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Bioengineering

희생 빈 섬유 막 세포 배양을 통해 기질 섬유의 생산

Published: February 2, 2019 doi: 10.3791/58791

Summary

이 프로토콜의 목표는 재생 비 계 임 플 란 트의 일환으로 전 임상 평가 위한 적당 한 상처 복구에 대 한 대상 전체 기질 섬유의 생산입니다. 이러한 섬유는 빈 섬유 막에 섬유 아 세포의 문화에 의해 생성 하 고 세포 막의 해체에 의해 추출.

Abstract

세포 외 기질 (ECM)에서 파생 된 설계 건설 기계 폐쇄 하 고 치유를 상처에 신속 하 게 그들의 잠재력에 대 한 의학에 구동된 상당한 관심을가지고. Fibrogenic 셀 문화에서 에 체 외에서 세포 외 매트릭스의 추출 임상 방해는 xenogeneic epitopes의 존재를 최소화 인간의-그리고 잠재적으로 환자 특정 셀 라인에서 ECM의 생성에 대 한 잠재력을가지고 일부 기존 ECM 제품의 성공입니다. ECM 이식 적합의 생체 외에서 생산에 중요 한 도전이 이다 ECM 생산 세포 배양에 의해 일반적으로 상대적으로 낮은 수익률의. 이 작품에서 셀 희생 빈 섬유 막 건설 기계 내에서 교양된으로 ECM의 생산에 대 한 프로토콜을 설명 합니다. 중공 사막은 fibroblast 세포 라인 전통적인 휴대 매체에 경작 그리고 ECM의 지속적인 스레드를 세포 배양 후 해산. 이 메서드에 의해 생성 결과 ECM 섬유 수 decellularized 고 동결 건조 된, 그것을 렌더링 하는 스토리지 및 이식에 적합.

Introduction

이식 외과 건설 기계는 상처 복구, 이식 복 벽 수리 혼자1매년 전세계 1 백만 이상의 합성 폴리머 메시의 정착 물. 그러나, 합성 물질 중합체는 전통적으로 이러한 장비의 제조에 사용 되는 주입에 따라 하는 경향이 이물질 응답, 이식의 기능에 해로운 염증의 결과로 및 조직2의 흉터를 자극합니다 . 또한, 주된 합성 메시 물자 (즉, 폴 리 프로필 렌)는 몸에 의해 분명 리 모델링 하지, 그들은 일반적으로 흉터을 어디 용납 될 수 있다, 조직에 적용 가능한 치료의 방향으로 그들의 임상 유용성을 제한 고차 함수 근육 같은 조직. 많은 외과 메쉬 제품을 임상 성공으로 적용 된 반면, 최근 제조 업체 회상 합성 수술의 극대화 임 플 란 트의 중요성을 강조 하는 메쉬 및 interspecies 조직 이식의 합병증 생체 적합성, 수술에 대 한 규제를 강화 하는 FDA 라는 메쉬 제조 업체3,4. 이식 환자 자신의 조직에서 파생 하는 장비의이 면역 반응을 감소 하지만 중요 한 기증자 사이트 사망률5에서 발생할 수 있습니다. 세포 외 기질 (ECM) 건설 기계 생산 체 외에 는 가능한 대안, decellularized ECM 건설 기계 전시 우수한 생체 적합성로 특히 헌 ECM의 경우 임 플 란 트6.

환자 조직 자가 이식에 대 한 수확의 한정 된 가용성 및 기증자 사이트에서 기능을 방해한의 위험, ECM 생산 능력을 생체 외에서 인간 세포 선의 문화에서 투어 또는, 만약에 가능 하다 면, 환자 자신의 셀 매력적인 대안 이다입니다. ECM에서 생체 외에서 의 상당한 금액의 제조에 있는 주요 과제는 이러한 어려운 캡처 분자의 격리. 이전 작품에서는, 우리는 증명 하고있다 ECM ECM 분 비 이식7, decellularized 수 있는 수익률 ECM 문화 기간 후 해산는 희생 폴리머 폼에서 섬유 아 세포를 배양 하 여 생산 될 수 있다 8,,910. ECM 생산에 폼은 폼의 내부 아키텍처를 채택 하는 경향이, 빈 섬유 막 (HFMs) ECM의 생산을 위한 희생 발판으로 탐구 했다. 여기에 설명 된는 방법 주어 실험실 규모 세포 문화 품질 빈 섬유 막과 같은 섬유 문화의 기간 뒤에에서 대량 기질 섬유의 추출의 제조에 대 한. 이 정적 문화 방식은 쉽게 채택할 수 있는 실험실 표준 포유류 세포 배양 장비를 포함 하 여입니다. ECM이 접근이 방식에 의해 생산은 다양 한 임상 응용으로 적용할 수 있습니다.

