Abstract
该方法描述了一种敏感，特异的，可靠的和可重现的反相高效液相色谱法（RP-HPLC）测定法开发并验证胞外嘌呤核苷酸和核苷通过纯化的慢性淋巴细胞性白血病产生（CLL）细胞的不同培养条件下的量化。腺苷5'-一磷酸的（AMP），腺苷（ADO）的色谱分离和肌苷（INO）在RT上被用于极性化合物的保留的基于二氧化硅的，反相柱进行。该方法包括一个二元流动相，它由7 mM醋酸铵和乙腈为1.00毫升/分钟的流速。洗脱液使用一光电二极管阵列UV检测器设定在260nm监测。标准校正曲线生成以计算方程式为每个嘌呤化合物的分析定量。系统控制，数据采集和分析，然后进行。运用这一协议，AMP，INO和ADO分别洗脱在7,11和11.9分钟，和总运行时间为每个样品20分钟。该协议可以使用培养基作为基质施加到不同类型的细胞和细胞系（包括悬浮液和粘附）。的优点是容易和快速的样品制备和分析少量上清液的要求。此外，使用无血清培养基中允许跳过用乙腈沉淀蛋白的步骤，影响嘌呤化合物的最终浓度。一种该方法的局限性是每个单个样品运行之前运行平衡柱的要求，使得在实验的总运行时间更长，并防止高通量筛选应用。
Introduction
腺苷（ADO）是嘌呤核苷通过糖苷键连接于核糖分子部分连接的腺嘌呤分子。当存在于细胞外的环境中，它由免疫系统的作用可以防止过度的损伤的细胞。这种作用已用不同的疾病模型，如结肠炎1，糖尿病2，哮喘3，败血症4，和局部缺血性损伤的5突出。其中一个主要的ADO功能是在肿瘤微环境的免疫应答的抑制，促进肿瘤免疫逃避6。出于这个原因，参与ADO形成和信令的机制相当的治疗利益7。
在组织微环境的ADO水平正常生理条件下，当然低于免疫细胞的灵敏度阈值相对较低。然而，缺氧时，局部缺血，炎症，感染，代谢压力和肿瘤转型，他们迅速增加8。响应于组织扰动信号升高胞外ADO水平具有双重功能：报告组织损伤以自分泌和旁分泌方式并产生可通常被视为细胞保护组织反应。
胞ADO可以通过多种机制，包括从由因为通过腺苷脱氨酶操作受损降解的核苷转运9或积累介导的细胞内区室释放而形成。导致增加的胞外ADO水平的主要途径包括ectonucleotidases，这是膜相关ectoenzymes通过从死亡或垂死细胞释放的核苷酸phosphohydrolysis产生的ADO级联的作用。该途径通过CD39的顺序动作前进（ectonucleoside三磷酸diphosphohydrolase-1），该转换外腺苷5'-三磷酸（ATP）或腺苷5'-二磷酸（ADP）腺苷5'-一磷酸（AMP）和CD73（5'-核苷酸）的，它转换AMP到ADO 10。
胞ADO通过结合到4个跨膜ADO受体，即A 1，A 2A，A 2B和A 3引出其生理反应。每个受体有ADO和特定的组织分布不同的亲和力。所有的受体具有七次跨膜域和是G-蛋白偶联于细胞内的GTP结合蛋白（G蛋白），即可以诱导（G蛋白）或抑制（Gi蛋白）腺苷酸环化酶活性，并随后在生产细胞内cAMP。因此，在过程中的生理反应11上的细胞内的蛋白激酶活性的胞质cAMP水平的影响的变化。在生理条件下细胞外ADO是低于1微米，它可以激活不加区别A 1，A 2A和A 3受体。然而，A2B亚型的激活需要相当高的核苷的浓度，如病理生理条件下产生的。可替代地，细胞外ADO可以被降解为肌苷（INO）腺苷脱氨酶（ADA）和CD26，一个ADA络合蛋白在细胞表面上定位ADA。另一种可能性是，ADO是由细胞通过平衡型核苷转运（ENT）和磷酸化，以AMP通过ADO激酶蛋白12,13内化。
