Waiting
Procesando inicio de sesión ...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Behavior

鍼治療によりラットとマウスにおけるてんかんElectrocorticograms(ECoGs)の操作とスリープ

Published: December 22, 2016 doi: 10.3791/54896
* These authors contributed equally

Introduction

てんかんは、再発性発作が患者の寿命全体で発生する一般的な神経疾患です。最もてんかん再発は、抗てんかん薬(抗てんかん薬)によって十分に制御することができます。しかし、てんかん患者の約30%は、難治性てんかん1を開発しています。てんかんは、さらに再発を悪化させる可能性睡眠障害を引き起こします。証拠は、てんかんが夜に睡眠を妨害することがありいずれか、または日中の過度の眠気の2,3を引き起こす可能性があることを示しています。我々の以前の研究はさらにzeitgeber時間(ZT)0、すなわちで発生することてんかんを示し、光の光期間の開始:暗サイクルは、睡眠を減少させます。これは、コルチコトロピン放出ホルモン(CRH)、恒常性因子によって媒介されます。 ZT13(暗期の初め)にてんかん、睡眠を増加させる別の恒常性因子、インターロイキン-1(IL-1)の発現を増強します。概日リズムをスリープてんかんはZT6、の途中で発生した場合に変更されます明期4,5。一方、睡眠の問題は、さらにてんかん6の進行や再発を悪化させます。前述の証拠に基づいて、我々は同時に、てんかんを制御し、てんかん患者における睡眠の混乱を防止するための最適な治療法を明らかにしてみてください。我々は以前正常皮質脳波を(ECOG)てんかん活動とてんかん誘発性睡眠障害を抑制し、電流の一定量をステンレススチール針を通して経穴に送達された10-Hzの刺激周波数でその電気針(EA)に見出さ7 。 100 Hzの刺激周波数を持つEAはさらに、ラット8,9にてんかん活動と睡眠の中断を劣化させます。この成功した実験では、3つの要因によって決まります。まず、実現可能なてんかん動物モデル;第二に、げっ歯類における睡眠記録および分析のための方法。第三に、鍼治療の正確なパフォーマンスとツボlocatiの精度アドオン。

焦点てんかんと一般化てんかん:てんかんは、2つの主要なタイプに分類されています。私たちは、焦点側頭葉てんかん(TLE)、全般てんかん、てんかん重積状態(SE)、および自発性全般てんかんの再発に興味を持っています。したがって、別の操作は、実験に適したてんかんモデルを作成するために適用されます。焦点TLEを確立するには、ピロカルピンの低用量は、扁桃体(CEA)の左中央の核内に投与されます。このモデルを検証するために、6 ECOG電極は正面(F1&F2)、頭頂部(P1&P2)、および後頭部(O1&O2)、左右両半球でローブに移植し、他の二つの基準電極(R1&されていますR2)が両半球における小脳の上に配置されています。追加のマイクロインジェクションガイドカニューレを外科的に左CEA(; ML、4.2ミリメートル、DV、ブレグマを基準に7.8ミリメートルAP、ブレグマから2.8ミリメートル)に移植されます。座標は、PaxinosとWから適応されていますラットアトラス10 atson。焦点TLEが正常に誘導されている場合は、左のCEAの近くにある左頭頂皮質上の電極(P1)からのみ記録、他のECOGの電極から記録されていない重要なてんかん様ECoGsで、支配的なてんかん様ECoGsを取得する必要があります。ラットへの腹腔内ピロカルピンの(IP)注射が一般化てんかんやSEを誘発するが、これは致命的なことができます。各注入の間に1日間隔でペンチレンテトラゾール(PTZ)の五IP注射は、正常マウスでは、自発全般てんかんを誘発し、また、マウスの生存を確認してください。二線ECOG電極がECOG信号を受信すると自発的に再発性てんかんを確認するために、マウスにおける前頭葉および頭頂葉皮質に注入されます。

睡眠ポリグラフ(PSG)は、睡眠中に起こる生理的変化を記録するための包括的な方法であり、それは客観的、非急速眼球運動(NREM)とrの異なる段階に睡眠を分類することができますAPIDの眼球運動(REM)睡眠。 PSGは、脳波(脳波、EEG)、眼球運動(電図、EOG)、骨格筋トーン(電、EMG)、心拍リズム(心電図、ECG)、および血中酸素濃度と呼吸パラメータを含む身体機能のパラメータを、記録します。ラットでは、我々は覚醒、ノンレム睡眠、レム睡眠に警戒状態を分類するECoGs、筋電図、皮質温度、および自発運動を記録します。マウスでの睡眠分析はECoGs、筋電図、および自発運動の結果を用いて行われます。ラットを外科的に前頭葉、頭頂葉、および定位手術による対側小脳皮質で3 ECOGスクリュー電極を移植されています。警戒状態(覚醒、ノンレム睡眠、レム睡眠)の買収後の決意はECoGs、EMG、脳の温度、および自発運動から取得したパラメータに従って実施されます。ラットとマウスの両方で、動物の行動を分類するための詳細な基準は、トンで説明されています彼は、プロトコル。