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Protocol

1. 희생 중공 사막은 사용 하 여 세포 외 매트릭스의 생산

주의: N-메 틸-2-pyrrolidone는 자극 용 매 및 생식 toxicant. NMP에 노출 피부, 눈, 코과 목에 자극을 일으킬 수 있습니다. NMP를 처리할 때 용 매 저항 개인 보호 장비를 사용 해야 합니다. NMP의 사용 연기 후드 내에서 수행 되어야 합니다.

  1. 중공 사막은 polysulfone 폴리머 솔루션의 준비
    1. Polysulfone 펠 릿의 70 g의 무게 (35의 분자량 kD) 분석 균형을 사용 하 여 무게 보트에서.
    2. 깨끗 한 붕 규 산 플라스 크를 N-메 틸-2-pyrrolidone (NMP)의 314 mL (323.3 g)를 전송 합니다.
    3. 저 어 바를 교 반기에 NMP 그리고 장소 플라스 크와 플라스 크에 놓습니다. 교 반기 회전의 적당 한 속도를 설정 합니다.
    4. 건조 퍼 널을 사용 하 여 천천히 NMP와 함께 플라스 크에 polysulfone의 준비 70 g를 삽입.
    5. 3 일 동안 실내 온도에, 또는 무 균 때까지 저 어을 폴리머 "마약" 솔루션을 수 있습니다.
  2. 동심도 설정 하 고 빈 섬유 막 spinneret의 청소
    참고: Spinnerets는 상업적으로 사용할 수; 올바른 spinneret 차원 성공적인 막 제조에 중요 한 고 자료의 테이블에에서 나열 됩니다. spinneret spinneret 바늘은 특히 허약으로 매우 부드럽게 처리 합니다.
    1. 신중 하 게는 spinneret를 분해 하는 적절 한 드라이버 비트 드릴 또는 드라이버를 사용 합니다.
    2. 부드럽게 아세톤 입구와 출구의 수집 처리 유리 비 커에 어떤 아세톤 및 잔류 폴리머 spinneret 통해 흐름.
    3. 테이블 바이스에 위쪽으로 직면 하는 바늘은 spinneret의 상체를 보안 합니다.
    4. 상체에 spinneret의 콘센트 (아래) 본문을 놓습니다.
    5. 바이스에 고정 spinneret 바늘은 직접 콘센트 본문의 때까지 상체를 들고는 spinneret의 콘센트 시체를 옆으로 이동 합니다.
    6. 신중 하 고 천천히 spinneret 콘센트에서 보이는 바늘 중심으로 유지 하면서는 spinneret 두 개의 시체를 연결 하는 나사를 다시 삽입 합니다.
  3. Polysulfone 빈 섬유 막의 제조
    1. 45 mL N-메 틸-2-pyrrolidone의과 이온된 수, 이온된 수와 NMP의 15% 혼합물 형성의 255 mL를 포함 하는 "구멍 솔루션"을 준비 합니다.
    2. 동심 중공 섬유 막 spinneret 룸 온도 수돗물 목욕의 표면 위에 8 cm를 탑재 합니다.
    3. 적어도 350 mL의 내부 볼륨 있는 두 개의 별도 강철 압력 용기에는 spinneret의 폴리머 입구와는 spinneret의 구멍 입구를 연결 합니다. 두 배는 그들의 출구에 체크 밸브를가지고 있어야 합니다.
    4. 압력 용기의 각각 별도 N2 가스 실린더 조정기에 연결
    5. 준비 마약 솔루션 (~ 315 mL)을 삽입 하는 spinneret의 폴리머 입구에 연결 된 압력 용기에 깔때기를 사용 합니다. 그릇 상단의 단단히 밀폐 된 확인 하십시오.
    6. 사용 퍼 널은 준비를 삽입 하는 spinneret의 구멍 입구에 연결 된 압력 용기로 솔루션 (300 mL)를 낳았다. 그릇 상단의 단단히 밀폐 된 확인 하십시오.
    7. 열 구멍 선박에 대 한 체크 밸브 먼저, 다음 폴리머 선박 두 번째. spinneret 충분히 깨끗 한 경우에, 보어 솔루션 spinneret 콘센트에서 스트림 시작 됩니다.
    8. 두 배 1 psi 압력 시각적으로 폴리머와 보어 솔루션 결합 된 스트림을 문의 물 목욕으로 연속 화이트 필 라 멘 트 계기와 spinneret 종료 됩니다 확인 합니다.
    9. 목욕의 센터에서 롤러 아래 초기 섬유 안내 하 긴 집게를 사용 하 고 회전 바퀴는 모터에 연결 된 주위 초기 섬유를 바람.
    10. 감는 장치 바퀴와 분당 약 2 미터의 속도로 회전 하는 모터를 설정 합니다.
    11. 약간 조정 레 귤 레이 터 또는 정상 상태 흐름 달성 될 때까지 필요에 따라 감는 장치 바퀴 속도를 확인 합니다. 초기 섬유 물 목욕의 표면 가진 90 ° 각을 형성 한다.