该协议的目的是描述反相高效液相色谱法（RP-HPLC）的分析方法在单次运行来量化基板AMP和产品ADO和INO，由人淋巴细胞作为生成的。最初使用来自慢性淋巴细胞白血病（CLL）的患者，其特征为CD19 + / CD5 + B淋巴细胞组成型表达CD39 14,15的成熟群体的膨胀细胞得到我们的经验。我们大约30表现％CLL患者表达CD73胞外酶，而这表型预后不良相关16。白血病细胞共表达CD39和CD73的这种亚群可以积极借鉴ADP和/或AMP产生胞ADO。 CD73 + CLL细胞用α预孵育，β亚甲基ADP（APCP），CD73酶活性的已知抑制剂，完全阻断细胞外的ADO合成确认CD73表示级联16的瓶颈酶。
CLL细胞还表达ADA和ADA的络合蛋白CD26，这是负责ADO转化成INO。通过使用特定的ADA抑制剂，如赤-9-（2-羟基-3-壬基）我wiadenine（EHNA）盐酸盐和deoxycoformycin（DCF），它可以阻止细胞外ADO降解成INO。此外，预处理与潘生丁联合ADA抑制剂，阻止核苷转运，增强细胞积累ADO上清。
然后，我们扩展了这个协议从其他谱系，包括T淋巴细胞和骨髓细胞，证实CD73依赖ADO生产的细胞。这些结果表明，此HPLC协议是高度通用的，并且它可以被应用到不同的细胞谱系和对不同的培养条件下（ 图1）。
负责细胞外ADO生产酶促机械的 图1 示意图。腺苷5'-三磷酸（ATP）和/或腺苷5'-二磷酸（ADP）可通过CD39降解为腺苷5'-一磷酸（AMP），其中又通过CD73转化成核苷腺苷（ADO）。一旦ADO技术是在细胞外空间中产生，它可以重新进入通过核苷转运（ENT）细胞中，被转化成肌苷（INO）或绑定到不同类型的P1 ADO受体。 请点击此处查看该图的放大版本。
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Protocol
CLL的血液样本是按照机构准则和赫尔辛基宣言得到的。
1. CLL患者的血样淋巴细胞白血病的分离
- 收集在肝素钠（绿顶）管17血样。
- 使1：3稀释的全血的RT 1×磷酸盐缓冲盐水（PBS）中。
- 通过密度梯度离心纯化从血样外周血单核细胞（PBMC）。
- 在一15ml离心管底层5毫升密度离心介质（ 如，聚蔗糖）的，并仔细转移的10ml稀释的血液。立时离心机在1500 XG在室温下20分钟。
- 与连接到真空泵的玻璃巴斯德吸管将上清液吸出一部分，并在密度离心媒体和稀释的血浆之间的相间用5毫升吸管收集PBMC环。转移至50毫升离心管中，并用PBS洗（50米升最终体积）。离心机在500×g离心在4℃下5分钟。
- 吸用玻璃巴斯德吸管取上清液，重悬在50毫升PBS中的沉淀，并用血细胞计数器计数细胞。
- 用抗CD19染 色外周血单个核细胞和抗体-CD5流式细胞仪对以下免疫的标准协议，并检查外周血单个核细胞亚群组成18。
注：CLL淋巴细胞CD19 + / CD5 +。 - 检查CD19 + / CD5 +细胞的％使用流式细胞仪18。净化从病人的B淋巴细胞与CD19 + / CD5 +下列步骤2中为B细胞19的负隔离的详细说明白血病细胞的≥95％。
2.负分离纯化白血病B细胞
- 悬浮10 7的PBMC / ml的在PBS中的0.1％牛血清白蛋白（BSA）2mM EDTA的，pH值7.4（隔离缓冲液）。
- 加101;鼠单克隆抗-CD3，-CD14和10 7个细胞-CD16初级抗体克孵育在4℃下30分钟。
- 洗用隔离缓冲器和离心将细胞在500×g离心5分钟，4℃。