ラットとマウスの両方が手動鍼やEAを実行する前に、正常に定位手術中に投与麻酔薬の半分の投与量であるzoletilの低用量(25mgの/キログラム)、で麻酔する必要があります。この投与量は、動物は、注射後30〜35分をウェイクアップすることができます。手動鍼またはEAのいずれかが30分の一定時間で、暗期の開始時に行われ、各動物は、連続的に2〜3日間処理されます。刺激EA電流は、ツボに挿入されたステンレス製の針を介して特定のツボに配信されます。刺激電流は、二相性方形パルス列であり、これは、パルス持続時間は150ミリ秒であり、刺激強度を1 mAです。ドライニードル手動鍼治療のために使用される場合、ツボに挿入された針は、10回ごとに5分ひくれます。マニュアル鍼やEAの難しい部分はげっ歯類でツボをローカライズすることです。 LOCラットやマウスでのツボのationがヒトにおける解剖学的位置に似ています。例えば、二国間Fengchiのツボは、ヒト11での解剖学的位置に似ている両耳の間に、3ミリメートル離れて首に後部正中線から位置しています。さらに、皮膚上の低インピーダンスでツボをさらに確認することができます。シャム鍼または偽EA操作は、鍼やEAの実験のために必要です。シャム鍼または偽EAは、腋窩12近くに、近いツボに位置する非経穴で実行されなければなりません。

正常にてんかんおよびてんかん誘発性睡眠の中断に鍼やEAの効果を調べるために、以下の要因は、所定の位置になければなりません:実行可能なてんかん動物モデル、てんかん様ECoGsとてんかんの再発の正確な分析、警戒状態を分類する方法げっ歯類での鍼治療やEAの、そして正確なパフォーマンス。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

