Summary
Hücre dışı veziküller (EVs) kanser kaynaklı direkt enjeksiyon kemik iliği tümör ilerleme destekleyen yeniden programlama için yol açar; Ancak, bu etkinin hangi hücrelerin aracılık belli değildir. Burada, biz EV-aracılı tümör Mezenkimal Kök hücre (MSC) etkileşimleri vivo içindearaştırmak için adım adım bir protokol için EV eğitimli MSCs metastaz içinde çok önemli bir rol açığa tanımlamak.
Abstract
Tümör microenvironment içinde ikamet veya işe Mezenkimal Kök hücre (MSCs) birden çok kanser türü Malign ilerlemesinde katkıda bulunur. Belirli çevre sinyalleri etkisi altında bu yetişkin kök hücreler lider hızlandırılmış tümör büyüme ve metastaz parakrin arabulucu serbest bırakabilirsiniz. Tümör ve MSCs arasında çapraz karışma tanımlama kanser ilerleme yatan mekanizmaları anlamak ve terapötik müdahale için yeni hedefler belirlemek için birincil önem taşımaktadır.
Kanser hücrelerinin derinden hedef hücreler tümör microenvironment veya uzak sitelerdeki davranışını etkileyebilir ekstraselüler veziküller (EVs), yüksek miktarlarda üretmek. Tümör EVs fonksiyonel biomolecules inflamatuar RNA'ların ve stromal hücreler kanser hücrelerinin metastatik davranış geliştirmek için veya önceden metastatik niş oluşumunda katılmak için eğitmek olabilir (onko) proteinler, dahil olmak üzere, alın. Bu makalede, belirli tümör ve Mezenkimal Kök hücreler arasındaki EV-aracılı crosstalk değerlendirilmesi sağlayan bir preklinik kanser fare modeli geliştirilmesi açıklar. İlk olarak, arıtma ve tümör salgılanan EVs karakterizasyonu ve EV içselleştirilmesi MSCs tarafından değerlendirilmesi açıklanmaktadır. Biz o zaman yapmak MSC sitokin ifade profil İLETİMLERİNİZE değerlendirmek için çok katmanlı bir boncuk tabanlı immunoassay kullanımı kanseri EVs tarafından indüklenen. Son olarak, biz bir tümör-MSC etkileşim beyannamedir osteosarkom kollarındaki orthotopic xenograft fare modeli nesil göstermek ve EV eğitimli MSCs tümör büyüme ve metastaz oluşumu için katkı göstermek.
Bizim model nasıl kanser EVs tümör destekleyen bir ortam şekli tanımlamak ve abluka tümör ve MSCs arasındaki EV-aracılı iletişim kanser ilerleme engeller olup olmadığını değerlendirmek için fırsat sağlar.
Introduction
Tümör microenvironment metastaz oluşumu ve tedavi1direnç gelişimi de dahil olmak üzere tumorigenesis ve kanser progresyon çoğu, hepsi değilse de, özelliği aktif olarak katılmaktadır. Bu diseksiyon tümör niş içinde meydana gelen karmaşık tümör-stroma etkileşimlerin izin preklinik orthotopic kanser fare modelleri gerekliliğini vurguluyor.
Tümör microenvironment birçok hücresel bileşenleri arasında Mezenkimal Kök hücre (MSCs) kuvvetle kanser meme kanseri, prostat kanseri, Beyin tümörleri, Multipl Miyelom ve osteosarkom2 gibi birden çok kanser türü ilerlemesinde katkıda ,3,4,5,6,7. MSCs kemik iliği, yağ dokusu, plasenta, göbek kordon kanı ve diğerleri de dahil olmak üzere çeşitli yetişkin ve fetal dokularda,8,9bulunan multipotent kök hücreler vardır. İnflamatuar sinyaller kanser üretilen cevaben, MSCs tümör siteleri doğru geçiş, tümör microenvironment dahil etmek ve sonuçta kanser destek hücreleri10ayırt etmek. Bu kanser ilişkili MSCs temel faktörler (Yani, büyüme faktörleri, kemokinler, sitokinler ve immünsupresif arabulucu) tümör hücreleri hem de çevresindeki stroma2, hareket tümör ilerleme sağlamak 3 , 11 , 12 , 13. kanser ilişkili MSCs tümör teşvik etkileri çok sayıda kanser modellerinde araştırdık iken, hangi tarafından tümör hücreleri yeniden programlamak kanser teşvik niş şekillendirmek için MSCs mekanizmalar kötü anlaşılır. Burada özellikle kemik kanseri hücreleri ve MSCs pro tumorigenic etkileşimini ekstraselüler veziküller (EVs) yolu ile çalışma sağlar orthotopic xenograft modelinin üretimi açıklayın.
EVs tümör ve stromal hücreler14arasındaki hücreler arası iletişim çok önemli arabulucu vardır. EVs kökenli proteinler, lipidler ve gen düzenlemesinde de dahil olmak üzere hücrenin fonksiyonel biomolecules taşırlar. Ekstrasellüler alanda serbest sonra bu veziküller çevreleyen hücreleri tarafından alınabilir veya kan veya lenf dolaşımını üzerinden uzak sitelere yapılan ve hedef hücre davranış derinden etkileyebilir. 15 , 16 , 17 Mesela kanser EVs stromal fibroblastlar tarafından alımını angiogenez destekleyen ve tümör büyüme vivo içinde18,19, endotel tarafından içselleştirilmesi hızlanan myofibroblast ayrımında neden olabilir hücreler tümör angiogenez teşvik etmek ve vasküler geçirgenliği16,20artırmak ve bağışıklık hücreleri ile etkileşim antitümör bağışıklık yanıtı21bastırılması için neden olabilir.