- 重悬在隔离缓冲器中的细胞以10 7个PBMC中/毫升。
- 与细胞温育之前，重悬羊抗小鼠IgG在小瓶磁珠。转移100微升每10 7个细胞珠的管中。
- 添加1毫升分离缓冲液中，放置在管中一个磁体保持1分钟。丢弃用5毫升吸管上清液。
- 从磁体取出管并在100μl分离缓冲液的重悬洗涤珠。
- 孵育10 7细胞用100μl的30分钟的磁珠在4℃下温和倾斜和旋转。
- 放置管在磁体保持2分钟，并与CD19 + / CD5 +未结合的细胞转移上清用5毫升吸管新管。
- 在隔离协议结束时，染色用抗CD19的细胞的100微升和-CD5抗体进行流式细胞术，并在4℃下孵育30分钟。清洗细胞用3ml PBS 1％BSA的，丢弃过量上清液，并通过流再次检查B细胞纯度19流式细胞术。
注意：如果B细胞的纯度大于95％的低执行额外的阴性分离步骤。
3.标准和抑制剂股票方案的制备
- 为了制备AMP，称出0.00345克的AMP并溶解在5ml无血清培养基的具有AMP的2mM的标准溶液。
- 为了准备ADO，掂量出0.00265克ADO和溶解在5毫升的无血清培养基中有ADO的2毫米标准的解决方案。
- 为了制备INO，称出0.00268克INO的并溶解在5ml无血清培养基的具有INO的2mM的标准溶液。
- 准备AMP，ADO的400μm的解决方案，INO通过在4毫升无血清培养基（5ml最终体积）的混合将1ml 2mM的储备液。
- 使1：4稀释各400μM的标准溶液通过在1500微升无血清培养基（2ml最终体积）的吸移500微升400μM溶液，得到100μM的浓度。
- 制备各化合物的系列稀释液中的无血清培养基，得到以下浓度：100μM - 50μM - 25μM - 10μM - 5微米 - 2.5微米 - 1μM - 0.5μM - 0.25μM。
注意：例如，移液管1毫升1毫升的无血清培养基的100μM的溶液（1：2稀释），得到50μM的浓度，并与其余的稀释液进行。
- 制备铝塑复合板溶解在PBS中的10mM储备溶液;分装现货 - 30℃。
- 制备EHNA盐酸盐，DCF达莫溶解于二甲亚砜中10mM的储备溶液（DMSO）;等分和股票-30C。
4.项目的HPLC方法
- 通过0.770克乙酸铵溶解在2升的双去离子水（缓冲液A）制备7 20mM乙酸铵缓冲。调整用盐酸将pH值3.0。
- 准备至少含有2升超纯乙腈HPLC（缓冲液B）的玻璃瓶和连接保护柱和柱的HPLC。
注意：列和缓冲液是在RT同时在使用中。 - 登录到HPLC软件，并选择“浏览项目”按钮。转到“文件”菜单，选择“新方法”，然后“仪器方法”。
- 方案的平衡柱法按表1。设定为1.00毫升/分钟的流速和编程UV检测器在260nm处读取。保存仪器方法，并从“文件”菜单中再次选择“新方法”，然后“方法设置”。选择之前保存的仪器方法并保存当前方法使用相同的名称设置的。
| 时间 | 流动速率（毫升/分钟） | ％一个 | ％B |
| 1.00 | 100 | 0 | |
| 1.24 | 1.00 | 100 | 0 |
| 6.22 | 1.00 | 2 | 98 |
| 18.65 | 1.00 | 2 | 98 |
表1： 平衡柱方法的塔的平衡溶剂变化示意图。缓冲液A：7 mM醋酸铵，pH值3.0。缓冲液B：乙腈。
- 重复步骤4.3 1.00 s的流速在表2所示的运行样本方法编程设定升/分钟和方案的UV检测器在260nm处读取。保存该仪器的方法和如在步骤4.4中所述，保存方法组重复相同的过程..