    12. 닫기 N2 실린더 레 귤 레이 터 및 압력 용기 밸브를 확인 하 고 모든 고분자와 보어 솔루션 혈관에서 압출 된 후 감는 장치 바퀴 모터를 분리.
    13. 준비 된 중공 사막은 제거 하 고 교환 하는 이온된 수 잔여 용 매를 제거 하는 하루에 한 번씩 3 일 동안 이온된 물 욕조에 넣어.
    14. 압력가 마로 소독 하 여 중공 사막은 소독 30 분 또는 1 일 70% 에탄올에 대 한 그들을 immersing 하 여 121 ° C에서 그들.
  4. 셀 빈 섬유 막의 시드
    참고: 모든 셀 문화 절차 biosafety 내각 내에서 수행 되어야 합니다.
    1. PBS에서 소 플라즈마 fibronectin의 20 µ g/mL 솔루션 빈 섬유 막 치료 (pH = 7.4) 셀 첨부 파일 홍보 하.
      1. 분말된 소 플라즈마 fibronectin 무게 보트에서의 1 밀리 그램의 무게와 살 균 PBS의 1 mL에 용 해 (pH = 7.4) 살 균 1.5 mL microcentrifuge 튜브에서.
      2. 30 분 동안 인큐베이터에서 1mg/mL 소 플라즈마 fibronectin 솔루션을 품 어. 살 균 50 mL 원뿔 원심 분리기 튜브에서 살 균 PBS의 49 mL에 솔루션을 추가 합니다.
      3. 1 시간 동안 5% CO2 와 37 ° c 배양 기에서 소 플라즈마 fibronectin의 준비 50 mL에 섬유를 품 어. 나중에 사용 및 4 ° c.에 살 균 50 mL 원뿔 원심 분리기 튜브에 저장소 fibronectin 솔루션을 가라앉 히 다
    2. 살 균 microscissors를 사용 하 여 섬유 원하는 길이로 잘라 (< 6 cm).
    3. 시드 1 mL 주사기 21-게이지 바늘을 사용 하 여 섬유 당 100000 세포 밀도에 빈 섬유 막의 루미나에 직접 씨앗 fibroblast 세포.
      참고: 로드 주사기에 세포 현 탁 액을 준비 하기 위한 실용적인 대상 매체의 모든 30 microliters 100000 셀 서 스 펜 션 밀도입니다.
    4. 6 시드 섬유 6 cm 직경 페 트리 접시에 놓습니다. 5% CO2 와 37 ° C에서 5 분 동안 품 어 하 시드 섬유를 허용 합니다.
    5. 부 화에서 시드 섬유를 제거 하 고 DMEM/F-12 포함 된 50 µ g/m l L-아 스 코르 빈 산 및 150 µ g/m l L-아 스 코르 빈 산 2 인산 염의 최종 농도에서 최대 3 주 동안 그들을 문화 (갓 준비 하 고 살 균 필터링), 5 ng/mL TGF-β1 (에서 살 균 필터링-20 ° C에 저장 된 aliquots), 그리고 6 cm 37 ° c.에 5% CO2 배양 기에서 배양 접시에에서 1% 페니실린-스 Exchange 셀 중간 매 2 일입니다.
  5. 교양된 빈 섬유 막에서 세포 외 매트릭스의 추출
    1. 장소는 집게를 사용 하 여 개별 섬광 유리병으로 섬유를 경작.
    2. NMP의 최대 5 mL 유리 피 펫을 사용 하 여 각 유리병에 넣으십시오.
    3. NMP, NMP의 3 개의 교류의 총 수행에서 빈 섬유를 담가. 천천히 1 mL 피 펫을 사용 하 여 추출 된 ECM의 찢 어 방지 하기 위해 오래 된 NMP 발음.
      참고: 신선한 NMP를 추가할 때 그것은 도움이 유리병을 기울기 고 NMP, 측의 아래 실행 허용 그렇지 않으면 나머지 ECM 발판을 복종 된다 전단이 찢 어 될 수 있습니다.
    4. NMP를 제거 하 고 씻어 서 이온된 수에 3 번 결과 ECM 스레드.
    5. 3 인치, 1 인치 폭의 길이에 실리콘 고무의 1/32 인치 두꺼운 시트 고는 8 m m 4mm 고무의 길이의 중앙에 직사각형 형에 의해 잘라.
    6. 30 분 동안 121 ° C에서 표준 3-인치 1 인치 현미경 슬라이드와 압력솥에 고무의 준비 조각을 놓습니다.
    7. 오픈 공간을 볼 수 있을 때까지 각 ECM 섬유를 8 m m에서 나란히 4 m m 실리콘 몰드로 하다.
    8. 50 mL 원뿔 원심 분리기 관으로 금형을 놓고 완전히 고정 될 때까지-80 ℃에서 동결 합니다.
    9. 하룻밤 또는 완전히 건조 될 때까지 냉동된 ECM 메쉬를 lyophilize. Decellularization에 대 한 준비까지 4 ° C에서 메쉬를 저장 합니다.