Son zamanlarda biz, osteosarkom, tümör hücreleri tumorigenic pro ve pro-metastatik fenotip elde etmek için MSCs sor EVs yüksek miktarda serbest bir kollarındaki orthotopic xenograft fare modeli kullanarak gösterilmiştir. Bu efekt ("Yüksek lisans eğitim" anılacaktır) MSC sitokin ifade profil dramatik bir değişim kaynaklanmaktadır ve bir terapötik İnterlökin-6 reseptörü (IL-6R) antikor7yönetimi tarafından engellenebilir. Çalışmalarımız kanser EVs MSC davranış, böylece microenvironment hedefli yaklaşımlar osteosarkom ilerleme durdurmak için bir gerekçe sağlayan çok önemli modülatörler olduğunu gösterdi. Burada, EV-aracılı tümör-MSC etkileşim içinde vivoaraştırmak için adım adım bir protokol açıklar. Bu model için tasarlanmıştır: 1) özellikle kanser EV kaynaklı değişikliklere MSC davranışının tümör microenvironment define, 2) nasıl bu etkileşim katkıda kemik tümörü büyümesi ve metastaz oluşumu ve 3) çalışma için engel olup olmadığını değerlendirmek EV-aracılı crosstalk vivo içinde kanser ilerleme engeller.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
İnsan yağ dokuları Mezenkimal Kök hücre izolasyon için kurumsal Etik Komitesi tarafından onaylandıktan sonra (Hilversum, Hollanda) Tergooi Hastanesi plastik cerrahi bölümünden elde edilen ve aydınlatılmış onam yazılı. GFP pozitif adipose MSCs cerrahi Bilimler ve tıp bölümü çocuklar ve yetişkinler (üniversite, Modena ve Reggio Emilia) için elde edilmiştir.
Hayvan deneyleri hayvan deney üzerinde Hollanda kanunları uyarınca gerçekleştirilen ve protokol hayvan deney VU Üniversitesi Tıp Merkezi, Amsterdam, Hollanda Komitesi tarafından kabul edildi.
1. hücre dışı veziküller tümör salgılanan yalıtım.
- 70.000 x g gecede, FBS (14 saat), fren yok, son derece hareketli bir kova rotor kullanarak 4 ° C'de centrifuging tarafından EV tükenmiş Fetal sığır Serum (FBS) hazırlamak (1 h yavaşlama için beklemek). Dikkatle süpernatant (EV tükenmiş FBS) Pelet bozmadan toplamak. EV tükenmiş FBS 0,22 µm filtre ile filtre.
- Iscove'nın modifiye Dulbecco'nın orta (IMDM) ile 100 U/mL penisilin, 100 µg/mL streptomisin, 2 mM glutamin ilave tarafından EV tükenmiş kültür ortamı hazırlamak (1 x P/S/G) ve % 5 FBS EV boşaldı.
- 3 x 106 143B hücreleri 175 cm2 şişeler içinde tohum ve onları EV tükenmiş kültür orta bir kuluçka 37 ° C ve % 5 CO2kültür. Hücreleri (genellikle sonra 36 h 48 h) % 80-90 birleşmesi olduğunda süpernatant EV-yalıtım için 8 x 175 cm2 şişeler (28 mL/şişesi) toplamak.
- Hücreleri ve hücre artıkları (önceki spin her zaman süpernatant centrifuging) farklı aralıklarla aşağıdaki protokolüne göre kaldırmak için hücre süpernatant önceden temizleyin:
- Süpernatant iki kere vasıl 500 x g 10 dk santrifüj kapasitesi.
- İki kez 15 dakika 2000 x g de süpernatant santrifüj kapasitesi.
- Süpernatant iki kez, 10.000 x g 30 dk santrifüj kapasitesi.
- Tüm centrifugations maksimum hızlanma ve yavaşlama hızı ayarları ile 4 ° C'de gerçekleştirin. Her adımdan sonra toplamak dikkatli bir şekilde geride bırakarak yaklaşık 1 mL EV içeren süpernatant. 1.5 veya mağaza adım önceden temizlenmiş orta-80 ° c kadar EV yalıtım şartına hemen devam edin.
- EVs önceden temizlenmiş şartına orta bir kez 70.000 x g 1 h için centrifuging tarafından izole, fren, son derece hareketli bir kova rotor kullanarak ultra santrifüj tüpleri (son hacim 38,5 mL/tüp) 4 ° C'de yavaş.
- Dikkatle yaklaşık 1 mL arkasında, resuspend EV içeren granül içinde kalan cilt bırakarak süpernatant, kaldırmak, onları bütün bir ultracentrifuge tüpte havuz ve fosfat tamponlu tuz çözeltisi (PBS) tam tüp dolum kadar eklemek (son hacim 38,5 mL).
- Bir kez daha, 70.000 x g santrifüj fren olmadan 4 ° C'de 1 h için (1 h yavaşlama için beklemek). Dikkatle süpernatant Pelet bozmadan kaldırmak ve 100-200 µL geride.
- EV-Pelet resuspend ve son 200 µL için PBS (tüm EV-izolasyonların için standart) ile ses seviyesini. EV hazırlık hemen kullanın veya-80 ° C'de kullanım22kadar saklayabilirsiniz.
Not: EVs-80 ° C'de 6 ay saklanabilir
2. EV karakterizasyonu.
Arıtılmış EVs transmisyon elektron mikroskobu (TEM)23tarafından görüntülenmeyecektir.
- %4 paraformaldehyde fosfat tampon eşit bir birimdeki Mix EV preps.
- Kat 200 mesh Formvar karbon kaplı nikel TEM Izgaralar ile EV süspansiyon için oda sıcaklığında 20 min 5 µL.
- EV örnekleri üzerinde TEM Izgaralar % 1 oxazolidin 0.1 M fosfat tampon (pH 7,0), uranyl oksalat (pH 7,0) ile kontrast ile bağlamak ve % 4 uranyl asetat ve % 2 metil selüloz buz üzerinde 1:9 oranında bir karışımı embed.
- Paslanmaz çelik döngüler ile ızgaraları kaldırmak ve uygun bir metil selüloz film kalınlığı sağlamak için filtre kağıdı ile aşırı sıvı leke.
- Kurutma, Izgaralar transmisyon elektron mikroskobu ile inceleyin ve karşılık gelen görüntü yazılımı birleştiğinde bir dijital kamera ile çekim.
3. eğitim MSCs tümör kaynaklı EVs tarafından.
- Alfa-en az gerekli orta (alfa-MEM) % 4 EV tükenmiş insan trombosit Lysate (hPL)24, heparin (10 U/mL) ve 1 İlave tarafından MSC kültür ortamı hazırlamak x P/S/G.
Not: EV tükenmiş hPL 1.1 bölümünde açıklanan yordamı uygulamadan elde edilir. - Tohum 1.4 x 106 yağ MSCs 75 cm2 şişe elde edilen ve onları bir kuluçka 37 ° C ve %5 CO2 EV tükenmiş MSC-kültür ortamında kültür.