| 时间 | 流动速率（毫升/分钟） | ％一个 | ％B |
| 1.00 | 0 | 100 | |
| 3.74 | 1.00 | 0 | 100 |
| 13.71 | 1.00 | 15 | 85 |
| 17.00 | 1.00 | 100 | 0 |
| 20.00 | 1.00 | 100 | 0 |
表2： 运行样品的方法 。对嘌呤类物质的HPLC测定溶剂的变化示意图。浅黄色急诊室：7 mM醋酸铵，pH值3.0。缓冲液B：乙腈。
- 选择“运行样品”按钮，从“文件”菜单中选择“新的样品组方法”。
- 选择“空”选项，并输入小瓶（在自动进样器）的注入量（50μL）的数量，样品名称，。选择“方法设置”栏中以前保存的方法组，并进入总运行时间（分钟）。
注：在每个样品运行前的“方法组”列中输入平衡柱法（ 表1），并进入总运行时间（分钟）。
5.生成一个标准曲线各化合物的
- 注入50μl的空白（特定无血清培养基中，其中不含有腺苷脱氨酶），并按照表1和表2所描述的方法的每个标准样品的。
- 使用柱平衡方法（ 表1）每个样品运行之前和在表2中描述的梯度条件，以获得足够的峰分离。请参考表3 AMP，ADO和INO这些HPLC条件下报道的保留时间。
| 保留时间 | λ 最大 | |
| AMP | 8.00分钟 | 260 |
| INO | 11.00分 | 260 |
| ADO | 11.90分 | 260 |
表3：嘌呤类化合物的保留时间为AMP，ADO和INO观察到典型保留时间。 UV检测器被编程在260nm阅读。
- 暗算每个标准的标称浓度的峰面积，以获得九个点校准曲线（100，50，25，10，5，2.5，1，0.5，0.25微米）。
- 计算直线的方程AMP，ADO和INO：Y = mx + b中 ，
其中x是μM浓度和y对应的峰面积。
图2 代内部标准曲线。对于ADO代表校准标准曲线，并获得了相关方程。 请点击她的E要查看此图的放大版本。
6.预处理与抑制剂和孵化与基材（AMP）
- 为了测试AMP消耗，ADO和INO代无CD73，ADA的抑制和核苷转运，悬浮2×10 6个 CD19 + / CD5 + CLL细胞（分离步骤1的纯化和2）在250微升无血清培养基中，并板的细胞在48孔板（或在1.5ml微量离心管）。
- 在培养基中1000 APCP（10毫米）的储备溶液，以获得最终浓度10μM：转向方框CD73的酶活性，稀释1。悬浮2×10 6个 CLL细胞在250微升含铝塑复合板培养基并在细胞培养培养箱中于37℃预处理60分钟。
- 到方框的ADO入INO转换，稀释1：1000 EHNA盐酸盐和/或DCF的在无血清培养基中的储备溶液（均为10毫米）具有最终浓度10μM。重悬在250微升含有EHNA和/或DCF培养基为2×10 6个白血病细胞。在细胞培养培养箱温育30分钟，在37℃。
- 在无血清培养基中1000达莫的储备溶液（10毫摩尔）为具有最终浓度10μM：转向方框ADO通过核苷转运的摄取，稀1。悬浮2×10 6个 CLL细胞在250微升含双嘧达莫培养基，并在细胞培养培养箱中于37℃孵育30分钟。
- 准备铝塑复合板，EHNA，DCF的单一解决方案，双嘧达莫稀释1：1,000 400μMAMP。
- 加入250微升400μMAMP或AMP加抑制剂，得到200μM的AMP的终浓度。包括在不存在衬底的状态，以被用作空白样。
- 孵育30到37℃60分钟。
注意：实验测定AMP和孵育时间的最佳浓度。 - 在t他最终的温育时间，收集500微升上清液中冷离心管（在冰上），并立即在17000 xg离心离心在4℃下5分钟。
- 转移上清液在新的1.5 ml微量离心管，并立即在-80℃下存储或进行用于HPLC运行样品制备。
7.样品制备HPLC
- 过滤器在新的1.5 ml离心管中的上清液用0.2微米注射过滤器。使用1毫升注射器过滤。
- 如果HPLC系统配备有自动进样器，准备用于HPLC玻璃瓶中，并使用0.1毫升微刀片样品的小体积。
- 传送至少100微升样品在用微量或玻璃巴斯德吸管的玻璃小瓶中。小心无气泡转移和与螺旋盖关闭小瓶中。
- 样品现已准备好通过RP-HPLC分析。
8. HPLC Measu嘌呤rements