2입니다. 세포 외 매트릭스의 decellularization

  1. 1% (w/w%) 나트륨 라우릴 황산 염 (SDS) 이온된 수에의 한 솔루션을 준비 합니다.
  2. 부드러운 동요와 로커에 실 온에서 24 시간 동안 1 %SDS 있는 형에서 추출 된 기질을 품 어.
  3. 린스는 세 번에 멸 균 인산 염 버퍼 식 염 수 (PBS) 린스 당 PBS의 3 mL를 사용 하 여 부드러운 동요와 세포 외 기질을 추출.
    참고: 린스 준비 장비의 찢을 최소화 하기 위해 부드럽게 수행 되어야 한다.
  4. DNAse/RNAse 소화 버퍼 1 리터를 준비 합니다.
    참고: DNAse/RNAse 소화 버퍼는 4 ° c.에 몇 달 동안 저장 될 수 있습니다.
    1. Tris HCl의 1.54 g, MgCl2, 308 mg 및 별도 무게 보트에서 CaCl2 의 56 밀리 그램 무게.
    2. 저 어 바 큰 플라스 크에 이온을 제거 된 물 1 l Tris HCl, MgCl2및 CaCl2 를 결합 하 고 모든 구성 요소는 해산 때까지 휘저어.
    3. 멸 균 1 L 붕 병 및 4 ° c.에가 게에는 0.22 μ m 필터와 살 균 필터 소화 버퍼
  5. 5 mL DNAse/RNAse 소화 솔루션의 준비.
    참고: 소화 솔루션 준비의 24 시간 안에 사용 되어야 한다.
    1. 0.125 mg (50 구) DNAse의 무게는 무게에 나 보트 및 소화 버퍼의 5 mL을 추가.
    2. 소화 버퍼에 RNAse A 재고 솔루션의 75 µ L를 추가 합니다.
  6. 소화 솔루션 각 몰드를 6 시간 동안 4 ° C에서 품 어.
  7. 소화 솔루션을 발음 하 고 메 마른 PBS에 세 번 씻어.
  8. PBS를 발음 하 고 10% 페니실린-스 PBS에 4 ° c.에 하룻밤 사이에 건설 기계를 품 어
  9. 페니실린-스를 발음 하 고 메 마른 PBS에 건설 기계 세 번을 씻어.
  10. 50 mL 원뿔 원심 분리기 관으로 금형을 놓고-80 ° c.에 동결
  11. 하룻밤 또는 완전히 건조 될 때까지 decellularized ECM 메쉬를 lyophilize.
  12. 사용 중인 4 ° C에서 살 균 컨테이너 biosafety 후드 내에서 건설 하는 동결 건조 된 기계를 전송 합니다.

