Summary
このプロトコルは、β細胞からのインスリン分泌のプロキシとしてインスリン連結ガウシアルシフェラーゼを使用して中程度のスループットで迅速な低コストルシフェラーゼアッセイを行う方法について説明する。アッセイは、ほとんどの発光プレートリーダーおよびマルチチャンネルピペットで行うことができる。
Abstract
分泌されたインスリンサンプルコレクションに対する抗体ベースのアッセイを行うには、通常、アッセイ時間の1日に数時間を要し、特定のアッセイに応じて高価になる可能性があります。分泌されたルシフェラーゼアッセイは、結果を促進し、サンプルあたりのアッセイコストを大幅に下げる。ここでは、C-ペプチド内に遺伝的に挿入されたガウシア・ルシフェラーゼを用いて膵β細胞からのインスリン分泌活性を測定する比較的使用されていないアプローチを提示する。プロインスリンのタンパク化処理中に、C-ペプチドは、インスリンと共分泌されるインスリン分泌性小胞内のルシフェラーゼを放出して取り除く。結果はルシフェラーゼアッセイの速度のためにサンプル収集後数分以内に得ることができる。アッセイの限界は、インスリン分泌の相対測定であり、絶対定量ではないことです。しかし、このプロトコルは経済的でスケーラブルであり、ほとんどの標準的な発光板リーダーを使用して実行することができます。アナログおよびデジタルマルチチャンネルピペットは、アッセイの複数のステップを容易にします。多くの異なる実験バリエーションを同時にテストすることができます。焦点を絞った条件が決定されたら、標準曲線を用いた抗体ベースのアッセイを使用してインスリン濃度を直接測定し、ルシフェラーゼアッセイ結果を確認する必要があります。
Introduction
ここで提示される方法は、遺伝子組み換えβ細胞株からのインスリン分泌を96ウェルプレート形式で迅速かつ手頃な価格でアッセイすることを可能にする。このプロトコルの鍵は、自然に分泌されたガウシア・ルシフェラーゼ(GLuc,~18 kDa)をCペプチドに挿入してインスリン・ガウシア(InsGLuc)1、2を生成するインスリンの改変バージョンである(図1参照)。GFP(〜25kDa)のような他のより大きなタンパク質は、インスリンのC-ペプチドに正常に挿入され、プロインスリン-GFPからインスリンおよびGFP-C-ペプチド3、4への予想される翻訳後処理を示した。このプロトコルのアッセイでは、GLucは哺乳類発現に対してコドン最適化されており、2つの変異が輝きのような運動学5、6を増強するために導入されている。治療条件の複数の組み合わせおよび複製は96ウェルプレート形式で容易にテストすることができ、分泌結果は実験の直後に得ることができる。
前述の2として、主な利点は、このルシフェラーゼベースの分泌測定(< $0.01/ウェル)の低コストであり、酵素結合免疫吸着アッセイ(ELISA)の比較的高いコストと技術的側面と区別します(> $2/well) および均質な時間分解蛍光 (HTRF) またはその他のフェルスター共鳴エネルギー伝達 (FRET) ベースの抗体 (> $1/well) アッセイ.標準曲線を参照してインスリンの濃度を測定するこれらの抗体ベースのアッセイと比較して、InsGLucアッセイは、プレート上のウェルを制御するための相対的な比較として分泌活性を測定します。そのため、すべての実験には適切なコントロールが必要です。この区別は、迅速かつ安価な測定を可能にするトレードオフです。しかしながら、InsGLuc分泌は、ELISA1,2によって測定されたインスリン分泌と高度に相関することが実証されている。この技術は、ハイスループットスクリーニング1、2、7のためにスケールアップされ、電圧ゲートカリウムチャネル阻害剤7を含むインスリン分泌の新規モジュレーターの同定につながっています7β細胞機能の天然物阻害剤と同様に、染色体A28.InsGLuc の使用は、インスリン分泌への影響について多くの異なる治療条件を継続的にテストする予定の研究者に最も適しています。フォローアップ実験では、親のβ細胞株で重要な知見を繰り返し、マウスやヒトの島で最適に、抗体ベースのアッセイを用いてインスリン分泌を測定する必要があります。
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Protocol
1. 試薬、媒体及びバッファーの調製(表1)
- 高グルコース(4.5g/L)ダルベッコの改変イーグル培地(DMEM)の500mLでMIN6完全培地を調製:15%胎児ウシ血清(FBS)、100単位/mLペニシリン、100μg/mLストレプトマイシン、29μg/mMβ-メルカプトエタノール。
注:この場合の安定した細胞株は、G418抗生物質の250 μg/mLで維持される。 - 5mM KCl、120mM NaCl、15mM HEPES(pH 7.4)、24mM NaHCO 3、1mM MgCl2、2mM CaCl 2、および1mg/mL放射性免疫アッセイ級ウシ血清(BSA)を含む溶液を作製することにより、クレブスリンガー重炭酸塩バッファー(KRBH)を調製する。ブドウ糖は、2Mストックから指定されたところに添加される。