すべての実験プロトコルは、国立台湾大学の施設内動物管理使用委員会(IACUC)によって承認されています。

注入ECOG電極、EMG電極、脳サーミスタ、および注射ガイドカニューレ1.定位手術

  1. ( - 350グラム、6〜8週齢のSprague-Dawleyラット250)ラットについて
    1. 50mg / kgのzoletilでIP注射によってラットを麻酔。後足をつまん後応答の欠如を観察することによって、麻酔の適切な深さを確認してください。眼軟膏を適用し、毛皮を剃る、およびポビドンヨード溶液および75%エタノールで皮膚を殺菌します。感染を防ぐために抗生物質(ペニシリンG)を注入します。
    2. 手術のためにメス、ハサミ、止血剤、ガーゼ、および焼灼マシンを準備します。オートクレーブし、75%エタノールにより焼灼することにより、外科的ギアとガーゼを滅菌します。
    3. 外耳道に耳のバーを配置し、定位にラットをマウントします。
    4. 使い方メスは、尾側に移動し、両耳間の線に沿って頭蓋骨に約2 cmの正中切開を行います。頭蓋骨を露出させ、メスを用いて頭蓋骨を介して組織を除去するために止血剤で皮膚フラップをクリップ。
    5. 回転工具と頭蓋骨にドリル8つの穴(F1、F2、P1、P2、O1、O2、R1、及びR2)、直径がそれぞれ約0.7ミリメートル、。前頭葉、頭頂葉、後頭葉と左と右半球の両方で小脳のネジ8 ECOG電極。これらの電極は、焦点てんかんの検出のために使用されます。
      1. 記録電極のために、次の座標を使用します。正面(F1とF2):ブレグマと正中線から2.5ミリメートルにする2.0ミリメートルの前部、頭頂(P1およびP2):-2.0ミリメートルブレグマ前方および正中線から3.0ミリメートル、および後頭部(O1及びO2):ブレグマ-5.5ミリメートルの前方および正中線から3.0ミリメートル。
      2. 小脳(-11.0ミリメートルブレグマ前方およびmidliから4.0ミリメートルの上に二つの基準電極(R1とR2)を配置ね)。
    6. ラットの別々のグループ、ドリル3つの穴で、ステップ1.1.5.1で説明したのと同じ座標を持つ皮質の右前頭(F2)と頭頂葉(P2)の上に2つのネジEEG電極を配置します。動物を粉砕し、信号アーチファクトを低減するのに役立つ、左小脳(R1)、上に第3 EEG電極を配置します。これらの電極は、一般的なてんかんを確認し、警戒段階を分析するために使用されます。
    7. 首の皮膚や筋肉を分離し、首の筋肉内に2 EMG電極を挿入します。
    8. ラットで頭蓋骨に別の穴を開け、左CEAへのマイクロインジェクションガイドカニューレを配置する(DV、ブレグマを基準に7.8ミリメートルAP、ブレグマから2.8ミリメートル; ML、4.2ミリメートル)。座標は、Paxinosとワトソンラットアトラス10から適応されています。
    9. 頭蓋骨に(直径1.6mmの)大きな穴をドリルとMONIに、後に接合される頭頂葉皮質の表面に較正された30-kVのサーミスタを挿入ラットにおける皮質の温度をTOR。
    10. それが発生したときに出血を止めるためにガーゼや焼灼を使用してください。
    11. ルートは台座にECOG電極とEMG電極からのリード線を絶縁し、テザーにサーミスタを接続します。台座をセメントや歯科用アクリルで頭蓋骨にカニューレを導きます。
    12. 感染を防ぐためにポリスポリン(バシトラシン亜鉛/硫酸ポリミキシンB)で局所的に切開を扱います。手術後1週間のために水の動物イブプロフェンおよびペニシリンGの両方を与えます。
  2. ( - 48 gであり、6〜8週齢のC57BL / Cマウス20)マウスについて
    1. 50mg / kgのzoletilでIP注射によってマウスを麻酔し、後足をつまん後応答の欠如を観察することによって、麻酔の適切な深さを確認します。眼軟膏を適用します。毛皮を剃毛した後、ポビドンヨード溶液および75%エタノールで皮膚を殺菌します。感染を防ぐために抗生物質(ペニシリンG)を注入します。
    2. 外耳道に耳のバーを配置し、定位にマウスをマウントします。
    3. メスを用いて、尾側に移動し、両耳間の線に沿って頭蓋骨上の近似1.5 cmの正中切開を行います。頭蓋骨を露出させ、メスで頭蓋骨を介して組織を除去するために止血剤で皮膚フラップをクリップ。
    4. 手術用ハサミで頭骨の2つの穴を突くと右前頭葉(F2:2.0ブレグマへミリメートルと正中線へ1.5)上の2つのワイヤECOG電極を配置し、左頭頂葉(P1:-3.0ブレグマするミリメートル-2.5正中線にミリメートル)。
    5. 首の皮膚や筋肉を分離し、首の筋肉内に2 EMG電極を挿入します。
    6. 雌端子へと2.54 mmのコネクタに電線ECOG電極とEMG電極から絶縁されたリード線を接続し、歯科用アクリルで頭蓋骨にセメント。
    7. 感染を防ぐためにポリスポリン(バシトラシン亜鉛/硫酸ポリミキシンB)で局所的に切開を扱います。 1おしっこのために水に動物の両方イブプロフェンおよびペニシリンGを与えます手術後にKです。
  3. すべての動物は、実験の開始に先立って7日間回復することができます。
  4. 暗(L:D):12時間サイクル(40 Wリズム12で制御された温度は、23±1℃に維持され、光は、単離された部屋の中で個々の記録ケージ内の別々の家ラットまたはマウス、 X 4チューブ照明)。食料と水を自由に提供します。
  5. 録音を開始するために、手術後1週間アンプにテザーを介してECOG、EMG、およびサーミスタを接続します。

フォーカルTLEてんかん、SE、および自然発症再発てんかんの2設立

  1. ラットについて
    1. マイクロインジェクションポンプを用いて射出ガイドカニューレを介して左CEAにピロカルピンの0.5μL(2.4ミリグラム/μL)を管理します。注入速度は、焦点TLEを誘導することが0.2μL/分に設定されるべきです。
    2. IPは、一般的なエピを誘導するためにピロカルピンの300ミリグラム/キログラムを注入します再発SEとlepsy。
  2. マウスについて
    1. IPは、一日おきに特定のZT点でPTZ(0.035ミリグラム/グラムマウス体重)を管理します。 5つの連続した注射は、自発的かつ反復的に全般てんかんの発症の原因となります。
  3. ラットとマウスの両方について
    1. 5000によってECOG信号を増幅し、0.1と40 Hzの間のアナログ帯域をフィルタリングします。
    2. 128 Hzのサンプリングレートでデジタル信号にアナログECoGs信号を変換するA / D変換ボードを使用してください。
    3. 視覚的スコアリングのためのソフトウェアを使用し、発症やてんかんの持続時間を分析します。持続時間を表すために時間スケールを測定します。
    4. 2 mVのより大きな振幅を有するてんかんスパイクの出現によって以上30秒13の持続時間とECOGのてんかんを定義します。