- Ne zaman hücre % 70 izdiham ulaşmak, 143B osteosarkom - eklemek veya insan fibroblast (hf) kontrol-EVs, 10 µL EV hazırlık/cm2 / kültür şişesi. 24 saat boyunca kuluçkaya ve ek 6 saat EVs aynı miktarda ekleyin. Not: Dulbecco'nın modifiye kartal orta (DMEM içinde) insan fibroblast kültürlü %10 FBS ve EVs 1 bölümünde açıklandığı gibi izole.
- MSC süpernatant toplamak, 1 x 500 x g (ile maksimum hızlanma ve yavaşlama hızı ayarları) 4 ° C'de 5 dakika santrifüj kapasitesi, yeni bir tüp aktarın ve temizlenen süpernatant gelecekteki sitokin analiz (Bölüm 5) etkinleştirmek için-80 ° C'de depolayın.
- İçin in vivo deneyler (Bölüm 6), 3.1-3.3 bölümlerinde açıklandığı gibi GFP pozitif MSCs25 eğitmek hücreleri toplamak ve onları tutmak hücrelere 100 µL. buz başına 106 hücre son bir konsantrasyon enjeksiyon kadar PBS içinde resuspend.
4. EV içselleştirilmesi tahlil.
EV alımı MSCs tarafından görselleştirmek için üreticinin protokol sonrası EVs bir yeşil-floresan bağlayıcı boya (GFLD) (ticari olarak mevcut) etiket:
- Kısaca, eritici 180 µL 200 µL EV Hazırlık'a ekleyin. GFLD seyreltik 1 µL seyreltici 50 µL içinde boya ve sulandırılmış boya 20 µL seyreltilmiş EV Hazırlık'a ekleyin.
- Yavaşça pipetting tarafından mix ve karanlık oda sıcaklığında 3 min için kuluçkaya.
- 5 mL %0,1 BSA PBS içinde ekleyin, ultra santrifüj tüpleri için aktarmak ve tüp PBS (son hacim 38,5 mL/tüp) ile doldurun.
- 1 x 1 h fren olmadan 4 ° C'de için 70.000 x g, santrifüj kapasitesi (1 h yavaşlama için beklemek). Dikkatle süpernatant kaldırmak ve etiketli EV Pelet 200 µL son bir hacim içinde resuspend (PBS ile ses seviyesini).
- MSC kültür etiketli EVs eklemek veya bunları-80 ° C'de saklamak Gecede kuluçka sonra vezikül içselleştirilmesi Floresans mikroskobu tarafından değerlendirmek ve Akış Sitometresi7.
5. MSC sitokin ifade profil değerlendirilmesi.
- İnterlökin-8 (Il-8) Çoklu miktar için İnterlökin-1β (IL-1β), İnterlökin-6 (Il-6), İnterlökin-10 (IL-10), tümör nekrozis faktör (TNF) ve İnterlökin - 12p 70 (IL - 12p 70) protein düzeyleri Master programı içinde orta şartına (bkz. Adım 3.4), kullanmak bir üreticinin yönergelerini izleyerek insan inflamatuar sitokinlerin için piyasada bulunan sitometrik boncuk dizisi (CBA).
- Kısaca, antikor Birleşik yakalama boncuk mix ve onları tüm tahlil tüpler için ekleyin. Sitokin standart dilutions ya da klimalı orta örnekleri tüpler için ekleyin.
- Algılama reaktif ekleyin ve RT. 3 saat kuluçkaya
- Boncuk sağlanan yıkama solüsyonu ile yıkayın. Akış Sitometresi kullanarak örnekleri ölçmek ve üreticinin yönergelerine göre verileri çözümleyebilirsiniz.
6. nesil osteosarkom bir Orthotopic Xenograft fare modeli.
- Deneysel yordamları başlatmadan önce en az bir hafta için parkenizin altı-hafta-yaşlı, kadın, korele çıplak-Foxn1nu fareler sağlar.
- Bir gün önce cerrahi işlem ve peri-operatif analjezi olarak Parasetamol içme suyu ekleyin. "Çocuklar için Parasetamol çözüm" seyreltik ( Tablo malzemelerigörmek) 2 mg/mL nihai bir konsantrasyon almak için su ile. 150 mL/kg bir ortalama su alımı dayalı/gün, ve bir ortalama vücut ağırlığı 20 g, bu doz 6 mg doz ulaşmak/fare için yeterli/gün (300 mg/kg/gün).
- Analjezik tedavi operasyon sonrasında veya daha uzun hayvanlar göstermek işaret-in acı 24 saat kadar devam edin.
- Cerrahi işlem gününde, 300 x g 10 min için de centrifuging tarafından kültürlü luciferase pozitif (Fluc) 143B hücreleri (daha önce lentiviral iletim tarafından oluşturulan) toplamak ve 2 x 105 hücre/µL PBS içinde bir konsantrasyon hücreleri resuspend. Buz üzerinde hücre süspansiyon için 6 saat tutun.
- Otoklav cerrahî donanımlar. Hazırlamak ve çalışma alanı temiz ve steril makas ve cımbız steril sayfalarda yer. 20 dk önce cerrahi işlem (6,8. adım) enjekte hayvanlar subkutan buprenorfin (0,05 mg/kg, % 0,9 serum içinde seyreltilmiş) ile 0.5 mL insülin şırınga (29'lik iğne) kullanarak analjezik.
- Her hayvan anesthetizing önce 10 µL şırıngaya doldur konsantre (Fluc) 143B hücre süspansiyon en az 1 µL ile (bkz. Adım 6.4).
- Hayvan isoflurane inhalasyon anestezi (oksijen 2-%3) ile anestezi. Anestezi düzeyini hayvan ayak-pinching tarafından kontrol edin. Merhem gözlerde kuruluk anestezi sırasında önlemek için geçerli hayvan, derin anestezi, Yani, pinching için tepki vermez.
- Sırtında bir anestezi maskesi kafasından ve operatör doğru ayaklı hayvan getirin. Sol diz esnek. % 70 etanol ile cildinizi silin ve lidokain (% 2) ile pamuk bahşiş yerel analjezik olarak 3 kez uygulayın.