注:KRBHは、インスリンおよび/またはガウシアルシフェラーゼ分泌を評価するために刺激の有無にかかわらず細胞をインキュベートするために使用されます。 - コエレンテラジン(CTZ)ストック溶液を以下のように調記する。濃縮HClの106μLをメタノールの10mLに添加して酸性化メタノールを調出す。次に、1mg/mLで酸性メタノールに凍結乾燥CTZを溶解し、スクリューキャップチューブに-80°Cで保存します。
注:これらの株式は、適切な貯蔵の1年後であっても、ルーチンルシフェラーゼアッセイで十分な活性を保持します。 - 文献9に基づくガウシアルシフェラーゼ(GLuc)アッセイバッファーと特許情報10を調製し、96ウェルプレート形式でガウシアルシフェラーゼアッセイの半減期を支援する。式を使用する: 25 mM トリス pH 8, 1 mM EDTA, 5% グリセロール, 1 mg/mL Na2PO4,300 mM アスコルベート, 200 mM Na2SO3水中.-20 °Cで株式を凍結します。解凍後、バッファを4°Cに保管してください。
- ガウジアルシフェラーゼ作動溶液を調付するには、1mg/mL(2.36 mM)CTZストック溶液の4.2 μL/mLをGLucアッセイバッファーに添加します。これはアッセイの5 μMの最終的な集中がある10 μM CTZの2倍の働く解決をもたらす。
2. InsGLuc MIN6細胞の培養と分泌アッセイの播種
- MIN6細胞を培養するには、標準的な細胞培養技術を用いて、細胞を週に1回試用し、種をまく。2 ~3 日ごとにセル上のメディアを変更します。G418の250 μg/mLなどの適切な選択抗生物質をメディアに含めます。
- 実験のために毎週十分な数の細胞を提供するために、T75フラスコの細胞を維持する。培養の10 mLでT75当たり6 x 106細胞を播種すると、通常、培養7日後にT75当たりの合計30 x 10 6~40 x 106細胞が得られます。
- 96ウェルプレートにめっき用の細胞を調製するには、InsGLuc MIN6細胞のコンフルエントT75をPBSで2回洗浄し、2mLのトリプシンを添加する。37°Cで~5分間、または細胞がフラスコから解離するまでインキュベートします。ミリリットル当たりの細胞濃度を決定します。
- 完全な培地中の細胞を1 x 106セル/mLに希釈し、96ウェルプレートでウェル当たり100 μLで1x105細胞を得ます。細胞は、3-4日後のアッセイに対して十分に結合している必要があります。
注:培養期間を延長するために、細胞濃度の半分をめっきすることができる。細胞が実験的治療を受ける場合を除き、アッセイの日までにメディアの変更は必要ありません。
- 完全な培地中の細胞を1 x 106セル/mLに希釈し、96ウェルプレートでウェル当たり100 μLで1x105細胞を得ます。細胞は、3-4日後のアッセイに対して十分に結合している必要があります。
3. グルコース刺激ガウシアルシフェラーゼ分泌アッセイ
- アッセイの日に実験に十分なKRBHを準備する(ステップ1.2)。96ウェルプレート当たり50mL以上のKRBHが必要となるため、実験に十分なバッファを確保するために少なくとも75 mLを準備してください。薬物治療条件の異なる組み合わせが希釈のためにKRBHを必要とする場合は、余分なバッファを準備します。
- グルコースフリーKRBHで貯水池を準備します。実験室の流しの上にプレートを素早く反転させ、余分な媒体を取り除くためにペーパータオルの積み重ねにしっかりと拭くことによって、96ウェルプレートから媒体をデカントします。
- 電子または手動の8チャンネルピペットを使用して、96ウェルプレートを横切る貯水池からピペット100 μL /ウェルKRBH。合計 2 回の洗い流しを繰り返します。
- (急性化合物治療の任意ステップ)薬物治療を行わない場合は、変更せずに手順3.5および3.6に進みます。インスリン分泌に対する小分子の影響をテストするために、化合物は、前インキュベーション期間中、刺激期間、またはその両方の間に細胞に添加することができる。
- 1つの技術は、1.5 mLチューブでKRBHにバッチで化合物を追加し、調整可能な8チャンネルデジタルピペットを使用して、96ウェルプレートのチューブから細胞に薬物-KRBHを転送することです。
注:調整可能なピペットが利用できない場合は、薬物KRBHのレプリカ96ウェルプレートを作ることができ、標準的な8チャンネルピペットを使用してバッファを転送することができます。治療パラダイムへのさらなる改変は、アッセイ前の培養物中の24時間の細胞を治療するために行うことができ、前述の1、8。
- 1つの技術は、1.5 mLチューブでKRBHにバッチで化合物を追加し、調整可能な8チャンネルデジタルピペットを使用して、96ウェルプレートのチューブから細胞に薬物-KRBHを転送することです。
- グルコースまたは化合物の所望の濃度を含むKRBHの100 μLを追加し、1時間37°Cインキュベーターに皿を置きます。