- 选择“运行样品”按钮;从“文件”菜单中选择“新的样品组方法”。
- 选择“空”选项，并指出：小瓶（在自动进样器）的注入量（50μL）的数量，样品名称，。
- 选择平衡柱方法并在表1和表2中记载的运行样本方法，分别用于所有随后的空白和样品运行。
注：每个样品运行前将平衡柱法（ 表1）。 - 注入50μl的空白（无血清培养基）和每个样品的。
- 确定每个样品中的嘌呤的浓度，通过在表3中描述的保留时间获得的峰面积定量AMP，ADO和INO。
- 选择“进程”按钮旁边的“集成”选项。手动或者选择启动每个单峰的第二终点，获得面积测量。这是通过跟踪峰的开始和结束点之间的直线进行。
- 确定μM浓度申请标准曲线得到的方程为：y = mx + b中 ，其中x表示μM浓度和y是未知样品测得的峰值的面积。
注意：ADO校准标准曲线的一个实例被报告于图2，其中：x =（γ区- 981.02）/ 40026
- 考虑到重悬于0.500毫升介质的2×10 6个细胞，计算AMP的微摩尔，ADO和INO消耗和/或通过应用下列比例10 6个白血病细胞产生的：
微摩尔：千毫升= X微摩尔：0.250毫升
注意：1,000ml中的微摩尔（数微摩尔在1升）的等同于μM浓度和x是Nu的微摩尔核苷酸或核苷由10 6个细胞中产生。- 最后，转换成微摩尔以10 6 CLL细胞消耗和/或生产毫微摩尔：
纳摩尔=微摩尔×1,000
- 最后，转换成微摩尔以10 6 CLL细胞消耗和/或生产毫微摩尔：
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Representative Results
为了评估从一个代表性的CLL患者新鲜纯化的PBMC白血病细胞的百分比（％），将细胞标记与抗CD19和抗CD5抗体。 图3的左图表示具有活细胞上的选择性栅极的细胞荧光点图; 图3示出了从CLL患者PBMC的一个例子之前（中图）和后（右面板）的B细胞纯化。
在CD73 + CLL细胞的嘌呤化合物的高效液相色谱量化的一例在图4A中表示。在260nm AMP，INO和ADO的不同的保留时间允许化合物的同时定量。当在测定正确运行中，所有的核苷酸和核苷有足够的峰分离。从200μM的AMP为底物的浓度开始，为ADO和INO得到的峰是清晰可见，浓度在标准校准曲线的范围内。但是，使用也较低浓度的底物（ 例如，100μM）将给出良好的结果。峰积分后，将各峰的面积换算成μM浓度最后在通过使用标准曲线的由10 6个白血病淋巴细胞产生化合物的纳摩尔。
后，用10μM的APCP预处理60分钟由CD73 +细胞产生的ADO HPLC色谱图表明胞外ADO合成（ 图4A）的一个完整的封锁。因为快速酶转化的ADO成INO由ADA / CD26复合操作的，CLL细胞用10μM的EHNA盐酸盐或10μM的DCF的预处理是必需的，以抑制ADA的降解。在这些条件下的细胞外的ADO浓度显著增加。 网络代表色谱图古尔4亮点预处理与盐酸EHNA和/或DCF（ 图4B - C）如何完全抑制ADO转化为INO。
图3 的CD19 + / CD5 + 白血病细胞中有代表性的CLL患者的新鲜纯化的PBMC 的％细胞荧光分析 。门控活细胞（左图）后，CD19 + / CD5 + CLL细胞的％进行评价。 B细胞（中图）的负隔离之前，白血病细胞的％对应于75％。净化（右图）CLL B淋巴细胞的％达到95％后， 请点击此处查看该图的放大版本。
图4. 量化暴露于AMP和不同抑制剂后消耗和产生由白血病细胞胞外嘌呤核苷酸和核苷的（A） 中由CD73 +白血病淋巴细胞具有或不具有与α，β亚甲基预处理产生的ADO的代表性色谱图和INO ADP（铝塑复合板，10μM，60分钟），CD73酶活性的特异性抑制剂。 （B）选自CD73 + CLL细胞的上清获得的代表性HPLC色谱图进行预处理或不与腺苷脱氨酶（ADA）抑制剂赤-9-（2-羟基-3-壬基）腺嘌呤（EHNA）盐酸盐（10μM，30分钟）用AMP为底物（200μM，30分钟）孵育前。 （C）从CD73的上清液得到代表色谱图
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Discussion