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Representative Results

희생 건설 기계에서 세포 외 매트릭스의 성공적인 생산은 적절 한 비 계 제조, 세포 배양, 그리고 용 린스 절차에 관 하 우발적 이다. 빈 섬유 막의 제조는 상용 철강의 환대를 통해 폴리머 솔루션의 돌출을 사용 하 여 상업적으로 사용 가능한 구성 요소 (그림 1)에서 조립 드라이-제트 젖은 회전 시스템을 사용 하 여 수행 spinneret (내부 직경 0.8 m m, 외경 = = 1.6 m m) 물 목욕과 접촉 시 빈 섬유 막으로 침전 폴리머 솔루션의 초기 튜브를 생성 하기 위해.

HFMs에서 ECM 추출 예제 과정은 그림 2에 나와 있습니다. 그림 3A 는 손가락 같은 모는 비대칭 막의 특성의 외부 및 내부 레이어를 전시 polysulfone HFMs의 가로 단면 조작에서이 프로토콜을 보여 줍니다. 이 프로토콜에서 세포 막의 내부 루멘에 특히 시드 하 고 막의 모든 표면에 증식 하는 세포에서 6 cm 직경 접시 (그림 3B), 교양. 경작된 세포 막 수 다음 수 받게 일괄 NMP 표준 유리 섬광 튜브 (그림 3C)에 이온된 수 rinsing ECM (그림 3D)의 반투명 스레드를 생산. ECM 생산 세포 문화 (그림 4)의 3 주 기간에 걸쳐 HFMs 내부 가능한 남아 있습니다.

HFMs 기본 쥐 골격 근육 섬유 아 세포 (RSMF) N-메 틸-2-pyrrolidone의 3 개의 교류 통해 해산 했다 후 세 번 이온된 수에는 씻어 서 했다 그들은 3 주 동안 경작. 추출 된 매트릭스, 일반적으로 수 화 된 때 외관에 반투명 되 고 (그림 5A), 수 화에 따라 클라우드 경향이 있을 것 이다 하지 않을 경우 잔류 폴리머의 존재로 인해 적절 한 용 매 세 정 대상. 도 막의 해산 후 남은 ECM은 다소 연약한 좋은 집게와 취급에 주의 요구 주목 한다. ECM 섬유 메쉬로 조립 및 다음 동결 건조 된 전시는 오프 화이트 색상 및 총 경도 맞춤 (그림 5B)으로 섬유 외관.