- Steril cerrahi bıçak tibia ortaya çıkarmak için sadece diz altında deri üzerinde küçük bir insizyon attım (yaklaşık 5 mm) yapmak için kullanın. Bir iğne deliği Tibia, 0.8 mm mikro bükülme matkap kullanarak diz altında yaklaşık 2 mm matkap. Her iki tibia cortices ayrıntısına değil dikkatli olun.
- 1 µL hücre süspansiyon (yaklaşık 2 x 105 hücreleri) yavaş yavaş (yaklaşık 5 saniye içinde) 26'lik iğne kullanarak delik enjekte. Bir damlacık doku yapıştırıcısı geri tepme süspansiyon önlemek için o deliği kapatın.
- Cilt monofilament dikişler ve doku tutkal bir damla ile kapatın. İyi ısıtmalı ortamında (kullanım a ısı lamba) hayvan kurtarmak izin. Onlar sternal recumbency korumak için yeterli bilinci yerine kadar hayvanları sahipsiz bırakmayın. Sadece hayvanlar tam anesteziden kurtarıldı sonra onları kendi kafesleri için dönün.
- İki gün sonra tümör aşılama, enjekte eğitimli EV veya saf GFP pozitif MSCs (100 µL PBS, 106 hücrelerde bkz: Adım 3.5) intravenöz 0.5 mL insülin şırınga fareler kuyruk ven ile.
- Tümör büyüme26 haftada iki kez Imaging bioluminescence tarafından takip. Bu amaçla, fareler ı.p. ile 150 µL enjekte D-biyoluminesans (30 mg/mL) bir insülin şırınga ile. On dakika sonra enjeksiyon, hayvanlar görüntüleme sistemi bioluminescence getirin ve tümör hücreleri tarafından oluşturulan foton-flux ölçmek.
- Buna ek olarak, birincil kemik tümörü bir kumpas ile çapını ölçün. Tümör hacminde (mm3) Genişlik uzunluğu2 x 0.5 x tarafından tahmin edilmektedir.
- Not: İnsancıl bitiş noktaları tümör çapı tanımlanan > 15 mm veya kilo kaybı > % 15.
7. akciğer nodül numarası değerlendirilmesi
- Hayvanlardan biri (yaklaşık 3-4 hafta içinde) 6,14. adımda tanımlanan insana ilişkin son nokta ulaştığında, deneme bitirmek ve toplamak ve tüm ilgili dokuları analiz.
- Euthanization önce 10 dk enjekte 150 µL D-biyoluminesans (30 mg/mL) 0.5 mL insülin şırınga ile.
- İsoflurane inhalasyon anestezi hayvanlarla anestezi (bkz. Adım 6,7). Anestezi derinliği tepkiler fare parmak pinching yokluğu ile onaylayın. Fareler servikal çıkığı27tarafından ötenazi.
- Akciğer, karaciğer, dalak ve böbreklerin sterilize makas ve cımbız kullanarak toplamak. Organları PBS kan izlerini kaldırmak ve bir petri koymak onları yıkayın.
- Petri kabına organları ile görüntüleme sistemi bioluminescence yerleştirin. Bioluminescence sinyal organların her iki tarafta ölçmek. Hemen ölçme sonra onları (24-72 saat, RT) bağlamak için % 4 formalin organlarda gelecekteki histolojik analiz için Dalma.
- Uygun görüntüleme yazılımı ile elde edilen resimler tarafından el ile eşik işlemek. Akciğer nodüller her resim üzerinde saymak. Her iki akciğer akciğer nodüller toplam sayısını saymak.
8. histolojik analizi
- Akciğer dokusu histolojik analizi için:
- Formalin sabit organları parafin içinde katıştırabilir ve 6 µm doku slayt hazırlamak.
- Deparaffinate Akciğer doku slaytlar ve 0.01 M sitrat arabelleği (pH 6) 15 dakika kaynatılarak antijen alma gerçekleştirmek.
- Yatay olarak, oda sıcaklığında Anti-insan vimentin seyreltilmiş antikor (200 µg/mL) 1:150 antikor-eritici (ticari) ve daha sonra ikincil, HRP etiketli antikor (0,5 mg/mL, seyreltme 1:500) ile slaytlar kuluçkaya. 3'-diaminobenzidine (DAB) ve Hematoksilen sayaç boyama kurcalayarak leke.
- Karşılık gelen kamera ve görüntü yazılımı birleştiğinde bir optik mikroskop kullanarak lekeli doku slaytlar gözlemlemek.
- Fare yırtılmalarıteşhis GFP pozitif MSCs varlığı değerlendirmek için:
- Ethylenediaminetetraacetic asit (EDTA) 0,24 M, pH 7.2 7.4 yırtılmalarıteşhis decalcify. EDTA arabellek her geçen gün kemik (yaklaşık 1 hafta) esnek olmak kadar yenileyin.
- Yırtılmalarıteşhis kurutmak ve onları parafin ile sızmak. (Osteosarkom doku dahil) yırtılmalarıteşhis parafin blok gömün.
- 6 µm parafin kesitler hazırlamak için bir microtome kullanın. Parafin kesitler cam slaytlar üzerine yerleştirin. Kuruduktan sonra slaytlar gecede, oda sıcaklığında saklayın.
- Isı-aracılı antijen alma sitrat tampon kullanarak gerçekleştirmek (8.1.2 bakınız) ve 1:900 seyreltme antikor-eritici olarak anti-GFP antikor (bütün Anti-serum) kurcalayarak leke. Dokular ile 4', 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) counterstain.
- Doku slaytlar ile ilgili görüntüleme yazılımı için birleştiğinde floresan mikroskop gözlemlemek.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Bu çalışmada, osteosarkom salgılanan EVs MSCs pro tumorigenic ve pro-metastatik fenotip doğru eğitmek yeteneğini keşfettik. Biz osteosarkom hücreleri MSCs tarafından içselleştirilmiş eksozom benzeri EVs yayın gösterir. Biz kanser EVs tarafından indüklenen MSC sitokin ifade profil İLETİMLERİNİZE ölçülen ve EV eğitimli MSCs tümör büyüme ve metastaz oluşumu üzerinde etkisi değerlendirilir. Çalışma tasarım genel gösterimi şekil 1' de gösterilmiştir.