这里所描述的协议允许评价在细胞培养介质中的CD39 / CD73 adenosinergic机械从纯化的人白血病细胞的活性。通过这样的高效液相色谱法，我们可以遵循和定量测定酶生成ADO（CD73依赖型）和其随后的降解INO（CD26 / ADA相关）的。使用酶抑制剂的允许控制协议，并有内部控制。这个协议的优点和新奇是i）其可以施加到在培养生长的细胞，即ⅱ）它需要培养基少量且iii）所述的样品制备是非常容易的。
我们的系统由装有四元低压混合泵和内嵌真空脱气用自动进样器一起的分离的模块。 AMP，ADO和INO的色谱分离是在一个用于极性化合物的保留的基于二氧化硅的，反相柱获得。钍È二元流动相系统由缓冲液A（7 mM醋酸铵双去离子水，pH值3.0用盐酸调节）和缓冲液B（乙腈）。
此HPLC方法灵敏，可靠和可重复的，并且可以应用于不同的细胞培养物模型中，既贴壁和悬浮细胞。它可以也适用于比较不同的培养条件，诸如常氧和缺氧（1-3％ 的 O 2）（O 2的21％）或以比较细胞的不同的激活状态。在这里，我们进行治疗在细胞培养板的嘌呤化合物的细胞，但也可以是对短时间处理也用微量离心管。
这里所描述的方法允许外嘌呤核苷酸和核苷，如薄层色谱法（TLC）测定10使用的那些消耗和产生的反应避免使用放射性标记的化合物的定量。此外，该HPL空调系统也更敏感和选择性相比，薄层色谱法。然而，与串联质谱（MS / MS）检测型RP-HPLC系统现在被认为是核苷酸和核苷的定量测量的最佳选择。该高效液相色谱法的一个限制是每个单一样本运行之前运行平衡列的要求，使得实验的总运行时间更长，显著限制了高通量筛查的可能性。更快的替代方法由孔雀绿磷酸盐测定法，比色法，允许AMP转化成ADO的间接测量，并且bythe基于荧光素酶的方法20表示。但是，这两种方法都不提供腺苷的直接测量。
对于该测定样品处理是最小的，则不需要用乙腈沉淀蛋白，因为该协议是基于使用的无血清培养基。替代到无血清培养基可以是与衬底的孵化之前重悬在PBS中的5mM葡萄糖的细胞。
在协议中的主要关键步骤是获得B细胞的纯群体。的确，AMP ADO和INO的测量可以是假由于表达参与该级联（ 例如，T淋巴细胞）的ectoenzymes其他细胞群的存在。第二个关键的一点是要过滤的培养介质注入到HPLC系统而没有任何细胞污染可影响完整性和列的寿命。
总之，该测定是比较快的，高度可靠的，允许在不同的细胞群的核苷酸消耗和核苷生成的实时监测。
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Acknowledgments
这项工作是由意大利ASSOCIAZIONE Ricerca巨蟹座（IG＃12754）的支持。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Human blood | |||
| Milli-Q water | Millipore | double deionised water | |
| Ficoll-Paque Plus | GE-Healthcare | 17-1440-03 | |
| purified anti-CD3, -CD14, -CD16 | made in-house | mouse monoclonal | |
| PE-labeled anti-CD19 | Miltenyi Biotec | 120-014-229 | |
| FITC-labeled anti-CD5 | Miltenyi Biotec | 130-096-574 | |
| Dynabeads sheep anti-mouse IgG | Invitrogen | 11031 | |
| Phosphate-buffered saline (PBS) | Amresco | E404-200TABS | tablets |
| bovine serum albumin (BSA) | ID bio | 1000-70 | standard grade |
| isolation buffer | PBS 0.1% BSA 2 mM EDTA, pH 7.4 | ||