警戒状態の3分類

  1. ラットについて
    1. 記録の12秒エピソード内ECoGs、EMG、脳の温度、および歩行から取得したパラメータを使用して、警戒状態を決定します。記録を開始するために、手術後1週間アンプにテザーを介してECOG、EMG、およびサーミスタを接続します。 3.1.7 - 手順3.1.5に従って、カスタムメイドのソフトウェアを使用して状態をスコア。
    2. 、赤外線モーション検出器を使用して、自発運動活性を測定信号ごとに1秒を統合し、信号を記憶。
    3. 皮質の温度を測定し、信号を記憶。
    4. 私たちの以前に定義された基準14に従って、警戒状態を分類します。
    5. 次の特性を利用して覚醒をスコア:( - 4.0 Hzの0.5)、およびより低いシータパワー、高周波数スペクトルを持つ小振幅ECoGs、高いデルタパワー(6.0から9.0 Hz)を、支配的な運動活性;高EMG活性;徐々に皮質の温度を上昇させます。
    6. followinを使用して、ノンレム睡眠のスコアグラム特性:大振幅のデルタ波優勢ECoGsは、皮質の温度、無運動活性を減少させ、EMG活動の減少となりました。
    7. 次の特性を使用して、スコアレム睡眠:ボディけいれんで急増皮質温度、最小限のEMG活動、および低運動活性、支配的なシータ周波数でECoGsの振幅を減少させました。
  2. マウスについて
    1. サーミスタから記録されない皮質温度が存在しない以外は、ラットで行ったように、マウスに警戒状態の分類を繰り返します。

ラットにおけるマニュアル鍼とEAの4パフォーマンス

  1. ラットは、EAのプロトコルのために麻酔されます。
  2. 解剖学によってツボを見つけて、ツボに低い皮膚インピーダンスを確認します。低皮膚インピーダンスを検出したときに光が点滅しています。注:Fengchiのツボは、3ミリメートル離れた後方正中線から位置していること首に、両耳をトゥイーン。
  3. 2ミリメートルの深さでツボにステンレス製の針を挿入します。
  4. 挿入された針を10回5分ごとにけいれん。
  5. 機能的電気刺激装置を使用して、針を通してツボに1ミリアンペアの強さで(150マイクロ秒の持続時間ごと)、二相パルス列を提供します。
  6. コントロールとして偽鍼や偽のEAを実行します。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

異なるてんかんタイプのニーズを満たすために、異なるラットおよびマウスモデルがあります。焦点TLEを誘導するために、ピロカルピンの0.5μL(2.4ミリグラム/μL)を左CEAに投与されます。優勢なてんかん様ECoGsは左半球( 図1A:B)の頭頂葉にECOG電極から取得され、希少てんかん活動は、ECOG電極( 図1Aの残りの部分からピックアップされています 、C、D、E 、およびf)ピロカルピンを投与した場合。てんかん様ECoGsは、主にピロカルピン投与の直後に記録されています。これらの結果は、8から採用されています。これらの結果は、CEAに低用量ピロカルピンの直接注入後のラットにおける焦点TLEの成功誘導を示しています。

5分、IPでの内300ミリグラム/キログラムのピロカルピンのジェクションは、立毛、流涎、赤い目、震え、顔自動化機能などの行動に深刻なコリン作動性効果を誘導します。 ECOG全身発作が( 図1B、青いボックス)を発生するまで、これらの行動の徴候の重症度は徐々に増加します。 SEはまた、全般てんかん( 図1B、赤いボックス)の後に生じます。これらの結果は、13から採用されています。我々の結果は、300ミリグラム/キログラムのピロカルピンのIP注射は、ECOG-文書化全般てんかんとSEを誘導するための信頼できる方法であることを示唆しています。しかし、SEの現像後の生存率は15%と20%の間です。マウスにおけるてんかんのPTZ-キンドリングモデルは、自発的かつ反復的全般てんかんを開発するために使用されます。 0.035ミリグラム/グラムマウス体重の用量でPTZは、IP( 例えば、暗期、ZT13の始まり)一日おきに特定のZT点で注入され、各注入は、1日間隔で区切られています。何てんかんはありませんPTZの1 回目の注射後の暗期中に発見されたECoGs( 図1C:a)もしくは以下の暗期の間に、それは注射のためのオフ日( 図1C:b)は。有意なてんかん活動は、2位、3 、及び4 回目の注射(データはここには示されていない)後に発見されていません。自発的かつ反復的に全般てんかん(:eおよびA ' 図1C)と一緒に、:しかし、てんかん様ECoGsは、PTZ注射番目 5(cおよびd 図1C)後に誘導されています。