EVs 143B osteosarkom hücreleri tarafından yayımlanan veya denetim insan fibroblast tarafından fark Santrifüjü saf. EV saflık elektron mikroskobu, hazırlıklar esas olarak (Şekil 2A) 40-100 nm arasında değişen çapında veziküller içerdiği ortaya tarafından doğrulandı. Kanser EVs MSCs ile etkileşim değerlendirmek için bir yeşil-floresan lipofilik bağlayıcı boya (GFLD) ile veziküller etiketli ve onları gecede hedef hücreleri ile inkübe. Floresans mikroskobu tarafından verimli EV alımı MSCs (Şekil 2B) tarafından görülmektedir. Ayrıca, Akış Sitometresi Analizi osteosarkom ve denetim EVs ile karşılaştırılabilir verimliliği (Şekil 2C) içselleştirilmiş gösterdi. Tümör EVs insan fibroblast ile karşılaştırıldığında Il-8 ve Il-6 üretiminde logosuna 2 kat artış belirlemek gösterdi bir multiplex boncuk tabanlı sitokin immunoassay kullandığımız osteosarkom EVs MSCs immunomodulatory özelliklerini değiştirmek olup olmadığını araştırmak için EVs (Şekil 2D, E) kontrol eder.
Osteosarkom EVs pro tumorigenic ve pro-metastatik fenotip benimsemeye MSCs eğitmek olup olmadığını araştırmak için osteosarkom bir kollarındaki, orthotopic xenograft fare modeli çalıştırmaya başladık. Tüm hayvan deneyleri bir operatör tarafından gerçekleştirilmiştir. Metastatik 143B-Fluc hücreleri korele çıplak fareler tibia nakledilen ve iki gün sonra osteosarkom xenografted fareler naif (eğitimli olmayan) MSCs veya hiçbir MSCs alma GFP pozitif EV eğitimli MSCs. fare tek bir yönetim için tabi tutuldu kontrol grubu kullanılmıştır. Hiçbir hayvan daha önce açıklanan bitiş noktaları öldü. Halife ölçüm tarafından gösterdi ve fareler EV eğitimli MSCs ile tedavi bioluminescence görüntüleme (BLI) (şekil 3A) kontrol grubu ile karşılaştırıldığında tümör büyüme hızlandırılmış. Her tedavi kol tümör boyutu temsilcisi görüntülerini şekil 3' teCgösterilmektedir. Bizim veri eğitimli MSCs tek damar yolu İdaresi tümör ilerleme gibi erken olarak 10 gün sonra aşılama (şekil 3B) etkiler gösterir. Buna ek olarak, dört gün sonra eğitimli/saf GFP ifade MSCs (şekil 4A), sistemik enjeksiyon GFP ifade hücreler kemik iliği (şekil 4B) hem de tümör doku (şekil 4 biz görselleştirmek C), tümör siteye homing MSC gösteren.
Ex vivo Akciğer, karaciğer, böbrek ve dalak (veri gösterilmez) BLI analizi akciğer nodül oluşumu sadece tüm tedavi silah (şekil 4D-F) farelerde akciğer gösterdi. Çarpıcı, MSCs artış metastatik tümör microenvironment içinde ima akciğer Metastazlari alma fare ile karşılaştırıldığında daha yüksek sayıda sigara MSCs veya hiçbir MSCs (şekil 4G) mezunu EV eğitimli MSCs alma fareler, eğitimli osteosarkom potansiyelini vivo içinde7hücreleri.
Resim 1 . Çalışma tasarım şematik gösterim. İnsan birincil MSCs kültürlü metastatik osteosarkom (143B) hücrelerden izole EVs ile okutulur. Kanser EV saflık elektron mikroskobu tarafından değerlendirilir ve MSCs tarafından içselleştirilmesi Floresans mikroskobu tarafından görüntülenir ve Akış Sitometresi tarafından analiz. MSC sitokin ifade profil değişiklikleri sitometrik boncuk dizisi (CBA) tarafından değerlendirilir. Eğitimli EV rolü tanımlamak için MSC tümör büyüme ve metastaz oluşumu, osteosarkom taşıyan fareler üzerinde enjekte ile EV eğitimli (veya saf) yüksek lisans. Metastaz oluşumu ex vivo BLI tarafından deneysel son nokta ve histolojik analizi değerlendirilir iken tümör büyüme bioluminescence görüntüleme (BLI) ve Halife ölçüm, takip eder. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.
Resim 2 . Arıtma EVs ve onların etkileşim MSCs. (A) transmisyon elektron mikroskobu test, 143B hücrelerden izole EVs (ölçek çubuğu: 100 nm). (B) GFLD alımını etiketli 143B EVs Floresans mikroskobu tarafından değerlendirildi MSCs tarafından (ölçek çubuğu: 10 µm). (C) GFLD içselleştirilmesi etiketli 143B EVs (turuncu) veya kontrolü (insan fibroblast, hf) EVs (yeşil) Akış Sitometresi tarafından analiz olarak MSCs tarafından. (D) 143B için maruz MSCs supernatants inflamatuar sitokinlerin tespiti Multiplex (143B EV-MSC) veya hf-EVs (hf EV-MSC) sitometrik boncuk dizisi tarafından. 143B-MSC hızlı Il-6 ve Il-8 denetimine göre daha yüksek düzeyde (tedavi edilmemiş ve hF EV tedavi) MSCs. Noktalı çizgiler sitokin üretim vardiyada gösterir. (E) Il-8 ve Il-6 protein konsantrasyonu klimalı ortamda EV tedavi MSCs sitometrik boncuk dizisi, indüksiyon tedavi edilmezse denetime göre kat olarak ifade tarafından analiz olarak. Veri ifade ± SD, demek gibi n = 2. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.
Şekil 3 . Kollarındaki, orthotopic xenograft fare modeli osteosarkom. (A) kumpas ölçümleri ve (B) tümör büyüme (BLI) görüntüleme bioluminescence tarafından ölçülen kullanarak tümör birimi tahmini. Tümör boyutu foton akı (fotonlar/sn) ifade edilir. p < 0,01, eğitimli MSC (n = 6) vs eğitimli MSC (n = 6), unpaired t-testi. Veri ± SEM (C) temsilcisi BLI görüntüler fare ile kurulan osteosarkom Tümörleri (üst panel) anlamına olarak ifade edilir. Renk ölçeği bar aralıkları 7,7 x 10 üzerinden7 (mor) 2.6 x 108 (kırmızı) fotonlar/sn. Alt panelinde tümör alan BLI bindirme görüntülenir. Oklar tümör toplu gösterir. Ölçek çubukları: 0,6 cm. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.
