sowohl bei Menschen5 als auch bei Tierenbeobachtet werden 4,6,7,8. Aus Gründen der Universalität haben wir uns daher in dieser Studie auf allgemeine Parameter konzentriert: Winkel der Knie- und Sprunggelenke und vertikaler Abstand zwischen Metatarsophalangealgelenk und Hüfte (entspricht in etwa der Höhe der Hüfte) am Mittelpunkt der Standphase (Mitte). Darüber hinaus werden in der Diskussion mögliche Anwendungen der videokinematischen Auswertung vorgeschlagen.
Eine Reihe von kinematischen Analysen kann eine wirksame Maßnahme sein, um funktionelle Aspekte der neuronalen Kontrolle zu bewerten. Obwohl Bewegungsanalysen von der Fußabdruckbeobachtung oder einfachen Messung des aufgenommenen Videos9,10 bis hin zu mehreren Kamerasystemen11,12 entwickelt wurden, müssen universelle Methoden und Parameter noch etabliert werden. Die Methode in dieser Studie soll diese Gelenkbewegungsanalyse mit umfassenden Parametern versorgen.
In der vorherigen Arbeit13 haben wir versucht, Gangveränderungen bei Nervenläsionsmodellratten mit umfassender Videoanalyse zu illustrieren. Im Allgemeinen sind die potenziellen Ergebnisse von Bewegungsanalysen jedoch häufig auf vorgegebene Variablen beschränkt, die in den Analyserahmen bereitgestellt werden. Aus diesem Grund wird in der vorliegenden Studie detailliert beschrieben, wie benutzerdefinierte Parameter integriert werden können, die breit anwendbar sind. Kinematische Auswertungen mittels Videoanalysen können bei Implementierung geeigneter Parameter von weiterem Nutzen sein.

<table><tbody><tr><td>Klebeband</td><td>NICHIBAN CO.,LTD.</td><td>SEHA25F</td><td>Klebeband zum Befestigen des Fadens an Schwänzen von Ratten zum Entladen der Hinterbeine</td></tr><tr><td>Anästhesiegerät für Kleintiere</td><td>SHINANO MFG CO., LTD.</td><td>SN-487-0T Auto-Clicker</td><td></td></tr><tr><td></td><td>N.A.</td><td>N.A.</td><td>kostenlose Software zum Download auf den PC (https://www.google.com/search?client=firefox-b-1-d&q=auto+clicker)</td></tr><tr><td>CCD-Kamera</td><td>Teledyne FLIR LLC</td><td>GRAS-03K2C-C</td><td>CCD-Kameras (Charge-Coupled Device) für Videoaufnahmen</td></tr><tr><td>Cotton Thread</td><td>N.A.</td><td>N.A.</td><td>Faden zum Aufhängen von Rattenschwänzen von der Decke des Käfigs</td></tr><tr><td>ISOFLURAN Inhalationslösung</td><td>Pfizer Japan Inc.</td><td>(01)14987114133400</td><td></td></tr><tr><td>Fugenmarkierer</td><td>TOKYO MARUI Co., Ltd</td><td>0,12 g BB</td><td>6 mm Airsoft-Pellets, die als halbkugelförmige Marker mit Modifikation</td></tr><tr><td>Kine Analyzer</td><td>KISSEI COMTEC CO., LTD.</td> verwendet wurden.<td>N.A.</td><td>Software zur Analyse</td></tr><tr><td>Konishi Aron Alpha</td><td>TOAGOSEI CO.,LTD.</td><td>#31204</td><td>Sekundenkleber zum Anbringen von sphärischen Markern auf Randmarkierungen von Ratten</td></tr><tr><td>Motion Recorder</td><td>KISSEI COMTEC CO.,LTD.</td><td>N.A.</td><td>Software für Videoaufzeichnung</td></tr><tr><td>Paint Marker</td><td>MITSUBISHI PENCIL CO., LTD</td><td>PX-21.13</td><td>Paint Marker auf Ölbasis zum Markieren von Zehen von Tieren</td></tr><tr><td>Dreidimensionales Motion-Capture-Gerät (KinemaTracer für kleine Tiere)</td><td>KISSEI COMTEC CO.,LTD.</td><td>N.A.</td><td>3D-Bewegungsanalysesystem, das aus vier Kameras (https://www.kicnet.co.jp/solutions/biosignal/animals/kinematracer-for-animal/ oder https://micekc.com/en/) besteht</td></tr><tr><td>Dreidimensionaler (3D) Taschenrechner</td><td>KISSEI COMTEC CO.,LTD.</td><td>N.A.</td><td>Software zur Markerverfolgung</td></tr><tr><td>Laufband</td><td>MUROMACHI KIKAI CO.,LTD</td><td>MK-685</td><td>Laufband mit transparentem Gehäuse, Elektroschocker und Geschwindigkeitsregler</td></tr><tr><td>Wistar Rats (männlich, 7 Wochen alt)</td><td>N.A.</td><td>N.A.</td><td>Kommerziell erhältlich bei Versuchstieren</td></tr></tbody></table>