注:実験レイアウトに応じて、8つの1.5mLチューブの列から96ウェルプレートの8列にチャンネル距離を遷移できる電子マルチチャンネルピペットを持つことは非常に便利です。 - プリインキュベーションの1時間後、バッファーをシンクにデカントし、ペーパータオルにしっかりとブロットします。ガウシア・ルシフェラーゼの蓄積された背景を洗い流すために、ウェルあたり100 μLのグルコースフリーKRBHをウェルあたり追加します。プレートを再度デカントし、ウェルあたり100 μLでプレートに制御および刺激条件を追加します。37°Cのインキュベーターに1時間置きます。
- マルチチャンネルピペットを使用して50μLの上清を慎重に収集し、必要に応じて治療条件間でチップを変更し、上清をきれいな不透明な白い96ウェルアッセイプレートに移します。
注:白壁のクリアボトムプレートは、必要に応じて使用できますが、かなりの量のルシフェラーゼ信号が失われます。 - KRBH上清の50μLの収集後、試料を直ちにアッセイすることができる。必要に応じて、サンプルを数日間4°C(GLuc活性半減期〜6日間)または-20°Cで1ヶ月11、12までシールして保存する。
4. 分泌ガウシアルシフェラーゼアッセイ
- GLucアッセイ作動液を調付けるには、必要量のCTZストック溶液(4.2 μL/mL)をGLucアッセイバッファにピペットします。CTZの温暖化を防ぐには、-80°Cの冷凍庫でCTZを素早くピペットするか、チューブをドライアイスに保管してください。
- 電子マルチチャンネルピペットを使用して、収集されたKRBH上清を含む96ウェル皿全体で、GLucアッセイ作動液の50 μLをウェルあたり迅速に追加します。井戸の側面に液滴がある場合は、テーブルトップのスイングバケツ遠心分離機でプレートを簡単に回転させます。
- 数分以内に適切なプレートリーダーで発光を読み、0.1 sの積分時間で各ウェルを読みます。
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Representative Results
制御条件下でのアッセイの性能を測定するために、単純なグルコース用量応答曲線またはジアゾキシドパラダイムを用いる刺激を完了することができる。前者の場合、グルコースフリー条件で1時間の細胞を事前にインキュベートし、その後、グルコース濃度を増加させた状態で1時間の治療を行う場合、5mM以下での分泌活性はごくわずかで、分泌の増加は8以上に観察される。mMブドウ糖(図2)。35 mM KCl による刺激は、刺激された分泌のための肯定的なコントロールとしても機能します。刺激期間中に分泌調節薬を含めることは、分泌GLuc活性の予想阻害または増強を与えるべきである(図3)。例えば、ジアゾキシドはKATPチャネルを結合し、増加した[ATP/ADP]比で閉じるのを防ぎ、膜脱分極を遮断し、分泌13を防止する。パラメトキシンアンフェタミン(PMA)のような球状エステルは、タンパク質キナーゼC(PKC)を活性化し、インスリン分泌14のアンプが公知である。最後に、1μMエピネフリンによる刺激はα2A−アドレナリン受容体を活性化し、今度は異子体Gタンパク質複合体Giを活性化し、膜脱分極およびインスリン分泌を阻害する15。MIN6細胞は不滅の細胞株であるが、延長通過16後に適切なグルコース誘発インスリン分泌応答(応答曲線の左シフトなど)を失い始める。このため、液体窒素ストックからやり直す前に、すべてのMIN6細胞株を最大8週間(週に1回分割)定期的に培養することをお任せることをお知りめします。
図 1: InsGLuc レポーターの説明。(A)まず、安定したβ細胞株(この場合はMIN6細胞)をラットインスリンプロモーターからインスリンガウシアトランスジーンを発現して生成した。(B) 完全なタンパク質を合成し、内因性インスリンと共にインスリン顆粒に包装する。プロホルモンコンバーターセスは、アスタリスクによって示されるペプチドをクチズをクチズします。(C) 処理されたインスリンとガウシアは共分泌され、ATP非依存性の酸素依存性反応におけるCTZの添加によってルシフェラーゼ活性が検出される。 この図のより大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
図2:InsGLucレポーターは、MIN6ベータ細胞からのインスリン分泌の忠実なプロキシである。(A) ガウシア・ルシフェラーゼ分泌を用いてグルコース濃度およびKCl(35mMM)を増加させるMIN6 InsGLuc細胞の応答。データは、3つの独立した実験に対する0mMグルコース条件と比較した平均折り畳みルシフェラーゼ活性±SEである。*, P < 0.05.この図は、Kalwat ら ACS Sensors 20161の許可を受けて変更されました。2016©アメリカ化学会。(B) MIN6細胞のInsGLucレポーターは、250 μM Dz処理がKATPチャネルを開いた場合に、細胞外KCl(35mM)が提供されない限り膜脱分極を遮断するジアゾキシド(Dz)パラダイムに対する期待される分泌応答を示す「トリガ」カルシウム流入を引き起こす。さらに、Dz+KCl条件下でのグルコース(20mM)のさらなる添加は、カルシウム流入のさらなる増加なしに起こる分泌の代謝増幅を明らかにする。この図のより大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