Figure 1
그림 1: 중공 사막은 주조에 대 한 그림된 프로세스 흐름. 중공 사막은 특정 자료의 테이블에 나열 된 상업적으로 사용 가능한 구성 요소에서 준비 시스템을 사용 하 여 유비 쿼터 스 비 용 유도 단계 분리 방법 (일본군)를 사용 하 여 제조 된다. NMP에 Polysulfone (17.8 w/w%) 및 NMP 보어 솔루션 (15 w/w% 물에 NMP) 초기 빈 섬유 막 spinneret 콘센트는 완전히 침전 물에서 생성 하는 spinneret로 가압된 N2 에 의해 별도 스테인레스 스틸 선박에서 돌출 되어 따라 수돗물 강수량 목욕과 접촉. 초기 빈 섬유 가이드 가이드 동안 수동으로 이며 분당 2.3 미터의 속도로 회전 동력된 감는 장치 바퀴에 수집을 허용. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 2
그림 2: 교양된 빈 섬유 막에서 ECM의 생산 그림. 빈 섬유 막 섬유 아 세포와 시드 및 교양 3 주 동안, NMP의 교환에 의해 따라 3 x와 교환 이온된 수 3의 x. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 3
그림 3: 문화 및 추출 ECM의. 비대칭 mesoporous 빈 섬유 막 (A)는 RSMF 셀 DMEM/F-12에 TGF-β (B)와 보충된 의약품 3 주 동안 배양 되었다. 교양된 빈 섬유 (C, D 위) n-메 틸-2-pyrrolidone 3 교류 통해 해산 다음 세 번 연속 스레드 ECM (D, 하단)의 결과로 이온된 물에 씻어 서. 높은 확대 ECM 섬유 표면 (E)의 현미경 사진 전자 현미경 스캐닝. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 4
그림 4: 빈 섬유 막에는 가능성을 셀. 3 주 경도 HFMs의 luminal 표면 공개 좋은 면도기를 사용 하 여 구분 했다에 대 한 RSMF 세포와 함께 배양 하 고 살고 죽은 Calcein 오전 및 EthD-1 얼룩을 복종에 막을 대표 빈 섬유 생존 얼룩 무시할 수 EthD-1 형광으로 가능한 셀 confluent 레이어를 공개 했다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 5
그림 5: ECM 임 플 란 트의 조립. 개별 세포 외 기질 스레드 (n = 30) 파생 된 RSMF의 문화에서 셀 실리콘 몰드 (A) 에 세로로 배치 하 고 나, RNAse A 및 페니실린 스 DNAse 치료 뒤 1 %SDS 의해 decellularized. Decellularized ECM은 다음 동결 건조 된, 섬유 모양와 경도 아키텍처 (B)미색 메쉬 저조한. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

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Discussion

설명 하는 프로세스의 대량 ECM 생체 재료에서 생체 외에서 중공 사막은 표준 셀 문화 장비 뿐만 아니라 세포 막의 저렴 한 대량 생산을 위한 수 있도록 드라이-제트 젖은 회전 시스템에 의해 캐스팅을 사용 하 여 생산 가능 이 프로토콜에서 조작 막 사용 하기 위한 세포 배양에서 하는 동안 설명 하는 시스템 또한 목적을 위해 분리, 기 공 크기 분포 및 빈 섬유 크기 가변 변화 하 여 막의 생산을 위해 적용할 수 있습니다. spinneret 크기, 폴리머 사용, 마약 하 고 보어 유량, 감는 속도, 그리고 환경 조건. 13 상세 프로토콜 중공 사막은 고용, 하지만 원칙적으로 어떤 분해할 수 있는 세포 배양 발판 오픈 셀 등 적절 한 전송 속성을 폼 사용할 수, 이전 작업7, 에서 같이 8,9. 이 일반적인 접근 방식을 나타납니다 더 충실 하 게 조직의 내부 아키텍처를 흉내낼 수 있는 희생 건설 기계에 의해 ECM 장비의 생산에 유용. 특히이 프로토콜에 의해 생산 하는 임 플 란 트 전시 총 정렬 (그림 5B), 힘 줄, 인 대 및 골격 근육 등 매우 정렬 된 조직의 재건을 향해 특정 혜택의 수 있습니다.

일반 교환 매체의 및, 특히, 의약품 및 TGF-β와 매체의 보충은 ECM의 생산에 중요 한 의약품은 콜라겐 생 합성에 필수적인 효소와 여러 ECM 단백질10의 합성을 유도 하는 TGF-β . 또한, NMP와 ECM의 철저 한 rinsing를 수행 해야 합니다, 그리고 그렇지 않으면 잔류 폴리머 물 린스 중 흰색 필름으로 나타나는 추출 된 ECM에 유지 됩니다. 그것은 상대적으로 취약 하지 지나치게 막 해산, 동안 ECM를 선동 하 배려를가지고 한다. 잠재적인 호스트 이물질 반응을 최소화 하기 위해 xenogeneic epitopes를 제거 하려면 설명 된 대로 decellularization 단계를 주입을 위한 수집된 ECM 건설 기계를 받게 해야 합니다.