umfassendes verständnis der inaktivitätsinduzierten gangveränderung bei nagetieren

Comprehensive Understanding of Inactivity-Induced Gait Alteration in Rodents

Es ist bekannt, dass Nichtgebrauch neuronale Systeme beeinflusst und dass Gelenkbewegungen verändert werden; Welche Ergebnisse diese Eigenschaften richtig aufweisen, ist jedoch noch unklar. Die vorliegende Studie beschreibt einen Bewegungsanalyseansatz, der eine dreidimensionale (3D) Rekonstruktion aus Videoaufnahmen verwendet. Mit dieser Technologie wurden bei Nagetieren beobachtet, die einer simulierten Mikrogravitationsumgebung ausgesetzt waren, indem sie ihre Hinterbeine am Schwanz entladen. Nach 2 Wochen des Entladens gingen die Ratten auf einem Laufband und ihre Gangbewegungen wurden mit vier CCD-Kameras (Charge-Coupled Device) erfasst. Mit der Bildverarbeitungssoftware wurden 3D-Bewegungsprofile rekonstruiert und mit denen von Kontrollpersonen verglichen. Die rekonstruierten Ergebnismessungen stellten erfolgreich verschiedene Aspekte der verzerrten Gangbewegung dar: Hyperextension der Knie- und Sprunggelenke und höhere Position der Hüftgelenke während der Standphase. Die Bewegungsanalyse ist aus mehreren Gründen nützlich. Erstens ermöglicht es quantitative Verhaltensbewertungen anstelle von subjektiven Beobachtungen (z. B. bestanden / nicht bestanden bei bestimmten Aufgaben). Zweitens können mehrere Parameter extrahiert werden, um spezifische Anforderungen zu erfüllen, sobald die grundlegenden Datensätze erhalten sind. Trotz Hürden für eine breitere Anwendung können die Nachteile dieser Methode, einschließlich Arbeitsintensität und Kosten, durch die Festlegung umfassender Messungen und experimenteller Verfahren gemildert werden.

12 Tiere wurden nach dem Zufallsprinzip einer von zwei Gruppen zugeordnet: der Entladegruppe (UL, n = 6) oder der Kontrollgruppe (Strg, n = 6). Bei der UL-Gruppe wurden die Hinterbeine der Tiere 2 Wochen lang am Schwanz entladen (UL-Periode), während die Tiere der Ctrl-Gruppe frei gelassen wurden. 2 Wochen nach dem Entladen zeigte die UL-Gruppe ein deutliches Gangmuster im Vergleich zur Ctrl-Gruppe. Abbildung 1 zeigt normalisierte Gelenkverläufe repräsentativer Probanden. Während der Standph...

Das vorliegende Protokoll beschreibt die dreidimensionale Bewegungsverfolgung/-auswertung zur Darstellung der Veränderung der Gangbewegung von Ratten nach Exposition gegenüber einer simulierten Nichtverwendungsumgebung.

Umfassendes Verständnis der inaktivitätsinduzierten Gangveränderung bei Nagetieren

It is well known that disuse affects neural systems and that joint motions become altered; however, which outcomes properly exhibit these characteristics ...