Şekil 4 . Düşsel MSCs ve ex vivo akciğer dokusu. (A) Floresans mikroskobu Image kültürlü GFP pozitif yağ elde edilen MSCs (yeşil). (B) GFP pozitif MSCs kemik iliğinde ve (C) yüksek lisans alma farelerin tümör dokusunda ayirt boyama (yeşil: MSCs, mavi: çekirdeklerin; lekeli DAPI ölçek 10 µm bar). (D-F) Ex vivo bioluminescence (BLI) gösteren EV eğitimli MSCs (F) saf MSC (E) veya Hayır MSC (D)alma fareler karşılaştırıldığında alma farelerde metastatik foci yüksek sayısını görüntüleme. 1 x 10-6 (mor) 1.5 x 106 (kırmızı) fotonlar/snrenk ölçek çubuğu aralıkları. (G) miktar BLI tarafından görüntülenmiştir gibi akciğer metastazı sayının (satırları temsil eden ortanca; * p < 0,05, tek kuyruklu t-Testi). Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Hücre dışı veziküller (EVs) tümör salgılanan tümör destekleyici bir ortam oluşturmak için yerel ve uzak Mezenkimal hücreler fizyolojisi değiştirebilirsiniz. Burada diseksiyon tümör hücreleri arasında EV-aracılı etkileşimlerin sağlar osteosarkom preklinik fare modeli nesil tanımlamak ve (MSCs) vivoMezenkimal Kök hücreler. Biz insan tümör EV eğitimli MSCs osteosarkom xenografts şiddetle taşıyan farelerde sistemik enjeksiyon IL-6/STAT3 sinyal yolu7aktive ederek kanser büyüme ve metastaz oluşumu teşvik gösterir.
Son çalışmalar kanser EVs yerel veya kemik iliği türevi stromal hücre16,28,29davranışını değiştirerek önceden metastatik niş oluşumunda yardımcı olabilir göstermiştir. Bu çalışmalar çoğunlukla hücre tipleri için tümör teşvik etkileri sorumlu tanımlaması için sadelik alıcı fare kanser kaynaklı veziküller doğrudan enjekte edilerek yapılmıştır. Bizim iletişim kuralında, MSCs eğitim kanserli EVs vitro MSC enjeksiyon önce oluşur. Bu yaklaşım tümör-MSC crosstalk kanser ilerlemesi için belirli katkısını adresleme sağlar ve kanser lokal veya sistemik ortamının diğer bileşenlerini EVs karıştırıcı dolaylı etkileri en aza indirir.
Eğitimli MSCs tümör siteye ev olup olmadığını değerlendirmek için sistemik GFP pozitif MSCs tümörü taşıyan fareler kuyruk ven enjekte. Kuyruk ven enjeksiyonları teknik olarak adım birçok deneysel protokoller zorlu ama bir büyük önem taşımaktadır. Enjeksiyonları arasında çok az değişim sağlamak için yordam deneyimli müfettişler tarafından uygulanmalıdır. Doğru intravenöz yönetim damar yoluyla sıvı hareketi gözlemleyerek görsel olarak onaylanabilir. Bir beyaz alan kuyruk üzerinde görünür veya direnç enjeksiyon sırasında karşılaşıldığında, vasküler erişim elde değil. Bu durumda yordamın ilk enjeksiyon yeri yukarıda iğne ekleyerek yinelenmelidir. MSCs kolayca tümörü evde çünkü başarılı yönetimi (pozitif GFP) MSCs ayirt tümör doku ve kemik iliği dört gün sonra enjeksiyon (şekil 4B, C) Boyama tarafından onaylanabilir.
Kanser salgılanan EVs inflamatuar sitokinlerin üretimini değiştirerek MSCs içinde tümör destekleyici bir fenotip neden göster. Bu bulgu bağışıklık modülasyonu beri özellikle uygundur ve tümör bağışıklık kaçırma Malign ilerleme anahtar mekanizma vardır. EVs doğrudan, bağımsız çalışmalar21,30,31,32,33, ya da dolaylı olarak (MSCs) yoluyla bildirildiği gibi olabilir kanser doğuştan gelen veya edinilmiş bağışıklık etkisi bizim verileri göstermektedir bileşenleri. Ancak, bir xenograft (immün) modeli EVs bu yönünü araştırmak için olasılığını kısıtlar. Böylece, immün veya insanlaşmış fare modelleri benzer yaklaşımlar Kanserinde tümör-MSC-bağışıklık hücre EV-aracılı etkileşimleri rol tanımlamak için üstlenilen gerek.
Son olarak, MSCs kemik iliği veya diğer doku kaynakları tümörler için işe çünkü bizim yöntem kemik kanserleri çalışma için sınırlı değildir, ancak tümör EV eğitimli MSCs birden fazla kanser türleri2, rolünü araştırmak için uygulanabilir 3 , 4 , 5 , 6, Melanom ve lenfoma modelleri son yıllarda yapılan çalışmalarda olarak onaylamak34.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Yazarlar ifşa gerek yok.