我々は、プロトコルに記載された基準に従って、覚醒、ノンレム睡眠、レム睡眠に警戒状態を分類しました。覚醒は、視覚的に低振幅と周波数の高い非同期化ECoGsによって採点されます。デルタ周波数帯域において電力密度値(0.9 - は4Hz)が中のものよりも一般的に大きいですシータ周波数帯域 - 覚醒時(6~9 Hz)であり、より高い周波数スペクトル(> 10ヘルツ)が見出されます。覚醒は、EMGと運動活性の多くの高振幅を示します。また、皮質温度が徐々に上昇していくときに覚醒へのノンレム睡眠やレム睡眠のいずれかから警戒状態遷移( 図2)。ノンレム睡眠は、高振幅、低周波数の同期ECoGsことを特徴としています。出力密度値は、デルタ周波数帯域において支配的です。 EMG振幅は徐々に低下し、全く運動活性は、ノンレム睡眠中に展示されていません。皮質温度が低下するとノンレム睡眠中に覚醒から警戒状態遷移( 図2)。 REM睡眠時に、ECOG波は振幅が低減され、非同期化され、優勢EEGパワー密度はθ周波数内で発生(6.0 - 9.0ヘルツ)、EMG活性は最低、相性本体単収縮が観察され、皮質の温度が急激に上昇します( 図2)。

EAは、高頻度刺激(100 Hz)で、または低頻度刺激(10 Hz)でのいずれかでFengchiのツボを刺激するときに我々は、てんかん活性にEAの明確な効果を実証しました。以前に(B)に述べたように、図3Aに、左CEAへのピロカルピンの0.5μL(2.4ミリグラム/μL)のマイクロインジェクションは、焦点TLEを誘導します。しかし、二国間Fengchiのツボの100 HzのEAは、ピロカルピン誘発性てんかん様ECoGs(C)を悪化させます。これらの結果は、8から適合されます。これとは対照的に、二国間Fengchiの10 HzのEAは、ピロカルピン誘発性てんかん様ECoGs(C:図3B)を抑制することができます。これらの結果は、7から適合されます。暗サイクル( 図4Aおよび4B):左CEAへのピロカルピンの投与は、12時間の光の光期間中にノンレム睡眠を抑制する。 AF時のノンレム睡眠の減少暗期の東西時間は、麻酔の影響が主な要因であり、EA 15の直接的な影響はありません。 100 HzのEAの適用はさらにノンレム睡眠( 図4A)のピロカルピン誘発性の抑制を劣化させます。これとは対照的に、二国間Fengchiのツボの10-HzのEAは、暗期および光を遮る期間( 図4B)の間にノンレム睡眠のピロカルピン誘発性の還元の間にノンレム睡眠自体を増加せます。これらの結果は9から採用されています。

図1
図1:ラットとマウスの異なるてんかんモデル。 Aは、ラットで焦点TLEを示しています。 Bは、ラットでのSEと全般てんかんを解明します。 Cは、自発的および再発性てんかん様ECoGsを示しています。 (A)(A)、(B)、(C)、(D)、(E)及び(F)Eを表しますそれぞれ左前頭葉、左頭頂、左後頭部、右前頭、右頭頂葉、右後頭部皮質、上に配置された電極から記録されたCOG信号。 (B)の矢印は、ピロカルピンのIP注射を示しています。灰色のボックス(A)は、ピロカルピン注射の前に得られたベースラインECoGsを示しています。青いボックスは、全般てんかんのてんかん様ECoGsを示しています。赤いボックス(b)はSEを表します。 (a)及び(b)は、(A ')および(b')に示されているから抽出ECOG信号。 (C)(A)は、第1 PTZ注射後に取得ECoGsを示し、(b)はECoGsマウスにおける1 回目 PTZ注射後の日に記録表します。てんかんの活動は、その後5 回目の PTZ注射(c)および後に発生します。 PTZ注射番目の 5日後に起こる再発性てんかんECoGsは、(d)に示されています。再発性てんかんECoGsは5 回目の PTZ注入は(e)に示されている5日後に記録しました 。ボトム(A ')の図は赤い箱から抽出ECoGsを表します。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