이 기술의 중요성 신체의 자신의 상처 치유 과정에 의해 개장 될 수 있는 전체 세포 외 매트릭스의 biocomplex 발판의 생산에 있다. 를 사용 하 여이 접근 대상 종에 특정 세포에서 ECM 생산 하 수도 바이오;의이 클래스의 임상 효과 방해 하는 이물질 응답을 최소화 하기 위해 개인에 게 특정 셀을 사용 하 여 이물질 응답을 더 줄일 수 있습니다. 이 방법은 또한 조직 전용 ECM12특정 응용 프로그램 특히 효과가 있을 수 있습니다 제안 하는 최근 보고서를 대상으로 특정 조직, ECM의 생산에 대 한 수 있습니다. 이 ECM을 결합 하 여 여러 가지 세포 유형 (예: 근육, 신경, 내 피)에서 임 플 란 트 프로토콜을 통해 다양 한 셀 라인, ECM의 생산에 대 한 사용으로 구조와 화학을 더 충실 하 게 임 플 란 트에 맞게 사용 될 수 있습니다. 대상 조직의 복잡성입니다. 여기에 제시 된 ECM 메시 상처 복구에 대 한 건설 기계로 원래 예정 되었다, 그러나 그들은 또한 상호 작용 세포-ECM, durotaxis, 및 바이오 센 싱에 대 한 조사를 위한 플랫폼으로 사용 하 여가 있을 수 있습니다. 특히,이 이렇게 ECM에 대 한 새로운 조직 ECM 구조, 구성 및 기능의 생물학 의미 수 있습니다 관심의 특정 세포 유형에서 생산 하는 능력을 조사를 준다.

여기에 제시 된 ECM 생산 기술에 잠재적인 개선 스케일 업 대체 희생 비 계 재료와 아키텍처의 탐사로 서 역동적이 고 미리 에어컨 bioreactors의 사용을 통해 포함할 수 있습니다. 특히, 무용제 비 계 제거 프로세스 전환 추출 과정;의 안전을 개선 하는 것 재생된 셀 룰 로스와 같은 효소에 의해 분해 되는 물질의 구성 희생 건설 기계 무용제 ECM 추출14에 대 한 수 있습니다. 이러한 재료의 인장 강도 합성 물질의 아래, 다양 한 문화, 미디어 공식, 조건과 희생 비 계 형상의 탐사를 포함 한 이러한 장비의 개선에 대 한 여러도 존재 한다. 최근 유전 공학 발전 프로 거리 셀 라인, ECM 캡처 플랫폼 함께에서 임상 요구를 만족 하는 장비의 생산을 가능 하 게 수 있습니다.를 생산 하기 위해 활용 될 수 있습니다. 또한, 기존 연속 흐름 루프 빈 섬유 막 bioreactors 영양소 exchange 더 중대 하 고 더 빠른 ECM 생산에 공헌의 높은 속도 촉진 하 고 이것을 활용에 특히 관심이 있을 수 있습니다 같은 동적 문화 시스템 대량 ECM의 생물 학적 연구와 임상의 생산을 위한 기술을 사용 합니다.

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Disclosures

저자 들은 아무 경쟁 금융 관심사 선언 합니다.