図3:グルコース刺激InsGLuc分泌時の分泌調節化合物の組み込み記載されているように96ウェル形式でめっきされたInsGLuc MIN6細胞を1時間のグルコースフリーKRBHでプリインキュベートし、次いでジメチルスルホキシド(DMSO)(0.1%)、KCl(35mM)、ジアゾキシド(250μM)、PMA(10)の有無にかかわらず20mMのグルコースの有無にかかわらず処理した。1hバーグラフのエピネフリン(1 μM)は、少なくとも3つの独立した実験の平均±SEを表す。この図のより大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
| クレブスリンガー重炭酸塩バッファー (KRBH) | |||
| ストック溶液または粉末 | 株式 | 最終濃度 | 100 mL |
| Kcl | 0.25メートル | 5 mM | 2 ミリリットル |
| 塩化 ナトリウム | 4 M | 120 mM | 3 ミリリットル |
| ヘップス、pH 7.4 | 1 M | 15 mM | 1.5ミリリットル |
| ナーコ3 | 0.5メートル | 24 mM | 4.8ミリリットル |
| MgCl2 | 1 M | 1 mM | 0.1ミリリットル |
| カクル2 | 1 M | 2 mM | 0.2ミリリットル |
| 水 | H2o | 88.4ミリリットル | |
| RIA グレードの BSA | 粉末 | 1 mg/mL | 100 mg |
| 実験の日に新鮮にしてください。 | |||
| ガウシアアッセイバッファー* | |||
| ストック溶液または粉末 | 株式 | 最終濃度 | 50 mL |
| リン酸二ナトリウム | 粉末 | 0.1% (1 mg/mL) | 50 mg |
| グリセロール | 40パーセント | 5パーセント | 6.25 mL |
| 臭化ナトリウム | 粉末 | 150 mM | 772 mg |
| エッタ pH 8 | 0.5メートル | 1 mM | 100 μL |
| トリス-HCl pH 8 | 1メートル | 25 mM | 1.25 メートル |
| アスコルビン酸* | 粉末 | 300 mM | 2.64グラム |
| Na2SO3** | 粉末 | 200 mM | 1.26グラム |
| 水 | 50mLまで | ||
| アリコートを-20°Cで保存し、一度に1つずつ解凍し、4°Cに保ちます。 | |||
| *Luft et al. BMC生化学2014年15:14からレシピを修正。 | |||
| 酸性MeOH | |||
| ストック溶液または粉末 | 株式 | 最終濃度 | 10 mL |
| メタノール | 100パーセント | 10 mL | |
| Hcl | 11.65メートル | 1.06パーセント | 0.106メートル |
| コエレンテラジン溶液 | |||
| ストック溶液または粉末 | 株式 | 最終濃度 | 1 mL |
| コエレンテラジン | 粉末 | 1 mg/mL (2.36 mM) | 1 mg |
| 酸性メタノール | 1 mL | ||
| ガウシアアッセイバッファの1 mLあたりのストックの4.2 μLは、2倍の作業溶液として使用される10 μM CTZをもたらします。 | |||
| 例えば、分泌ガウシアを含むKRBHサンプルの50 μLに2x作動溶液の50 μLを追加します。 | |||
表1:提示されたアッセイを実行するために使用されるバッファおよびストック溶液レシピ。
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Discussion
本明細損では、MIN6β細胞からのグルコース刺激インスリン分泌応答を迅速に評価する方法を提示する。アッセイで最良の応答を得るためには、MIN6細胞を適切な密度で播種し、それらが85-95%のコンフルエントになることを可能にすることが重要です。これは、一次島17、18、19、20、21およびMIN6の両方で起こる改善された細胞接触および同期のためにブドウ糖に対するβ細胞応答を改善するセル16,18.グルコース刺激に対する分泌応答の損失を防ぐためには、細胞を可能な限り低い通路で維持し、液体窒素ストックから新しいバイアルを解凍する前にわずか6〜8週間細胞を培養することが重要です。必要に応じて利用可能な機器に適応するために、プロトコルセクション2のめっき戦略に変更を加えることができます。InsGLuc MIN6細胞を96ウェルプレートに入れ、培養用の多くのウェル(反復を含む)を行うだけでなく、通常のラボ設定でメッキの精度を維持し、より高い井戸を持つ皿にめっきする。数値には、通常、ハイスループットスクリーニングコアで使用できる特別な機器が必要になることが多い。