図2
図2:覚醒、NREM睡眠とレム睡眠:警戒状態の分類。ラットの警戒状態がECoGs、ECOGスペクトル、筋電図、運動活性、および皮質の温度からのパラメータによって分類されています。皮質温度が適用されない以外は、マウスの警戒状態は、同じパラメータによって特徴付けられます。
この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

PLOAD / 54896 / 54896fig3.jpg "/>
図3: てんかん上の100 Hzから10 HzのEAの効果。 (A)において、第一のECOGトレースは、ベースラインECoGs(A)を実証します。左CEAへのピロカルピンのマイクロインジェクションは、焦点TLE(B)を誘導します。二国間Fengchiのツボで100 HzのEAの適用は、てんかん様ECoGs(c)を悪化させます。 (B)において、第一のECOGトレースは、ベースラインECoGs(A)を実証します。左CEAへのピロカルピンのマイクロインジェクションは、焦点TLE(B)を誘導します。二国間Fengchiのツボで10 HzのEAの適用は、てんかん様ECoGs(c)を抑制することができます。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

図4
図4: エピ上の100 Hzから10 HzのEAの効果lepsy誘発性睡眠混乱。左CEAにピロカルピンのマイクロインジェクションによって誘発される(A)フォーカルTLEは、光の期間中にノンレム睡眠を減少させます。 100-HzのEAは、さらにてんかん誘発性睡眠障害を悪化させます。 (B)10-HzのEAブロックの適用光期間中のノンレム睡眠のてんかん誘発性の減少。さらに、10-HzのEAは、暗期中にノンレム睡眠を強化します。値は平均±SEMとして表されます。黒丸は、ピロカルピンのマイクロインジェクション前に得られた値を示し、白丸は、ピロカルピン注射後に取得したデータを示し、白三角はEA刺激後に得られた値を示しています。黒いバーは、12時間の光の暗期表す:暗サイクルを、白バーは明期を示しています。 * 100-HzのEA +ピロカルピン群と対照(ANOVA、P <0.05)と#の間に統計的な差は統計的differencを示して表し10 HzのEA +ピロカルピングループとピロカルピングループ(ANOVA、P <0.05)との間で電子。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

実現可能なてんかん動物モデルを選択すると、各実験の目的のために不可欠です。私たちの目標の一つは、てんかん抑制に対するEAの影響を明らかにすることです。 EAは、てんかんに治療効果を示すことができるし、古代中国の文献に記載されている代替医療です。しかし、それを証明する科学的証拠の欠如があります。てんかんに対するEAの効果を決定するために、我々は主に軽度の焦点てんかん上ではなく、重度の全身発作またはSEでEAの影響に焦点を当てました。我々の以前の研究では、低周波数(10ヘルツ)と高周波(100 Hz)でEAピロカルピン誘発性の焦点TLEと焦点TLE-誘発睡眠の中断7-上の二国間Fengchiのツボの効果を実証するために、ラットにおける焦点TLEモデルを使用しました9。我々の結果は、100-HzのEAが焦点TLEとTLE誘発性睡眠障害の両方を悪化させるのに対し、二国間Fengchiのツボの10-HzのEAは、焦点TLEと睡眠の中断を抑制することを示唆しています。別の例では、TでありますO特に全身発作やSE、難治性てんかんに対する脳深部刺激の効果を示します。我々は、高域と低強度の電流で視床(ANT)の前核の一方的な脳深部刺激が正常全般てんかんの再発とSE 13の期間を阻害することを決定しました。我々はまた、自然発生的に開発し、再帰的にマウスでPTZ-キンドリングの方法を用いて、てんかんを一般化。このPTZ-キンドリングモデルは、てんかんの研究に広く適用することができます。これらのてんかんのモデルを確立するための重要なステップは、適切な用量の使用です。 CEAへのピロカルピンのより多量のマイクロインジェクションは、二次全般てんかんを開発することがあります。以上300ミリグラム/キログラムピロカルピンのIP投与は、一般的なてんかんとSEを誘発します。 SEが開発した後、しかし、ほとんどのラットは生存しませんでした。また、より低い280ミリグラム/キログラムが正常に一般化てんかんとSEを確立できませんでした投与量。この同じSItuationはPTZ-キンドリングモデルで発生します。 PTZの大用量は、SEが発生することがありますが、多くのマウスが生存しません。これとは対照的に、PTZの低用量は、自然に再発てんかんを確立するために、より多くの注射を必要とします。