Unser Protokoll bietet ein umfassendes Verfahren zur Bestimmung von Parametern für die Gelenkbewegungsanalyse. Gelenkbewegungsanalysen sind oft kompliziert, da keine umfassende Definition von Parametern vorhanden ist. Wir zeigen Standardschemata von Parameterdefinitionen, die universell auf verwandte Felder anwendbar sind.Öffnen Sie zunächst die MotionRecorder-App. Legen Sie die Ratte auf den Laufbandgürtel. Erhöhen Sie die Bandgeschwindigkeit auf 20 Zentimeter pro Sekunde.Wenn die Ratte normal mit der gewünschten Geschwindigkeit zu laufen beginnt, klicken Sie auf das Aufnahmesymbol, um die Videoaufnahme zu starten. Sobald 5 bis 10 aufeinanderfolgende Schritte abgeschlossen sind, stoppen Sie die Aufnahme, indem Sie auf das Aufnahmesymbol klicken. Öffnen Sie die 3DCalculator-App und die zu analysierende Videodatei.Schneiden Sie das Video zu, indem Sie den horizontalen Schieberegler oben anpassen, um eine ausreichende Anzahl aufeinanderfolgender Schritte zu enthalten. Um die Marker zu erfassen, ziehen Sie die Markerlegenden auf dem Stick-Picture-Modell auf die entsprechende Markierung auf dem aufgenommenen Video und lassen Sie die Schaltfläche los. Klicken Sie auf das Symbol Automatische Ablaufverfolgung.Wenn das System Marker nicht genau verfolgt oder der Tracking-Prozess aufgrund von Markerverlust anhält, wechseln Sie in den manuellen Modus, indem Sie auf das Symbol Manuell klicken. Klicken Sie auf die fehlende Markerlegende auf dem Stickbild und die entsprechende Markierung auf dem Video. Öffnen Sie die KineAnalyzer-App und laden Sie die Datei.Gehen Sie zu Ansicht und klicken Sie auf Marker-Master-Menü bearbeiten. Es öffnet sich das Marker-Master-Bearbeitungsfenster. Klicken Sie auf das gewünschte Etikett oder die gewünschte Landmarke auf der Registerkarte "Marker" und dann auf die gewünschte Farbe.Bei diesem Prozess wird jeder Marker einem bestimmten Orientierungspunkt zugeordnet. Erstellen Sie dann auf der Registerkarte "Link" Linien, die jedem Glied entsprechen, indem Sie nacheinander auf zwei Markierungen klicken. Weisen Sie den erstellten Linien Farben zu, indem Sie die gewünschte Farbe in der Spalte Farbe auswählen.Definieren Sie Winkel auf der Registerkarte "Winkel". Nachdem Sie den Winkel benannt haben, weisen Sie Vektor A als Referenzlinie und Vektor B als bewegliche Linie zu, indem Sie auf die Markierungen klicken, die jeder Landmarke entsprechen. Definieren Sie dann die Richtung des Winkels mit einem Wert im Abschnitt "Oper" auf derselben Registerkarte.Definieren Sie anschließend auf der Registerkarte "Entfernung" den Entfernungsparameter. Wählen Sie im Abschnitt "Entfernungseinstellung" zwei entsprechende Markierungen aus. Jeweils sechs Tiere wurden nach dem Zufallsprinzip entweder der Entladegruppe zugeordnet, bei der die Hinterbeine des Tieres zwei Wochen lang am Schwanz entladen wurden, oder der Kontrollgruppe, in der die Tiere frei gelassen wurden.Die normalisierten Gelenktrajektorien für Knie und Knöchel während der Standphase zeigten, dass die unbelastete Gruppe weitere Extensions im Knie und Knöchel aufwies als die Kontrollgruppe. Zwei Wochen nach dem Entladen waren quantitative Maße wie Kniewinkel in der Mitte und Knöchelwinkel der unbelasteten Gruppe signifikant größer als die der Kontrollgruppe. Auch der Metatarso-Hüftabstand, der praktisch der Höhe des Hüftgelenks in der Mitte entspricht, war in der unbelasteten Gruppe deutlich höher.Diese Methode gab den Forschern die Grundlagen für die Bestimmung von Gelenkbewegungsparametern. Auf diese Weise können sie spezifische Rahmenbedingungen für ihre eigenen Forschungsfragen einrichten.

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Research

Forschung

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Neuroscience

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