Acknowledgments
S.R. Baglio Associazione Italiana tarafından burs Cancro (AIRC) Co finanse la Ricerca sul Avrupa Birliği tarafından başına tarafından desteklenmiştir. Ayrıca, bu proje Avrupa Birliği'nin ufuk 2020 araştırma ve yenilik programı Marie Sklodowska-Curie hibe sözleşmesi kapsamında hiçbir 660200 (S.R. Baglio) fon aldı.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Equipment | |||
| Ultra Centrifuge | Beckman | Optima L-90K | |
| Rotor SW32Ti | Beckman | 369650 | Referred to in the manuscript as ultra-swinging bucket rotor |
| Transmission electron microscope | Zeiss | EM109 | Or similar TEM |
| Digital camera | Nikon | DMX 1200F | Or similar camera |
| Imaging software TEM | Nikon | ACT-1 | |
| Fluorescence microscope | Zeiss | Imager.D2 | Or similar Fluorescence microscope |
| Imaging software FM | Zeiss | ZEN Blue | |
| Incubator | Nuaire | 4750E | |
| Centrifuge | Hettick | ROTANTA 460R | |
| -80 Freezer | Thermo electro corporation | n.a. | |
| FACS | BD | BD FACScalibur | Or similar flow cytometer |
| Drill | Ferm | FCT-300 | With 0.8 mm drill |
| HSS micro twist drills, 0.8 mm | Proxxon | 28 852 | 0.8 mm drill |
| IVIS camera | Xenogen | Ivis Lumina | Referred to in the manuscript as bioluminescence camera. Xenogen is now part of Perkin Elmer |
| Living image software2.60 | Xenogen / Igor Por | n.a | Xenogen is now part of Perkin Elmer |
| 10 µL Syringe | Hamilton | Neuros Model 1701 RN | |
| Needle: Hamilton RN Needle for Syringe, 26 Gauge, Pointstyle AS, custom length 2 cm | Hamilton | n.a. | |
| Caliper | Mitutoyo | G08004463 | |
| Autoclave | Astell | n.a. | |
| Heat Lamp | Philips | n.a. | |
| Culture media | |||
| Fetal Bovine Serum | Hyclone | RYG35912 | |
| Platelet Lysate | n.a. | n.a. | |
| IMDM medium | Lonza | BE12-722F | |
| alpha-MEM medium | Lonza | BE02-002F | |
| DMEM medium | Lonza | BE12-614F | |
| pen/strep/glutamine | GIBCO | 10378-016 | |
| heparin | LEO | 012866-08 | |
| Trypsin/EDTA (10x) | GIBCO | 15400-054 | |
| Cells | |||
| adipose deriverd MSCs | n.a. | n.a. | |
| GFP-positive MSCs | n.a. | n.a. | |
| human fibroblasts | n.a. | n.a. | |
| 143B cells | ATCC | CRL-8303 | |
| FLUC-143B cells | ATCC | CRL-8303 | Transduced |
| Disposables | |||
| Culture flasks 175 cm2 | CELLSTAR | 660175 | |
| 50 mL tubes | Greiner bio-one | 210261 | |
| Freeze tubes | Thermoscientific | 377224 | |
| Ultra-Clear tubes | Beckman | 344058 | Referred to in the manuscript as ultra-centrifuge tubes |
| 0,22 µm filter | Millex | SLGV033RS | |
| 200 mesh Formvar-carbon-coated nickel grids | EMS (Electron Microscopy Sciences) | ||
| 0.5 mL insulin syringes with 29G Needle | Terumo | U-100 | |
| Petri dish | Sigma - Aldrich | P7612 | |
| Filter paper | Thermo fisher Scientific | 50363215 | |
| Reagents / kits | |||
| paraformaldehyde | Alfa Aeser | 43368.9M | |
| PBS | Braun | 220/12257974/110 | |
| glutaraldehyde | EMS (Electron Microscopy Sciences) | 16300 | |
| uranyl oxalate | EMS (Electron Microscopy Sciences) | 22510 | |
| urany acetate | EMS (Electron Microscopy Sciences) | 22400 | |
| methyl cellulose | EMS (Electron Microscopy Sciences) | 1560 | |
| PKH67 | Sigma | mini67-1kt | Referred to in the manuscript as GFLD |
| BSA | Sigma | A8412 | |
| CBA - human inflammatory cytokine kit | BD | 551811 | |
| Formaldehyde 37% | VWR | 104003100 | |
| Carbon Steel surgical blades | Swann-Morton | 206 | Referred to in the manuscript as surgical knife |
| anti-human vimentin antibody | Santa Cruz | sc-6260 | Clone V9 |
| Antibody diluent | DAKO | S0809 | |
| HRP-labeled anti mouse IgG antibody | Life Technologies | 32230 | |
| DAB-kit | DAKO | K500711 | |
| hematoxyllin | Sigma | GHS232 | |
| EDTA-buffer | n.a. | n.a. | |
| Citrate buffer | n.a. | n.a. | |
| rabbit polyclonal anti-GFP antibody | Abcam | n.a. | Ab290 |
| DAPI | Life Technologies | D1306 | |
| Paracetamol, 120 mg / 5 ml syrup | Bayer | n.a. | Sinaspril, paracetamol solution for kids |
| Isoflurane 1000 mg/g | Vumc pharmacy | n.a. | |
| buprenofine hydrochloride, 0.3 mg/ml | Indivior UK Limited | n.a. | |
| lidocaine-HCL 2% | Vumc pharmacy | n.a. | |
| 70% ethanol | VWR | 93003.1006 | |
| Tissue glue | Derma+Flex, formulated medical cyanoacrylate | Vygon | LB604060 |
| Eyedrops: Vidisec Carbogel, 2 mg/ml | Bausch+Lomb | n.a. | |
| D-luciferin, potassium salt | Gold Biotechnology | LUCK-1 | |
| Glass slides | Thermo scientific | 630-0954 | |
| Stainless steel loops | n.a. | n.a. | |
| Mice experiments | |||
| Mice, Hsd:Athymic Nude-Foxn1nu, female, 6 weeks at arrival, bacterial status conform FELASA | ENVIGO | n.a. | |
| Paper-pulp smart home (cage enrichment) | Bio Services | n.a. | |
| Alpha-dri bedding material | Shepperd Speciality Papers | n.a. | |
| Mouse food: Teklad global 18% protein rodent diet | ENVIGO | 2918-11416M | |
| Sutures | Ethicon | V926H | |
| Scissors | Sigma-Aldrich | S3146-1EA | (or similar) |
| Tweezers | Sigma-Aldrich | F4142-1EA | (or similar) |
References
- Hanahan, D., Weinberg, R. A. Hallmarks of cancer: The next generation. Cell. 144 (5), 646-674 (2011).
- Karnoub, A. E., et al. Mesenchymal stem cells within tumour stroma promote breast cancer metastasis. Nature. 449 (7162), 557-563 (2007).
- Jung, Y., et al. Recruitment of mesenchymal stem cells into prostate tumours promotes metastasis. Nat Commun. 4, 1795 (2013).
- Shahar, T., et al. Percentage of mesenchymal stem cells in high-grade glioma tumor samples correlates with patient survival. Neuro Oncol. 19 (5), (2016).
- Behnan, J., et al. Recruited brain tumor-derived mesenchymal stem cells contribute to brain tumor progression. Stem Cells. 32 (5), 1110-1123 (2014).