インスリン分泌のための現在のアッセイには、ここに記載されている間接ルシフェラーゼアッセイ以外に、色分法読み出し(直接アッセイ)を使用するELISA、放射性読み出しを使用する放射性免疫アッセイ(競合アッセイ)、FRETベースの抗体が含まれます。インスリンを直接測定するために色素結合抗体間のFRETを使用する競合アッセイ22およびHTRF23、およびDNAアプタマー24。これらの方法のそれぞれは、独自の利点を持っていますが、一般的に、彼らはルシフェラーゼアッセイよりも高価で時間がかかります。InsGLucアッセイの1つの重要な制限は、共分されたルシフェラーゼの発光活性が実際のインスリン分泌の代理に過ぎないという事実である。さらに、ガウシア・ルシフェラーゼは、プロインスリンタンパク質内のN-およびC-テルミニニまたはガウシアのC-ペプチドの断片を有するガウシア間のルシフェラーゼ活性に期待される差はない。その他のタンパク質25.これは、処理されたインスリンを特異的に測定するアッセイを用いて確認研究の要件を強調する。インスリン分泌の直接的および間接的な測定に代わるものも、β細胞機能を評価するために使用することができる。ATP:ADP比、カルシウム流入率、NAD+ /NADH比、細胞外シグナル調節キナーゼ(ERK)活性化、または環状アデノシン一リン酸(cAMP)レベル26を含む読み出し用の様々な光学レポーターが存在する。
特にInsGLucの将来のアプリケーションは、ハイスループットスクリーニングにあるようです。このアッセイは、既に一握りの公開された小さな画面1、2、未公開の大画面で使用されており、7または進行中です。この技術の他の反復の開発は、グルカゴンやソマトスタチンなどの迅速な測定を容易にするためにルシフェラーゼを持つ他の分泌された島ホルモンのタグ付けを含むことができる。CRISPR/Cas9、レンチウイルス、または任意の適切なベータ細胞株へのトランスポザーゼ媒介挿入を含む代替アプローチを使用して細胞株が再作成される場合には、変更を行うことができます。元のレポーターに対する追加の可能な変更は、ガウシアの代替分泌ルシフェラーゼを置き換えるか、多重化されたアッセイのために異なるホルモンにリンクされた複数の異なる分泌ルシフェラーゼを組み合わせることを含む。細胞培養を超えて、CRISPR/Cas9技術は、適切なルシフェラーゼがゲノム中のIns2のCペプチドコード領域にノックされるマウスモデルを生成する可能性を提示する。このようなマウスは、GFPが同じC-ペプチド部位27にノックインしてトランスジェニックマウスが作成され、生体内またはex vivoにおけるルシフェラーゼアッセイを用いて内因性β細胞機能の測定を可能にすることを考えると実現可能であろう。
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Disclosures
著者は何も開示していない。
Acknowledgments
著者は、貴重な仕事と議論のためにコブ研究所のすべての現在および元メンバーに感謝し、行政支援のためのディオンヌウェア。マイケル・カルワットは、若年性糖尿病研究財団SRA-2019-702-Q-Rによってサポートされています。この作業は、NIH R37 DK34128とウェルチ財団グラントI1243を通じてメラニー・コブに可能になりました。この作業の初期の部分は、マイケル・カルワットにNIH F32 DK100113によってもサポートされました。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Cell culture materials | |||
| rIns-GLuc stable MIN6 cells | Parental MIN6 cell line stably expressing pcDNA3.1+rInsp-Ins-eGLuc and maintained in 250 ug/ml G418 | ||
| DMEM | Sigma | D6429 | 4.5 g/L glucose media |
| fetal bovine serum, heat-inactivated | Sigma | F4135 | |
| Penicillin/Streptomycin | Thermo-Fisher Scientific | SV30010 | |
| beta-mercaptoethanol | Thermo-Fisher Scientific | BP 176-100 | |
| glutamine | Thermo-Fisher Scientific | BP379-100 | |
| Trypsin-EDTA | Sigma | T3924-500 | |
| G418 | Gold Biotechnology | G418-10 | Stock solution 250 mg/mL in water. Freeze aliquots at -20C. |
| T75 tissue culture flasks | Fisher Scientific | 07-202-000 | |
| 96 well tissue culture plates | Celltreat | 229196 | |
| Reagent reservoirs (50 mL) | Corning | 4870 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Secretion assay reagents | |||
