L’extraction de l’ADN est l’élimination et la purification de l’ADN des cellules. Tout d’abord, les cellules sont lysées - brisées - généralement par une combinaison de perturbation physique et de traitement avec des produits chimiques, tels qu’un détergent qui dissout la cellule et les membranes nucléaires. Le SDS ou dodécylsulfate de sodium est un détergent couramment utilisé qui agit en solubilisant les protéines et les lipides qui composent ces membranes. Le contenu peut alors flotter librement dans la solution environnante.
Ensuite, l’ADN doit être séparé des autres molécules présentes. La protéinase K ajoutée à la réaction brisera les liaisons peptidiques et digérera les protéines contaminantes. Du sel est ensuite ajouté à l’échantillon, ce qui stabilise les groupes phosphate chargés négativement dans le squelette de l’ADN et, après l’ajout d’alcool glacé, précipite l’ADN hors de la solution. Le précipité blanc est recueilli en le faisant tourner dans une centrifugeuse où il se dépose au fond du tube. Après l’avoir lavé et remis en suspension dans une solution tampon, l’ADN extrait peut enfin être utilisé dans des applications de recherche ou de biotechnologie.
Certaines applications de la biotechnologie, comme l’empreinte génétique, qui permet d’identifier de nouveaux modèles d’ADN spécifiques à un ou plusieurs individus, impliquent l’utilisation d’enzymes de restriction. Les enzymes de restriction sont des molécules qui interagissent avec l’ADN et reconnaissent des séquences spécifiques. Une fois leur site spécifique identifié, ils coupent l’ADN. Cela aura pour conséquence que le brin sera coupé en un ou plusieurs morceaux linéaires. Si l’ADN extrait était un plasmide, un morceau d’ADN circulaire que l’on trouve le plus souvent chez les bactéries, toute coupure entraînera la formation d’un ou de plusieurs fragments linéaires de l’ADN. Différentes enzymes de restriction reconnaissent différentes séquences d’ADN, de sorte que l’utilisation d’une combinaison de celles-ci peut entraîner la production de fragments distincts.
Dans l’empreinte génétique, nous pouvons ensuite examiner ces fragments à l’aide d’une technique appelée électrophorèse de l’ADN ou du gel. Pour préparer des gels, l’agarose en poudre est mélangée à un tampon et chauffée jusqu’à ce qu’elle soit dissoute. Une coloration nucléotidique est ensuite ajoutée au mélange chaud, puis cette solution est versée dans le moule de coulée. Un peigne est inséré pour former les puits. Une fois solidifié, le gel est transféré dans une boîte de gel remplie de tampon et le peigne est retiré. Un mélange de référence de fragments d’ADN teinté de longueurs connues, l’échelle d’ADN, est ajouté à un puits et les échantillons d’ADN teintés d’intérêt sont chargés dans les puits restants. Le boîtier est connecté à une source d’alimentation et la mise sous tension induit la migration des groupes phosphate chargés négativement dans les nucléotides d’ADN à travers le gel vers l’anode, l’extrémité positive. Les petits morceaux se déplacent plus rapidement que les plus gros fragments, qui migrent difficilement.
Une fois l’essai terminé, le gel est exposé à la lumière ultraviolette pour visualiser la coloration nucléotidique dans les échantillons d’ADN. Leur présence peut être confirmée en fonction de leur emplacement relatif aux bandes de l’échelle. Étant donné que l’ADN avec des séquences différentes aura des sites coupés à différents endroits, cela peut produire de nouveaux modèles de bandes, ou empreintes digitales, qui peuvent être utilisés pour distinguer des individus ou des profils d’ADN variants.
Dans ce laboratoire, vous effectuerez des extractions d’ADN à l’aide d’un tampon avec et sans SDS pour évaluer l’importance des détergents dans l’isolement de l’ADN, puis digérerez l’ADN plasmidique avec différentes enzymes de restriction pour examiner les profils d’ADN résultants.