ラットとマウスで異なる警戒状態の分類は、主にヒトから記録ポリグラフの特徴に基づいています。私たちは、ECOG、分光分布、EMG、運動活性、および皮質温度から記録された値によって睡眠覚醒作用を分析するためにプロトコルを変更しました。覚醒とノンレム睡眠から記録ECOG、分光分布、EMG、運動活性、および皮質の温度特性は、人間から取得したものと同様です。しかし、レム睡眠は、げっ歯類に分類することが時々曖昧かつ困難です。ほとんどの文献は、そのECoGsと筋電図によるとげっ歯類のレム睡眠を説明します。 ECoGsのシータ周波数帯域が支配的であるとEMGの筋肉の緊張が最も低いときにラットまたはマウスaはレム睡眠中に再。スコアリングREM睡眠の信頼性を高めるために、我々はさらに、自発運動および皮質温度を記録しました。相性ボディ攣縮が観察され、ラットはレム睡眠を入力すると、皮質温度が急激に上昇します。自発運動及び皮質温度は、ECoGs、分光分布、および筋電図に加えて、レム睡眠分析のための精度を高めます。含まれている複数のパラメータは、より正確な分類を行うことができます。

研究者が手動鍼やEA実験を行うときに、2つの主なポイントは、常に批判されています。最初の問題は、研究者は、ラットでツボを識別して確認する方法です。ヒトでの子午線システムとツボが十分に確立されている、しかし、げっ歯類で確認子午線システムとツボマップはありません。従って、齧歯類の対応するツボの局在は、相対的な解剖学的位置に応じて決定されます。例えば、Fengchiのツボ(GB 20)があります筋の胸鎖乳突筋の上部およびヒトにおける僧帽筋の間のくぼみに位置しています。私たちは、げっ歯類では、関連する解剖学的位置を発見し、さらに低皮膚インピーダンスを測定することによって、それを確認しました。経穴のインピーダンスは、周囲の皮膚よりも低いです。第二の問題は、鍼治療の用量は実験中に制御されている方法です。手動鍼を実験に使用されている場合、けいれん針の操作は、すべての操作のために同じ方法で同じ研究者によって行われるべきです。 EAは、一貫性のある刺激周波数と電流の強さを保証するように、EAが適用される場合鍼治療の線量を制御することが容易になるだろう。さらに、鎮痛で、EAはマニュアル鍼16以上の効果を発揮します。しかし、同じツボに低周波と高周波刺激によるマニュアル鍼治療およびEAは、異なる根底を意味することができる、異なる脳領域17を活性化することできまする仕組み。

要約すると、本論文では、焦点TLE、全般てんかん、SE、および自発的かつ反復的に全般てんかんを含むラットとマウスのいくつかの化学物質誘発性てんかんモデルを示しています。また、ラットにおける伝統的かつ迅速な電気キンドリングてんかんモデルを確立しました。読者には、電気・キンドリングモデルに興味を持っている場合、我々はまた、ラットおよびマウスで睡眠覚醒作用を分析するための基準を提供する参考文献4および5を参照してください。てんかん活動と睡眠に対するEAの効果を評価するために、我々はラットで関連するツボをローカライズする方法について説明し、どのように鍼治療を行うために、我々はまた、てんかんおよびてんかん誘発性睡眠の中断に対するEAの効果を実証するために、いくつかの代表的な結果を提示します。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Drugs
Zoletil Virbac 50 mg/kg i.p.
pilocarpine Sigma-Aldrich P6503 300 mg/kg i.p.; 1.2 mg microinjection
PTZ Sigma-Aldrich P6500 0.035 mg/mouse
polysporin Pfizer
Surgery
ECoG electrode Plastics One E363/20 screw electrode for rats
Pedestal Plastics One MS363
Cannula Plastics One C315G/spc
Thermistor Omega Engineering 44008
Dental acrylic Tempron
Stereotaxic Instrument Stoelting Dural arms
Recording equipments
ECoG amplifier Colbourn Instruments V75-01
A/D Board National Instruments NI PCI-6033E
Infrared-based motion detectors Biobserve GmbH custom-made
ICELUS G-System
AxoScope 10 Software Molecular Devices
Acupuncture needs
Stainless needles Shanghai Yanglong Medical Articles Co. 32 gauge x 1”
Functions Electrical Stimulator I.T.O., Japan Trio 300
AcuPen Lhasa OMS Pointer Excel II