| AIM V serum free medium | GIBCO | 12055-091 | liquid (research grade) |
| adenosine 5’-diphosphate (ADP) | Sigma-Aldrich | A2754 | |
| adenosine 5’-monosphate (AMP) | Sigma-Aldrich | A1752 | |
| adenosine (ADO) | Sigma-Aldrich | A9251 | |
| inosine (INO) | Sigma-Aldrich | I4125 | |
| α,β-methylene-ADP (APCP) | Sigma-Aldrich | M8386 | CD73 inhibitor |
| EHNA hydrochloride | Sigma-Aldrich | E114 | adenosine deaminase inhibitor |
| Deoxycoformycin (dCF) | Tocris | 2033 | adenosine deaminase inhibitor |
| Dimethyl sulfoxide (DMSO) | Sigma-Aldrich | D2650 | |
| Dipyridamole | Sigma-Aldrich | D9766 | nucleoside transporter inhibitor |
| acetonitrile (CHROMASOLV Plus) | Sigma-Aldrich | 34998 | HPLC-grade |
| ammonium acetate | Sigma-Aldrich | 9688 | 7 mM, pH 3.0 |
| hydrochloric acid | Sigma-Aldrich | 30721-1L | min. 37% |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Equipment | |||
| Bürker cell counter | VWR | 631-0920 | hemocytometer |
| DynaMag-15 Magnet | Invitrogen | 12301D | Dynal magnetic bead separator |
| microcentrifuge safe-lock tubes | Eppendorf | 030-120-0086 | 1.5 ml |
| PET centrifuge tubes | Corning | 430053/430304 | 15 – 50 ml |
| Minisart RC4 syringe filters | Sartorius Stedim Biotech | 17821 | membrane 0.2 µm |
| short thread vials | VWR | 548-0029 | 1.5 ml/glass |
| micro-inserts | VWR | 548-0006 | 0.1 ml/glass |
| screw caps | VWR | 548-0085 | 9 mm/PP blue |
| Atlantis dC18 Column | Waters | 186001344 | 5 µm, 4.6 mm x 150 mm |
| Atlantis dC18 Guard Column | Waters | 186001323 | 5 µm, 4.6 mm x 20 mm |
| Waters Alliance 2965 Separations Module | Waters | HPLC separation module | |
| Waters 2998 Photodiode Array (PDA) Detector | Waters | UV detector | |
| Waters Empower2 software | Waters |
References
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