| BSA (RIA grade) | Thermo-Fisher Scientific | 50-146-952 | |
| D-(+)-Glucose | Sigma | G8270-1KG | |
| KCl | Thermo-Fisher Scientific | P217-500 | |
| NaCl | Thermo-Fisher Scientific | S271-3 | |
| Hepes, pH 7.4 | Thermo-Fisher Scientific | 50-213-365 | |
| NaHCO3 | Thermo-Fisher Scientific | 15568414 | |
| MgCl2 | Thermo-Fisher Scientific | M9272-500G | |
| CaCl2 | Sigma | C-7902 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Optional drugs for stimulation experiments | |||
| Diazoxide | Sigma | D9035 | Stock solution: 50 mM in 0.1N NaOH. Add equal amount of 0.1N HCl to any buffer where diazoxide is added. |
| epinephrine (bitartrate salt) | Sigma | E4375 | Stock solution: 5 mM in water |
| PMA (phorbol 12-myristate) | Sigma | P1585 | Stock solution: 100 µM in DMSO |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Guassia assay materials | |||
| Disodium phosphate (Na2HPO4) | Thermo-Fisher Scientific | S374-500 | |
| Glycerol | Thermo-Fisher Scientific | G334 | |
| Sodium Bromide | Thermo-Fisher Scientific | AC44680-1000 | |
| EDTA | Thermo-Fisher Scientific | AC44608-5000 | Stock solution: 0.5 M pH 8 |
| Tris base | RPI | T60040-1000.0 | Stock solution: 1 M pH 8 |
| Ascorbic Acid | Fisher Scientific | AAA1775922 | US Patent US7718389 suggested ascorbate can increase coelenterazine stability. |
| Na2SO3 | Sigma | S0505-250G | US Patent US8367357 suggested sulfite may decrease background due to BSA |
| Coelenterazine (native) | Nanolight / Prolume | 3035MG | Stock solution: 1 mg/ml in acidified MeOH (2.36 mM) |
| OptiPlate-96, White Opaque 96-well Microplate | Perkin Elmer | 6005290 | Any opaque white 96 well plate should be sufficient. Clear bottom plates will also work, however some signal will be lost. |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Equipment | |||
| Synergy H1 Hybrid plate reader or equivalent | BioTek | 8041000 | A plate reader with luminescence detection and 96-well plate capabilities is required. |
| 8-channel VOYAGER Pipette (50-1250 µL) | Integra | 4724 | An automated multichannel pipette is extremely useful for rapid addition of luciferase reagents and plating cells in 96 well format |
| 8-channel 200 µL pipette | Transferpette S 20-200 µL | 2703710 |
References
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