Name: Processus de fabrication de microstructures tridimensionnelles en utilisant la vaporisation dun composant sacrificiel (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-11-02T17:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 31 s
Description: Découvrez la fabrication de microstructures vasculaires 3D par vaporisation de composants sacrificiels en acide polylactique. Cette méthode innovante permet de créer des microcanaux creux pour l'échange thermique et les systèmes auto-cicatrisants.

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Ce travail a été soutenu par le programme Young Investigator AFOSR sous FA9550-12-1-0352 et un Prix 3M de la faculté non permanent. Les auteurs tiennent à remercier lalisa Stutts et Janine Tom de discussion utile relative à ce projet. Les auteurs remercient le Centre de Microscopie Calit2 et pour la spectroscopie laser à l&#39;Université de Californie, Irvine pour permettre l&#39;utilisation de ses installations. Hodge Harland et l&#39;UCI Sciences physiques Atelier d&#39;usinage sont reconnus pour la fabrication d&#39;outils. Poly (lactique) de fibres d&#39;acide a été généreusement fourni par Teijin monofilament.

1. Catalyser fibres sacrifiées <ol><li> Enrouler la quantité désirée de fibres de poly (lactique), d&#39;acide près de la partie inférieure de la broche ¾ personnalisée. Réduire le chevauchement de fibres pour fournir l&#39;exposition maximale de la surface. </li><li> Mélanger déminéralisée H 2 O avec 40 ml de Disperbyk 130 dans une bouteille fermée et secouer jusqu&#39;à ce qu&#39;une solution homogène. Ensuite, placez un bécher de 1000 dans un bain d&#39;eau à 37 ° C et verser trifluoréthanol dans le bécher. La quantité de H 2 O et TFE à utiliser dépend du diamètre de la fibre PLA utilisé. <table border="1"><tbody><tr><td> Diamètre de la fibre </td><td> Quantité de H 2 O (ml) </td><td> Montant de TFE (ml) </td></tr><tr><td> 200 </td><td> 400 </td><td> 400 </td></tr><tr><td> 300 </td><td> 360 </td><td> 440 </td></tr><tr><td> 500 </td><td> 320 </td><td> 480 </td></tr></tbody></table></li><li> Ajouterl&#39;O / Disperbyk 187 solution H 2 dans le bécher et remuer jusqu&#39;à homogénéité. </li><li> Ajouter 1 g de vert de malachite dans le mélange et remuer jusqu&#39;à dissolution. </li><li> Placez la broche sur mesure avec des fibres dans le bécher ½ pouce du fond et fixer la broche à une console de mixage numérique. Puis, vous lancez le mélangeur numérique à 400 rpm. </li><li> Ajouter lentement 1,3 g de catalyseur à l&#39;étain (II) oxalate (SnOx) au mélange. L&#39;ajout de SnOx doit être progressive afin d&#39;éviter les grandes agglomérations de matériel de s&#39;écraser sur la solution. </li><li> Ajuster le pH dans le mélange avec du NaOH jusqu&#39;à pH ~ 6,8-7,2. </li><li> Fixer un couvercle sur le bécher et augmenter la rotation de la broche à 500 tours par minute pendant 24 heures. Si une agglomération de SnOx est observée, casser manuellement vers le haut dans les 2 premières heures. </li><li> Retirer la broche et sèche au four à 35 ° C pendant la nuit. </li><li> Déballer et enlever l&#39;excès de catalyseur à partir des fibres de PLA catalysées. </li></ol> 2. Microvasculaire gaz Exchange Unité Fabrication <ol><li> Procurez-vous une paire de cuivre plaques de laiton de motifs découpés au laser avec le motif de microvasculaire souhaitée et fixer les plaques sur les détenteurs de clip. </li><li> Couper une longueur de 10 pouces de fibre catalysée par micro-canal et supprimer n&#39;importe quel catalyseur restant à l&#39;aide d&#39;une plaque plus épaisse pour réduire le diamètre des fibres (plaque nuls). </li><li> Cône les bords des fibres à l&#39;aide de la pointe d&#39;un pistolet à colle chaude pour extruder lentement les bouts de fibre. </li><li> Passer les fibres à travers des trous correspondant à des paires de plaques de mise en forme de laiton. </li><li> Visser les plaques sur une boîte de moulage. Assurez-vous que les fibres ne sont pas tordus lors de la fixation des plaques. </li><li> Enchaîner les conseils de fibre à travers le tuning pegs du conseil de tension personnalisé. </li><li> Tendre les fibres PLA jusqu&#39;à tendue. Faites attention de ne pas trop la tension et enclenchez les fibres. </li><li> Enlever les particules en excès à partir du motif de la fibre à l&#39;aide d&#39;air comprimé. </li><li> Mix polydiméthylsiloxane base (PDMS) avec durcisseur en 10:1, v: rapport v. </li&gt; <li> Degas le mélange sous vide dans un bocal en dessiccateur pendant 10 min. </li><li> Verser le mélange PDMS dans la boîte de moule. Ne pas verser directement sur les fibres, afin de réduire le piégeage de bulles d&#39;air. </li><li> Utilisation d&#39;une aiguille de calibre 26, éliminer les bulles à l&#39;intérieur de la boîte de moulage, ou entre les fibres. </li><li> Durcir le mélange PDMS à 85 ° C pendant 30 min. </li><li> Détachez les plaques d&#39;airain de la boîte de moule, en veillant à ne pas plier les plaques ou tirer trop fort. Retirez la 1 ère étape guéri de la boîte de moule. </li><li> Passer les fibres à travers un bouchon RTV en perforant des trous dans le bouchon avec une aiguille hypodermique. En fonction de la taille des fibres, en utilisant une jauge d&#39;aiguille qui a au moins 2 fois le diamètre intérieur du diamètre externe de la fibre. Maintenir une configuration similaire à celle de la plaque de formation de motifs en laiton, mais plus largement étalé. </li><li> Fixer les embouts aux extrémités d&#39;une boîte de moule plus grand et verser une 2 ème étape du PDMS. </li><li> Retirez toutes les bulles de gaz restants etdurcir à 85 ° C pendant 30 min. </li><li> Coupez les fibres PLA excès de l&#39;échantillon et le placer dans un four sous vide à 210 ° C pendant 24 heures, ou jusqu&#39;à ce que les fibres de PLA ont été pour la plupart évacués. </li><li> Si l&#39;APL ne peut être retiré, dissoudre doucement sur les microcanaux en utilisant une injection de 1 ml de chloroforme. </li></ol>

<ol><li>Bellan, L. M., Singh, S. P., Henderson, P. W., Porri, T. J., Craighead, H. G., Spector, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fabrication+of+an+artificial+3-dimensional+vascular+network+using+sacrificial+sugar+structures%5BTitle%5D)+AND+%22Soft+Matter%22%5BJournal%5D)">Fabrication of an artificial 3-dimensional vascular network using sacrificial sugar structures.</a> Soft Matter. 5 (7), 1354(2009).</li>
<li>Bellan, L. M., Strychalski, E. A., Craighead, H. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nano-channels+fabricated+in+polydimethylsiloxane+using+sacrificial+electrospun+polyethylene+oxide+nanofibers%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vac.+Sci.+Technol.+B+Microelectron.+Nanometer+Struct.+Process.+Meas.+Phenom%22%5BJournal%5D)">Nano-channels fabricated in polydimethylsiloxane using sacrificial electrospun polyethylene oxide nanofibers.</a> J. Vac. Sci. Technol. B Microelectron. Nanometer Struct. Process. Meas. Phenom. 26 (5), 1728(2008).</li>
<li>Borenstein, J. T., Weinberg, E. J., Orrick, B. K., Sundback, C., Kaazempur-Mofrad, M. R., Vacanti, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfabrication+of+three-dimensional+engineered+Scaffolds%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng%22%5BJournal%5D)">Microfabrication of three-dimensional engineered Scaffolds.</a> Tissue Eng. 13 (8), 1837-1844 (2007).</li>
<li>Wu, H., Odom, T. W., Chiu, D. T., Whitesides, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fabrication+of+complex+three-dimensional+microchannel+systems+in+PDMS%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Chem.+Soc%22%5BJournal%5D)">Fabrication of complex three-dimensional microchannel systems in PDMS.</a> J. Am. Chem. Soc. 125 (2), 554-559 (2003).</li>
<li>Trask, R. S., Bond, I. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biomimetic+self-healing+of+advanced+composite+structures+using+hollow+glass+fibres%5BTitle%5D)+AND+%22Smart+Mater.+Struct%22%5BJournal%5D)">Biomimetic self-healing of advanced composite structures using hollow glass fibres.</a> Smart Mater. Struct. 15 (3), 704-710 (2006).</li>
<li>Dong, H., Esser-Kahn, A. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemical+treatment+of+poly%28lactic+acid%29+fibers+to+enhance+the+rate+of+thermal+depolymerization%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Appl.+Mater.+Interfaces%22%5BJournal%5D)">Chemical treatment of poly(lactic acid) fibers to enhance the rate of thermal depolymerization.</a> ACS Appl. Mater. Interfaces. 4 (2), 503-509 (2012).</li>
<li>Esser-Kahn, A. P., Thakre, P. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-dimensional+microvascular+fiber-reinforced+composites%5BTitle%5D)+AND+%22Adv.+Mater%22%5BJournal%5D)">Three-dimensional microvascular fiber-reinforced composites.</a> Adv. Mater. 23 (32), 3654-3658 (2011).</li>
<li>White, S. R., Blaiszik, B. J., Kramer, S. L. B., Olugebefola, S. C., Moore, J. S., Sottos, N. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Self-healing+polymers+and+composites%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+Sci%22%5BJournal%5D)">Self-healing polymers and composites.</a> Am. Sci. 99 (5), 392(2011).</li>
<li>Nguyen, D. T., Leho, Y. T., Esser-Kahn, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+three-dimensional+microvascular+gas+exchange+unit+for+carbon+dioxide+capture%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">A three-dimensional microvascular gas exchange unit for carbon dioxide capture.</a> Lab Chip. 12 (7), 1246(2012).</li>
<li>Nguyen, D. T., Leho, Y. T., Esser-Kahn, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+membrane+thickness+on+a+microvascular+gas+exchange+unit%5BTitle%5D)+AND+%22Adv.+Funct.+Mater%22%5BJournal%5D)">The effect of membrane thickness on a microvascular gas exchange unit.</a> Adv. Funct. Mater. , (2012).</li>
</ol>