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Regesta, G., Tanganelli, P. Clinical aspects and biological bases of drug-resistant epilepsies. Epilepsy Res. 34 (2-3), 109-122 (1999).
  2. Malow, B. A., Bowes, R. J., Lin, X. Predictors of sleepiness in epilepsy patients. Sleep. 20 (12), 1105-1110 (1997).
  3. Stores, G., Wiggs, L., Campling, G. Sleep disorders and their relationship to psychological disturbances in children with epilepsy. Child Care Health Dev. 24 (1), 5-19 (1998).
  4. Yi, P. L., Tsai, C. H., Lin, J. G., Lee, C. C., Chang, F. C. Kindling stimuli delivered at different times in the sleep-wake cycle. Sleep. 27 (2), 203-212 (2004).
  5. Yi, P. L., Chen, Y. J., Lin, C. T., Chang, F. C. Occurrence of epilepsy at different zeitgeber times alters sleep homeostasis differently in rats. Sleep. 35 (12), 1651-1665 (2012).
  6. Bazil, C. W. Sleep and epilepsy. Semin Neurol. 22, 321-327 (2002).
  7. Yi, P. L., Lu, C. Y., Jou, S. B., Chang, F. C. Low frequency electroacupuncture suppress focal epilepsy and improves epilepsy-induced sleep disruptions. J Biomed Sci. 22, 49 (2015).
  8. Yi, P. L., Lu, C. Y., Cheng, C. H., Tsai, Y. F., Lin, C. T., Chang, F. C. Activation of amygdala opioid receptors by electroacupuncture of Feng-Chi (GB20) acupoints exacerbates focal epilepsy. BMC Complement Altern Med. 13, 290 (2013).
  9. Yi, P. L., Lu, C. Y., Cheng, C. H., Tsai, Y. F., Lin, C. T., Chang, F. C. Amygdala opioid receptors mediate the electroacupuncture-induced deteriortation of sleep disruptions in epilepsy rats. J Biomed Sci. 20, 85 (2013).
  10. Paxinos, G., Watson, W. The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates (4th edition). , Academic Press. San Diego. (1998).
  11. Siu, F. K. W., Lo, S. C. L., Leung, M. C. P. Electro-acupuncture potentiates the disulphide-reducing activities of thioredoxin system by increasing thioredoxin expression in ischemia-reperfused rat brains. Life Sci. 77 (4), 386-399 (2005).
  12. Yi, P. L., Tsai, C. H., Lin, J. G., Liu, H. J., Chang, F. C. Effects of electroacupuncture at 'Anmian' (extra) acupoints on sleep activities in rats: the implication of the caudal nucleus tractus solitaries. J Biomed Sci. 11 (5), 579-590 (2004).
  13. Jou, S. B., Kao, I. F., Yi, P. L., Chang, F. C. Electrical stimulation of left anterior thalamic nucleus with high-frequency and low-intensity currents reduces the rate of pilocarpine-induced epilepsy in rats. Seizure. 22 (3), 221-229 (2012).
  14. Chang, F. C., Opp, M. R. Blockade of corticotropin-releasing hormone receptors reduces spontaneous waking in the rat. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 275 (3), Pt 2 793-802 (1998).
  15. Cheng, C. H., Yi, P. L., Lin, J. G., Chang, F. C. Endogenous opiates in the nucleus tractus solitaries mediate electroacupuncture-induced sleep activities in rats. Evid Based Complement Alternat Med. 2011, 159209 (2011).
  16. Tsui, P., Leung, M. C. Comparison of the effectiveness between manual acupuncture and electro-acupuncture on patients with tennis elbow. Acupunct Electrother Res. 27 (2), 107-117 (2002).
  17. Napadow, V., Makris, N., Liu, J., Kettner, N. W., Kwong, K. K., Hui, K. K. Effects of electroacupuncture versus manual acupuncture on the human brain as measured by fMRI. Hum Brain Mapp. 24 (3), 193-205 (2005).

Tags

行動、問題118、鍼治療、皮質脳波(ECOG)、てんかんモデル、睡眠、定位手術、ラット、マウス
鍼治療によりラットとマウスにおけるてんかんElectrocorticograms(ECoGs)の操作とスリープ
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Yi, P. L., Jou, S. B., Wu, Y. J.,More

Yi, P. L., Jou, S. B., Wu, Y. J., Chang, F. C. Manipulation of Epileptiform Electrocorticograms (ECoGs) and Sleep in Rats and Mice by Acupuncture. J. Vis. Exp. (118), e54896, doi:10.3791/54896 (2016).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter