Summary
Ribonucleotides 是在核 DNA 复制过程中纳入基因组的最丰富的非规范核苷酸之一。如果没有正确去除, ribonucleotides 会导致 DNA 损伤和突变。在这里, 我们提出了两个实验方法, 用于评估核苷酸的丰度纳入 DNA 及其诱变效应。
Abstract
ribonucleotides 在核 DNA 中的存在被证明是基因组不稳定的来源。核苷酸的范围可以用碱性水解和凝胶电泳来评定, 因为 RNA 在碱性条件下很容易水解。这与南方污点分析结合在一起可以用来确定 ribonucleotides 的位置和链。然而, 这一过程只是半定量的, 可能不够敏感, 以检测核苷酸内容的小变化, 虽然链特定的南方印迹探测提高灵敏度。作为衡量 ribonucleotides 在 DNA 中最显著的生物学后果之一, 自发诱变可以用正向突变法进行分析。使用适当的报告基因, 可以选择导致功能丧失的罕见突变, 并通过将波动实验数据与报告基因的 DNA 测序相结合来测量整体和特异的突变率。波动分析法适用于在特定的遗传背景或生长条件下检测各种诱变过程。
Introduction
在真核 dna 复制过程中, ribonucleotides 由所有三主要 dna replicases、dna 聚合酶 (年 floss-pols) α、ε和δ1、2组成基因组。RNase H2-dependent 核苷酸切除修复 (3) 去除大多数这些嵌入式 ribonucleotides。
DNA 中的核苷酸易水解, 因为 2 ' 羟基的糖基团可以攻击相邻的磷酸二酯键, 释放一个末端与 2 '-3 ' 循环磷酸盐和另一个与 5 '-OH4。碱性条件可以大大加快这种反应。因此, 在碱性溶液的孵化过程中, 嵌入 ribonucleotides 的水解会导致基因组 DNA 的碎片化, 这可以通过碱-琼脂糖电泳5进行可视化。这种 DNA 可以转移到一个膜, 并通过南方印迹分析, 利用链特定的探针, 允许识别碱敏感的网站所造成的 ribonucleotides 纳入新生的领先或滞后链 DNA,分别。
在缺乏 RNase H2 活性的酵母细胞中, 当拓扑异构酶 I (Top1) 在嵌入的核苷酸6、7上刻痕 DNA 时, 可以启动 ribonucleotides 的去除。然而, 当 Top1 在 3 ' 侧核苷酸, 这产生 5 '-OH 和 2 '-3 ' 循环磷酸盐 DNA 末端是顽固的对 religation。不修复或异常处理这些 ' 肮脏的末端 ' 可能导致基因组不稳定。此外, 如果切口发生在重复 DNA 序列中, 修复过程可能导致删除突变。这对于串联重复是特别成问题的, 在 RNase H2-deficient 细胞中通常观察到短的删除 (介于两和五基对之间)。在 Top1-dependent 酵母 RNase H2 活性缺乏的情况下, DNA 聚合酶ε突变体 (pol2-M644G) 混杂在新生的主导链合成过程中会加剧核苷酸的有害影响。
DNA 中 ribonucleotides 的处理导致自发的突变, 这种突变可以通过适当的报告基因和选择相应的表型变化来检测。波动测试或 Luria 和德尔布吕克实验是最常用的方法之一, 以测量自发突变率使用可选择的报告基因8,9。在酵母中, URA3和CAN1基因可以作为一个正向突变检测的记者, 它允许检测所有导致基因功能丧失的突变类型。自发突变率被估计为多平行培养所观察到的中位数, 从单个菌落开始, 而目标报告基因中没有突变。酵母 RNase H2-deficient 菌株如rnh201Δ具有适度升高的整体自发突变率, 这主要是由于串联重复序列的 2-5 bp 删除率升高引起的。因此, 为了充分描述 ribonucleotides 在基因组中的诱变效应, 需要确定特定的突变率。在这种情况下, URA3或CAN1的报告基因可以被放大和排序, 以确定的类型和地点的突变, 和特定的突变率可以计算。在多个独立URA3或CAN1突变体中发现的突变可以用来产生突变谱。
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Protocol
1. 碱性水解和链特定的南方印迹 (图 1)
- 细胞生长与基因组 DNA 分离
- 根据制造商的说明, 使用酵母 DNA 纯化试剂盒分离酵母基因组 dna。使用处于生长指数阶段的区域性 (介于0.5 和1之间的光密度之间)。并用重悬在35毫升的 1x TE 缓冲器 (10 毫米三盐酸, pH 7.5, 1 毫米乙二胺乙酸 (EDTA)) 的最终 DNA 颗粒。
- 添加1毫升的5毫克/毫升 RNase A 到 DNA 和孵育30分钟在37摄氏度。
- 用0.1 容量的3米醋酸钠 (pH 5.2) 和2.5 卷100% 乙醇在冰上沉淀 DNA。
- 离心机在 1.6万 x g 20 分钟在4摄氏度。用吸管取出上清液。
- 用500毫升70% 乙醇清洗颗粒。用吸管取出上清液。
- 用35毫升的 1x TE 缓冲器将并用重悬上的颗粒干燥。
- 定量使用 fluorimeter (材料表) 与 dsDNA BR 试剂盒进行 DNA 检测。
- 5毫克的 DNA 从每个样品使用0.1 容量3米醋酸钠, pH 5.2 和2.5 容量100% 乙醇为总容量200毫升 (增加 H2O 如果必要, 需要另外的5毫克脱氧核糖核酸, 如果中性凝胶控制是必要的)。在冰上孵育20分钟。
- 离心机在 1.6万 x g 20 分钟在4摄氏度。用吸管取出上清液。
- 把球团干在板凳上。并用重悬的 DNA 在14毫升的 H2O。
- 碱性水解与凝胶电泳
- 添加6毫升1米的 KOH 和孵育55°c 2 小时。
- 在冰上孵化样品5分钟。
- 添加4毫升6x 碱性 DNA 加载缓冲器: 300 毫米 KOH, 6 毫米 EDTA, pH 8.0, 18% 聚蔗糖 (材料表), 0.15% 甲酚绿色, 0.25% 二甲苯蓝 FF。
- 铸造碱性凝胶, 由1% 琼脂糖, 50 毫米氢氧化钠, 1 毫米 EDTA, pH 8.0。使用一个梳子, 允许24毫升的 DNA 样本, 每车道加载。
- 在室温下运行凝胶1x 碱性电泳缓冲器:50 毫米氢氧化钠, 1 毫米 EDTA, pH 8.0。包括适当的 DNA 大小标记。
- 简单地向下旋转管子, 将整个24毫升的样品装入碱性琼脂糖凝胶中。Electrophorese 为30分钟在 30 V, 其次是 18-20 h 在 10 v。
- 2孵化的凝胶在室温下与温和的搅拌在中和缓冲 I: 1 米三盐酸, 1.5 米氯化钠。
- 将中性凝胶浸泡在200毫升水中, 其中含有 1/1万稀释的 SYBR 金染色, 室温下以温和摇动的方法对 DNA 进行染色。
- 使用紫外线 transilluminator 可视化 DNA。增加碱敏感性导致小 dna 片段的出现, 表明在 dna5中失修 ribonucleotides 的密度较高。
- 南部转移
- 用毛细管动作10将碱性凝胶中的 DNA 转移到正电荷的尼龙膜上。理查德·山姆布鲁克和罗素的手册10中提供了如何设置此转移的示例。
- 碱性转移缓冲器室温下浸泡碱性凝胶15分钟: 0.4 米氢氧化钠, 1 米氯化钠。
- 湿尼龙膜 (切到胶粒的大小) 与水简单, 然后浸泡5分钟碱性转移缓冲器。
- 通过在玻璃烘烤盘中反转3玻璃烧杯 (100 毫升), 建立转移平台。这道菜应该比琼脂糖凝胶的尺寸稍大一些。把玻璃盘子放在上面。
- 在玻璃板上悬垂2大块3毫米的色谱纸 (切到凝胶的宽度大小和可以在边缘上悬垂的更长的边)。
- 将碱性转移缓冲液倒入色谱纸上, 半填充玻璃碟。用5毫升的玻璃吸管平滑气泡。
- 将琼脂糖凝胶放在顶部, 再平滑气泡。用 parafilm 包围凝胶的所有边缘。将少量碱性转移缓冲液倒入凝胶上。
- 将预浸泡过的尼龙膜放在凝胶的顶部。把气泡弄平。
- 湿2张纸切到大小的琼脂糖凝胶。将它们放在膜的顶端, 并平滑出任何气泡。
- 在转移三明治的顶端放置一大堆纸巾 (切到比琼脂糖凝胶稍大一点的尺寸)。小心地将玻璃盘子放在纸巾上。将加权对象添加到顶部 (一本质量为400克的书工作良好)。
- 让转移在室温下通宵进行。
- 小心地把转移栈分开, 在室温下将膜浸泡15分钟, 中和缓冲 II: 0.5 米三盐酸盐, pH 7.2, 1 米氯化钠。
- 用紫外交联剂将 DNA 与带电的尼龙膜交交。将膜放在交叉链接器中, 并使用 autocrosslink 设置。
- 南方探头准备
注意: 此处描述的用于检测 DNA 链中初生的前导与滞后链中碱敏感点的方法基于以前发布的协议11。在我们的实验中 , 探测是在URA3报告基因上进行的 , 它入到与ARS306复制起源 (图 3A) 相邻的两个方向 ( OR1 或 OR2 ) 之一。在酵母基因组 DNA 中存在碱敏感点是核苷酸的一个指标, 允许使用 ribonucleotides 作为 DNA 聚合酶活性12、13、14的生物标志物。这种方法, 使用的目标 DNA 序列相邻的有效ARS306起源的复制, 应服从其他基因组的位置和目标基因, 以及。- PCR-放大URA3报告基因的520基对段使用以下引物对: URA3-F1 (5´ GCTACATATAAGGAACGTGCTGC) 和 URA3-R1 (5´ CTTTGTCGCTCTTCGCAATGTC)。
- 用 10-20 ng 酵母基因组 DNA 作为模板进行 PCR 反应, 4 ul 每底漆 (10 微米股票), 10 ul 10x 前 Taq 缓冲器 (Mg2 +加), 8 ul dNTP 混合物 (2.5 毫米每), 0.5 ul 的前 Taq DNA 聚合酶 (5 U/ul), 并调整最终音量为 100 ul 与 H2O。
- 运行以下 PCR 程序:95 °c 为5分钟;30周期95°c 为1分钟, 55 °c 为1分钟, 72 °c 为2分钟;72°c 为10分钟并且保持在4°c。
- 用 pcr 纯化试剂盒提纯 pcr 产物, 用50毫升的 H2O 洗脱 DNA。现在可以将其用作 radiolabeling 反应中的模板。
- 使用以下引物为链特定的 radiolabeling: 使用 URA3-A (5´ CTCATCCTAGTCCTGTTGCTGCC), 以可视化的 DNA, 退火探测 A。这对应于新生的领先链 dna, 当URA3是在 OR2 和 tnascent 滞后链 dna 时URA3在 OR1。使用 URA3-B (5´-CAGTACCCTTAGTATATTCTCCAG) 可视化新生 DNA, 退火探针 B。这相当于新生的领先链 dna 时, 当URA3是在 OR1 和新生的滞后链 dna 时, URA3在 OR2 (图 3)。
- 使用 10-20 ng 放大URA3片段作为模板 DNA 进行 radiolabeling 反应, 2 底漆 ul (10 微米库存), 5 ul 10x 前 Taq 缓冲器 (Mg2 +加), 4 毫米 dNTPs (减去 dCTP), 2.5 ul (5 μCi) 的一个 50 P dCTP, 0.5 ul ExTaq 脱氧核糖核酸聚合酶 (5 U/ul) 和调整最后容量到 50 ul 与 H2o 运行以下程序为 radiolabeling:94 °c 为5分钟;25周期94°c 为1分钟, 55 °c 为三十年代, 72 °c 为1分钟;72°c 为5分钟并且保持在4°c。
- 使用 G-25 旋转列删除未合并的放射性标签。在添加核素样品之前, 将该列离心1分钟, 在 720 x g 和 removethe 缓冲器吹打。负载核素反应产品和离心机2分钟在 720 x g 洗脱标记探针。
- 在95摄氏度孵育5分钟, 在杂交前立即变性探针。在冰上短暂冷却。
- 南方杂交
- 将润湿膜滚入杂交管中, 加入25毫升新制备的杂交缓冲液: 0.5 米磷酸钠缓冲液、pH 7.2、7% 月桂酸钠 (SDS)、1% 牛血清白蛋白 (BSA)。孵育在65°c 1-2 h 与旋转在一个杂交烤箱。
- 小心地倒出溶液, 加入25毫升的杂交缓冲器加上 radiolabelled 探针。65摄氏度孵育 16-18 小时, 旋转。
- 将溶液倒入放射性废物容器中。在室温下用磷酸盐-SDS 洗涤液进行5洗涤5分钟:40 毫米磷酸钠缓冲液, pH 7.2, 5% SDS, 0.5% BSA, 1 毫米 EDTA, pH 8.0。
- 执行2洗涤15分钟每65°c 与磷酸盐 SDS 洗涤解决方案 II:40 毫米磷酸钠缓冲液, ph 7.2, 1% SDS, 1 毫米 EDTA, ph 值8.0。
- 使用镊子将膜从杂交管中取出, 并在打开的塑料套筒保护器中放置。覆盖并暴露在成像板上。尝试多种不同的曝光时间, 从4小时到4维不等。
- 如有必要, 用不同探针对印迹进行剥离和重新探测, 大约 3-4 次。在25毫升的50% 甲酰胺, 2x SSPE 溶液中, 将膜培养为2小时65摄氏度。
注: 20x SSPE 库存解决方案: 3 米氯化钠, 0.2 米 NaH2PO4, 0.02 米 EDTA, pH 7.4。 - 将溶液倒入放射性废物容器中。在磷酸盐-SDS 洗涤液中, 每65°c 执行2次洗涤15分钟。
- 检查膜与盖格计数器, 并重复剥离协议, 如果信号仍然存在。
- 执行前述杂交和杂交。
2.酵母菌株的变异率和特异性测定
- 准备细胞培养
- 接种一个单一的殖民地 (健康酵母细胞需要 2-3 天在30°c 形成适当大小的殖民地) 生长在 YPD 琼脂补充与100毫克/毫升腺嘌呤入5毫升 YPDA 汤补充与250毫克/毫升腺嘌呤 (补充腺嘌呤是仅必要的, 如果使用的菌株是腺嘌呤营养缺陷型)。生长在一个振动筛孵化器或在30°c 的转子, 直到文化达到饱和 (36-48 小时的菌株, 没有严重的生长缺陷)。
- 将单元格向下旋转 2000 x g, 5 分钟。
- 丢弃上清液, 用5毫升的无菌水冲洗细胞。
- 并用重悬500毫升的无菌水中的细胞。
- 细胞培养和电镀的稀释
- 对于非选择控制, 将96井板中的细胞以160万的因子和每种培养基100毫升的系数稀释到完整的 (COM) 板上。
- 为了选择ura3突变体, 将100毫升未稀释的细胞放在 5 FOA 板上, 用于野生型 (应变)。如果预期的菌株的突变率高于某一应变, 则应相应稀释细胞。
- 为can1突变体选择, 稀释细胞5倍和板100毫升到一个 canavanine 的板 (可以) 的一个重量应变。稀释系数为0.5。
- 孵育板材在30°c 直到酵母殖民地形成。对于没有生长缺陷的菌株, 2-3 天通常是足够的 COM 和罐板和 3-5 天为 5 FOA 板。为了比较不同菌株之间的突变率, 最好选择同一天的生长来计算菌落数。把盘子放在冷房间里 (摄氏4摄氏度)。
- 自发突变率的计算
- 计算每个板块上可见的菌落数并记下菌落数
- 用德雷克公式计算突变率: ÷ ( μNt) 。f是根据最终培养的细胞数除以突变体数量计算出的突变频率。Nt 是最终文化中的细胞数, μ是突变率。该方程可以用牛顿-拉夫逊法等迭代法求解。还有其他估计方法, 包括李和库尔森测试, 以计算突变率15。
- 计算假设对数正态分布的 utation 速率的置信区间。最常用的是95% 置信区间。
- 变异谱分析
- 选择一个单一的殖民地从每个 5 FOA 或可以板块和刷新 YPDA 板块。
- 执行菌落 pcr 放大URA3或CAN1基因和序列, 以检测突变使用以下引物: URA3-F (5 '-CGCATATGTGGTGTTGAAGAA-3 ') 和 URA3-R (5 '-TGTGAGTTTAGTATACATGCA-3 ') 的 pcr 扩增和800 bp URA3基因的测序;CAN1-F (5 '-CTTCTACTCCGTCTGCTTTC-3 ') 和 CAN1-R (5 '-CAGAGTTCTTCAGACTTC-3 ') 为放大和 CAN1-AR (5 '-TGAAATGTGAAGGCAGCGTT-3 '), CAN1-9R (5 '-CCTGCAACACCAGTGATA-3 '), CAN1-10R (5 '-GAGGATGTAACAGGGATGAAT-3 ') 和 CAN1-BR (5 '-CGGTGTATGACTTATGAGGG-3 ') 用于测序的 1800 bp CAN1报告基因。
- 为了进行菌落 PCR, 并用重悬在 5 ul2O 的一个单一的殖民地, 并使用 1 ul 作为模板。添加 1 ul 每一个底漆 (5 微米股票), 2 ul 5x KAPA2G 缓冲器 (Mg2 +加), 0.5 ul dNTP (2.5 毫米), 0.5 ul KAPA2G 快速 DNA 聚合酶, 12 ul 的 H2O。
- 对于URA3基因的扩增, 运行以下 PCR 程序:95 °c 5 分钟;5周期95°c 为十年代, 61 °c 十五年代, 72 °c 为三十年代;35周期95°c 为十年代, 61 °c 十五年代, 72 °c 为三十年代;72°c 为2分钟并且保持在4°c。对于CAN1基因的扩增, 运行以下 PCR 程序:95 °c 5 分钟;5周期95°c 为十年代, 61 °c 十五年代, 72 °c 为四十五年代;35周期95°c 为十年代, 61 °c 十五年代, 72 °c 为四十五年代;72°c 为2分钟并且保持在4°c。
- 使用程序 (如 DNASTAR Seqman Pro 或 Sequencher) 将排序结果与参考序列对齐以识别突变。
- 按突变类型 (图 4) 或突变位置 (图 5) 编译突变数据。根据突变的频率计算特定的突变率 (观察到的事件数除以突变序列的数量) 乘以总的突变率。
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Representative Results
碱凝胶电泳法处理基因组 dna, 允许对 dna 碎片进行半定量检测, 因为 ribonucleotides 的丰度稳定。图 2显示了用或不带5KOH 治疗酵母基因组 DNA 的凝胶图像。Polε的催化亚单位 Pol2 的 M644L 变异降低了吸收 ribonucleotides 的能力, M644G 突变体的 ribonucleotides 比聚酶多。如《议定书》所述, 碱性凝胶可以通过链特定的南方印迹分析进一步探讨。随着对探测到的基因组站点相对于其相邻起源的了解, 我们可以有选择地探测 ribonucleotides 纳入初生的前导或滞后链。图 3显示了南部印迹结果探测URA3报告基因插入两个相反的方向接近早期射击复制起源, ARS30616。通过使用前导链特定探针, 我们观察了 ribonucleotides 中初生链 dna 中碱裂解引起的 dna 分裂模式, 并在表达聚合酶α、δ和ε的变种的应变核苷酸公司成立。
利用波动实验, 可以测量含有报告基因的酵母菌株的突变率。图 4显示了市建局3 和CAN1的突变率, 这些菌株表达了大量的聚合酶或pol2-M644G突变体, 有或没有功能 RNase H2。RNase H2 的缺乏导致了两种背景下整体突变率的适度增加。然而, 对突变特异性的仔细检查表明, 在缺乏 RNase H2 的菌株 (图 5) 中, 短的缺失的突变率有很强的增加, 特别是串联重复序列。图 5A比较了201Δ菌株和 rnh 的突变特异性,图 5B显示了进一步升高的核苷酸在初始的 DNA 链中的诱变效应。
图 1: 核苷酸在酵母基因组 DNA 中加入的碱敏感部位的链特定检测所涉及的协议步骤.本程序涉及的各种主要步骤的概述, 从酵母基因组 DNA 分离开始, 并通过最后的南方印迹分析。请单击此处查看此图的较大版本.
图 2: 由碱性琼脂糖凝胶电泳获得的具有代表性的结果图像.这一数字已经从尼克 McElhinny,等等。5. 不同基因型菌株的酵母基因组 DNA 用氯化钾 (中性) 或 KOH (碱性) 治疗, 然后在中性或碱性琼脂糖凝胶上分离。"M644G" 和 "的" 是指的状态.请单击此处查看此图的较大版本.
图 3: 用南方印迹对碱性琼脂糖凝胶进行链式探测.这个数字已经从威廉斯,等等。13. ( A )核素探针退火到URA3报告基因中的新生的领先 DNA 链 , 已入接近ARS306在两个相反的方向 ( OR1 和 OR2 ) 。(B)南方印迹的代表性结果使用新生的领先的线特定探针。显示的是在一个应变与 DNA 聚合酶, 或pol1-L868M, pol2-M644G或pol3-L612M变种菌株与或没有 RNase H2 的新生领先链的探测结果。POL1、 POL2和POL3基因分别编码年 floss-pols α、ε和δ的催化亚基。变形是更加混杂的为核苷酸并网5,12,17。(C)从(B)每条车道的总数量中量化放射性信号。值以总计的百分比表示。请单击此处查看此图的较大版本.
图 4: 酵母菌株的自发突变率.这一数字已经从尼克 McElhinny,等等。5. URA3和CAN1报告基因用于正突变检测, 以测量所述菌株的突变率。URA3 记者在 "方向 2" (OR2,图 3A)。每个测量都包含95% 置信区间 (CI)。请单击此处查看此图的较大版本.
图 5: URA3-OR2 报告基因的突变谱.这一数字已从以前的出版物5、18、19、20中改编。在 804 bp URA3编码序列中, 描述了在正突变试验中选择的每个独立的 5-FOA 抗性群体中所观察到的位置和突变类型。字母表示基替换, 开放三角形表示单个基删除, 闭合三角形表示单个基插入, 而实线表示短删除。(A) rnh201Δ菌株的突变谱。在序列上面的红色标签是在小波中观察到的突变, 而下面的蓝色标签是在rnh201Δ菌株中观察到的。(B) pol2-M644G和pol2-M644G rnh201Δ菌株的突变谱。序列上方的红色标签是在pol2-M644G中观察到的突变, 而蓝色则低于pol2-M644G rnh201Δ菌株的序列。请单击此处查看此图的较大版本.
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Discussion
在这里, 我们描述了两组试验的协议, 这些实验经常用于对 DNA 复制过程中 ribonucleotides 的半定量分析, 以及失修 ribonucleotides 的诱变效应。虽然这些方法涉及模型真核细胞的酵母, 这些技术可以很容易地适应其他微生物, 甚至更高的真核生物。
碱性琼脂糖电泳失修 ribonucleotides 在 DNA 中的应用探讨与南方印迹相结合, 提供了关于 ribonucleotides 的数量和它们被纳入其中的链的重要信息。然而, 重要的是要注意, 碱敏感性也可能导致其他 DNA 病变, 如 abasic 的网站。另一种检测 DNA ribonucleotides 的方法是用纯化的 RNase H2 酶治疗, 就像哺乳动物细胞21中所做的那样。尽管我们的方法涉及在我们的突变分析实验中使用的URA3报告基因在新生的前导和滞后链中对碱敏感点进行探测, 但可以设计在其他位置进行退火的探头, 以便获取有关其他基因组站点核苷酸密度的重要信息。该过程的南方印迹部分也可作为其他常规 DNA 探测实验的参考。
利用波动试验测量突变率已被广泛应用于微生物中各种诱变事件的分析, 因此不限于分析 ribonucleotides 在 DNA 中的诱变效应。在这个实验中, 增加独立文化的数量可以大大提高测量的准确度。独立的殖民地可以通过裸奔一个兴趣的 YPDA 培养基或通过分析的独立孢子殖民地获得的四解剖的双倍酵母染色。理想情况下, 鼓励使用多个独立的单倍体酵母菌株 (例如, 从四解剖), 以尽量减少应变对应变变化的影响。当自发突变率较高或菌株有生长缺陷时, 这一点尤为重要。另外一种可以用来测量自发突变率的方法是突变积累实验22。在这一分析中, 突变频率是确定的细胞后, 广泛的增长, 可用于计算的突变率。突变积累实验与深测序技术的耦合已被证明是一个强有力的工具来分析基因组的突变率和特异性。
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Disclosures
作者没有什么可透露的。
Acknowledgments
我们感谢所有当前和以前的安德鲁·库恩克尔实验室成员的工作和讨论与协议和重复使用的数据在这里提出。这项工作得到了 ES065070 的项目 Z01 的支持, T.A.K. 国家卫生研究院 (NIH) 的内部研究司 (NIEHS)。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| YPD media | 20 g dextrose, 20 g peptone, 10g yeast extract, in deionized H2O up to 1 L, add 20 g Bacto agar for solid media, autoclave. | ||
| COM plates | 1.3 g SC dropout mix, 1.7 g yeast nitrogen base without amino acids or (NH4)2SO4, 5 g (NH4)2SO4, 20 g dextrose, 20 g Bacto agar deionized H2O up to 1 L. Adjust pH to 5.8. Autoclave and 30 – 35 ml per plate. | ||
| CAN plates | 1.3 g SC-Ura dropout powder, 1.7 g yeast nitrogen base without amino acids or (NH4)2SO4, 5 g (NH4)2SO4, 20 g dextrose, 20 g Bacto agar, 25 mg uracil and H2O up to 1 L. Autoclave for 15 mins at 121 °C and cool down to 56 °C. Add 6 mL of filter-sterilized 1% canavanine sulfate solution. | ||
| 5-FOA plates | 1.3 g SC-Ura dropout powder, 1.7 g yeast nitrogen base without amino acids or (NH4)2SO4, 5 g (NH4)2SO4, 20 g dextrose, 20 g Bacto agar, 25 mg uracil and H2O up to 800 mL. Autoclave for 15 mins at 121 °C and cool down to 60 °C. Add 200 mL of filter-sterilized 0.5% 5-FOA solution. | ||
| L-Canavanine sulfate | US Biological | C1050 | |
| 5-FOA | US Biological | F5050 | |
| 20 mL glass culture tube | Any brand | ||
| Culture rotator in 30 °C incubator | Shaker incubator can be used instead | ||
| 96 well round bottom plates | Sterile, any brand | ||
| 3 mm glass beads | Fisher Scientific | 11-312A | Autoclave before use |
| 12-channel pipettes | Any brand | ||
| Ex Taq DNA Polymerase | TaKaRa | RR001 | |
| Epicentre MasterPure Yeast DNA Purification Kit | Epicenter | MPY80200 | |
| 3 M sodium acetate | Sigma-Aldrich | S7899 | |
| 100% ethanol | |||
| Qubit 2.0 Fluorometer | Invitrogen | Q32866 | Newer model available |
| dsDNA BR Assay kit | Invitrogen | Q32850 | |
| KOH | Sigma-Aldrich | 221473 | |
| EDTA | Sigma-Aldrich | E7889 | |
| Ficoll 400 | Dot Scientific Inc. | DSF10400 | |
| Bromocresol green | Eastman | 6356 | |
| Xylene cyanol FF | International Technologies Inc. | 72120 | |
| NaOH | Sigma-Aldrich | S8045 | |
| 1 M Tris-HCl (pH 8.0) | Teknova | T5080 | |
| SYBR Gold Nucleic Acid Gel Stain | Invitrogen | S11494 | |
| UV transilluminator | |||
| Amersham Nylon membrane Hybond-N+ | GE Healthcare | RPN303B | |
| 3 MM CHR Chromotography paper | Whatman | 3030-392 | |
| NaCl | Caledon | 7560-1 | |
| Stratalinker 1800 | Stratagene | ||
| QIAquick PCR Purification Kit | Qiagen | 28106 | |
| G-25 spin column | GE Healthcare | 27-5325-01 | |
| 1 M Sodium phosphate buffer (pH 7.2) | Sigma-Aldrich | NaH2PO4 (S9638); Na2HPO4 (S9390) |
|
| SDS | Sigma-Aldrich | L4522 | |
| BSA | Sigma-Aldrich | A3059 | |
| Formamide | Sigma-Aldrich | 47671 | |
| Geiger counter |
References
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- Nick McElhinny, S. A., et al. Abundant ribonucleotide incorporation into DNA by yeast replicative polymerases. Proceedings of the National Acaddemy of Sciences U S A. 107 (11), 4949-4954 (2010).
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