- Giallongo, C., et al. Granulocyte-like myeloid derived suppressor cells (G-MDSC) are increased in multiple myeloma and are driven by dysfunctional mesenchymal stem cells (MSC). Oncotarget. 7 (52), 85764-85775 (2016).
- Baglio, S. R., et al. Blocking tumor-educated MSC paracrine activity halts osteosarcoma progression. Clin Cancer Res. 23 (14), 3721-3733 (2017).
- Pittenger, M. F., et al. Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells. Science. 284 (5411), 143-147 (1999).
- Shi, Y., Du, L., Lin, L., Wang, Y. Tumour-associated mesenchymal stem/stromal cells: emerging therapeutic targets. Nat Rev Drug Discov. 16 (1), 35-52 (2017).
- Ridge, S. M., Sullivan, F. J., Glynn, S. A. Mesenchymal stem cells: key players in cancer progression. Mol Cancer. 16 (1), 31 (2017).
- Luo, J., et al. Infiltrating bone marrow mesenchymal stem cells increase prostate cancer stem cell population and metastatic ability via secreting cytokines to suppress androgen receptor signaling. Oncogene. 33 (21), 2768-2778 (2013).
- Huang, W. -H., Chang, M. -C., Tsai, K. -S., Hung, M. -C., Chen, H. -L., Hung, S. -C. Mesenchymal stem cells promote growth and angiogenesis of tumors in mice. Oncogene. 32 (37), 4343-4354 (2013).
- Patel, S. A., Meyer, J. R., Greco, S. J., Corcoran, K. E., Bryan, M., Rameshwar, P. Mesenchymal stem cells protect breast cancer cells through regulatory T cells: role of mesenchymal stem cell-derived TGF-beta. J Immunol. 184 (10), 5885-5894 (2010).
- Becker, A., Thakur, B. K., Weiss, J. M., Kim, H. S., Peinado, H., Lyden, D. Extracellular vesicles in cancer: Cell-to-cell mediators of metastasis. Cancer Cell. 30 (6), 836-848 (2016).
- Skog, J., et al. Glioblastoma microvesicles transport RNA and protein that promote tumor growth and provide diagnostic biomarkers. Nat Cell Biol. 10 (12), 1470-1476 (2008).
- Peinado, H., et al. Melanoma exosomes educate bone marrow progenitor cells toward a pro-metastatic phenotype through MET. Nat Med. 18 (6), 883-891 (2012).
- Zomer, A., et al. In vivo imaging reveals extracellular vesicle-mediated phenocopying of metastatic behavior. Cell. 161 (5), 1046-1057 (2015).
- Webber, J., Steadman, R., Mason, M. D., Tabi, Z., Clayton, A. Cancer exosomes trigger fibroblast to myofibroblast differentiation. Cancer Res. 70 (23), 9621-9630 (2010).
- Webber, J. P., et al. Differentiation of tumour-promoting stromal myofibroblasts by cancer exosomes. Oncogene. 34 (3), 290-302 (2015).
- Zhou, W., et al. Cancer-secreted miR-105 destroys vascular endothelial barriers to promote metastasis. Cancer Cell. 25 (4), 501-515 (2014).
- Whiteside, T., Anastasopoulou, E., Voutsas, I., Papamichail, M., Perez, S., Nunes, D. Exosomes and tumor-mediated immune suppression. Expert Rev Mol Diagn. 15 (10), 1293-1310 (2016).
- Verweij, F. J., Van Eijndhoven, M. A. J., Middeldorp, J., Pegtel, D. M. Analysis of viral microRNA exchange via exosomes in vitro and in vivo. Methods Mol Biol. 1024, 53-68 (2013).
- Baglio, S. R., et al. Human bone marrow- and adipose-mesenchymal stem cells secrete exosomes enriched in distinctive miRNA and tRNA species. Stem Cell Res Ther. 6 (1), 127 (2015).
- Naaijkens, B. A., et al. Human platelet lysate as a fetal bovine serum substitute improves human adipose-derived stromal cell culture for future cardiac repair applications. Cell Tissue Res. 348 (1), 119-130 (2012).
- Grisendi, G., et al. Adipose-derived mesenchymal stem cells as stable source of tumor necrosis factor-related apoptosis-inducing ligand delivery for cancer therapy. Cancer Res. 70 (9), 3718-3729 (2010).
- Cosette, J., Abdelwahed, R. B., Donnou-Triffault, S., Sautès-Fridman, C., Flaud, P., Fisson, S. Bioluminescence-based tumor quantification method for monitoring tumor progression and treatment effects in mouse lymphoma models. J Vis Exp. (113), (2016).
- Carbone, L., et al. Assessing cervical dislocation as a humane euthanasia method in mice. J Am Assoc Lab Anim Sci. 51 (3), 352-356 (2012).
- Costa-Silva, B., et al. Pancreatic cancer exosomes initiate pre-metastatic niche formation in the liver. Nat Cell Biol. 17 (6), 816-826 (2015).
- Hoshino, A., et al. Tumour exosome integrins determine organotropic metastasis. Nature. 527 (7578), 329-335 (2015).
- Clayton, A., Mitchell, J. P., Court, J., Mason, M. D., Tabi, Z. Human tumor-derived exosomes selectively impair lymphocyte responses to interleukin-2. Cancer Res. 67 (15), 7458-7466 (2007).
- Wieckowski, E. U., Visus, C., Szajnik, M., Szczepanski, M. J., Storkus, W. J., Whiteside, T. L. Tumor-derived microvesicles promote regulatory t cell expansion and induce apoptosis in tumor-reactive activated cd8+ T lymphocytes. J Immunol. 183 (6), 3720-3730 (2009).
- Valenti, R., Huber, V., Iero, M., Filipazzi, P., Parmiani, G., Rivoltini, L. Tumor-released microvesicles as vehicles of immunosuppression. Cancer Res. 67 (7), 2912-2915 (2007).
- Costa-Silva, B., et al. Pancreatic cancer exosomes initiate pre-metastatic niche formation in the liver. Nat Cell Biol. 17 (6), 816-826 (2015).
- Lin, L. Y., et al. Tumour cell-derived exosomes endow mesenchymal stromal cells with tumour-promotion capabilities. Oncogene. 35 (46), 6038-6042 (2016).