Acknowledgments

이 간행물에 보고 된 연구 국립 연구소의 관절염과 Musculoskeletal 및 보너스 번호 R15AR064481, 국립 과학 재단 (CMMI-1404716)에서 국립 보건원의 피부 질환에 의해 지원 되었다 뿐만 아니라 아칸소 생물 과학 연구소입니다.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
1/32 inch thick silicone rubber Grainger B01LXJULOM
20 mL Scintillation Vials, Borosilicate glass, Disposable - VWR VWR 66022-004 With attached white urea cap and cork foil liner
3 inch by 1 inch microscopy slides VWR 75799-268
4C refrigerator Thermo Fisher Scientific FRGG2304D Any commercial 4C refrigerator will suffice.
50 mL tubes VWR 21008-178
6-well cell culture plates VWR 10062-892 Alternative brands may be used
Acetone VWR E646 Alternative brands may be used
Bore vessel McMaster-Carr 89785K867 6 ft 316 steel tubing
Bovine Plasma Fibronectin Thermo Fisher Scientific 33010018 Comes as 1 mg of lyophilized protein
CaCl2 VWR/Amresco 97062-590
Cell Culture Incubator w/ CO2 Any appropriate CO2-supplied mammalian cell incubator will suffice.
Disposable Serological Pipets, Glass - Kimble Chase VWR 14673-208 Alternative brands may be used
DMEM/F-12, HEPES Thermo Fisher Scientific 11330032 Warm in water bath at 37°C for 30 minutes prior to use
DNase I Sigma-Aldrich DN25-10MG
Dope vessel McMaster-Carr 89785K867 6 ft 316 steel tubing
Ethanol VWR BDH1160 Dilute to 70% for sterilization
Fetal Bovine Serum, qualified, US origin - Gibco Thermo Fisher Scientific 26140079 Mix with growth media at 10% concentration (50mL in 500mL media)
Four 1/4-inch to 1" reducing unions Swagelok SS-1610-6-4 One reducing union for each inlet and outlet of each vessel
Freeze-dryer/lyophilizer Labconco 117 (A65312906) Any lyophilizer will suffice.
Hexagonal Antistatic Polystyrene Weighing Dishes - VWR VWR 89106-752 Any weigh boat will suffice
Hollow fiber membrane immersion bath 34L polypropylene tubs may be used or large bath containers can be fabricated from welded steel sheets
Hollow Fiber Membrane Spinneret AEI http://www.aei-spinnerets.com/specifications.html Made to order. Inner diameter = 0.8 mm, outer diameter = 1.6 mm
Hot plate/stirrer VWR 97042-634
Human TGF-β1 PeproTech 100-21
L-Ascorbic acid Sigma-Aldrich A4544-25G
L-Ascorbic acid 2-phosphate Sigma-Aldrich A8960-5G
L-glutamine (200 mM) - Gibco Thermo Fisher Scientific 25030081 Mix with growth media at 1% concentration (5mL in 500mL media)
MgCl2 VWR/Alfa Aesar AA12315-A1
Minus 80 Freezer Thermo Fisher Scientific UXF40086A Any commercial -80C freezer will suffice.
N2 gas cylinders (two)
NIH/3T3 cells ATCC CRL-1658 Alternative fibrogenic cell lines may be used.
N-methyl-2-pyrrolidone VWR BDH1141 Alternative brands may be used
Penicillin/Streptomycin Solution - Gibco Thermo Fisher Scientific 15140122 Mix with growth media at 0.1% concentration (0.5 mL in 500mL media)
Polysulfone Sigma-Aldrich 428302 Any polysulfone with an average Mw of 35,000 daltons may be used
Portable Pipet-Aid Pipetting Device - Drummond VWR 53498-103 Alternative brands may be used
PTFE tubing (1/4-inch inner diameter) McMaster-Carr 52315K24 Alternative brands may be used.
Rat skeletal muscle fibroblasts Independently isolated from rat skeletal muscle. Alternative fibrogenic cell lines may be used.
RNase A Sigma-Aldrich R4642
Silicone sheet McMaster-Carr 1460N28
Take-up motor Greartisan B071GTTSV3 200 RPM DC Motor
Tris HCl VWR/Amresco 97063-756
Two needle valves Swagelok SS-1RS4

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References

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생명 공학 문제 144 비 계 조직 공학 재생 의학 섬유 세포 외 기질
희생 빈 섬유 막 세포 배양을 통해 기질 섬유의 생산
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Roberts, K., Kim, J. T., White, S.,More

Roberts, K., Kim, J. T., White, S., Hestekin, J., Wolchok, J. C. Production of Extracellular Matrix Fibers via Sacrificial Hollow Fiber Membrane Cell Culture. J. Vis. Exp. (144), e58791, doi:10.3791/58791 (2019).

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