Nous avons déposé une demande de brevet provisoire sur cette technologie und brevet américain US application provisoire de série n ° 61/590, 086.

L&#39;introduction du catalyseur SnOx dans les fibres PLA permet aux fibres de dépolymérisent à une température inférieure. Ceci permet d&#39;éviter la dégradation de la résine d&#39;enrobage, dans ce cas, le PDMS. Une broche de commande est nécessaire de bien mélanger la solution de traitement (figure 5A). L&#39;axe est composé de six tiges de support autour d&#39;un noyau central qui se fixe à un mélangeur numérique. Les fibres sont enroulés autour des tiges de support de telle sorte que l&#39;aire de...

Les systèmes naturels utilisent de vastes réseaux vasculaires de faciliter de nombreuses fonctions biologiques. le transport de masse peut être réalisé efficacement dans de tels systèmes en raison d&#39;une grande surface de rapports de volume et les structures d&#39;emballage optimisés. Alors que de nombreuses techniques de fabrication synthétiques peuvent produire des structures microvasculaires, nul ne peut produire microvasculature à grande échelle tout en maintenant la complexité et la compatibilité avec les procédés de fabrication existants 1-5. Des structures telles que le poumon aviaire fournissent une source d&#39;inspiration. Comment pouvons-nous fabriquer des structures de cette complexité pour améliorer le transport de masse? La vaporisation d&#39;un composant sacrificiel (VASC) peut produire des structures microvasculaires de grande envergure, complexes 6-7. Cette méthode utilise la dépolymérisation thermique par évaporation et l&#39;élimination de poly (lactique), des fibres d&#39;acide pour former des canaux creux qui sont l&#39;inverse de la matrice de fibres. Il s&#39;agit d&#39;une technique de sacrifice compatible avec la fabrication existanteméthodes. Mètres de long, les modèles de microcanaux cylindriques peuvent être formées en utilisant ce procédé de fabrication. Ceci peut être utilisé pour créer des dispositifs vascularisés tels que les polymères auto-guérison et d&#39;unités de capture du carbone microvasculaires 3D 7-10. Les unités de capture du carbone ont été inspirés par le poumon aviaire qui fournit un moyen efficace d&#39;échange de gaz à rapport poids en raison de son utilisation en vol. Le parabronchus est composé de microcanaux hexagonale à motifs, qui fournit des taux de change élevé de l&#39;essence et des unités d&#39;échange de gaz structurellement stables. Afin de créer des unités d&#39;échange avec des caractéristiques micrométriques alignés en trois dimensions, nous avons développé une méthode de mise en tension indépendamment fibres en utilisant une planche de tension conçu sur mesure avec tuners de guitare et de plaques au laser micro-usinés. Chaque fibre est maintenue en place par la tension externe et le motif est défini par l&#39;emplacement des trous de la plaque à travers laquelle les fibres s&#39;exécutent.

<table><tbody><tr><td colspan="4"><fort>réactif</fort></td></tr><tr><td>oxalate d’étain (II)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>402761</td><td></td></tr><tr><td>Disperbyk 130</td><td>BYK Additifs Instruments Trifluoroéthanol</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>Halocarbure</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Malachite Vert (qualité technique)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M6880</td><td></td></tr><tr><td>Hydroxyde de sodium (&ge ; 98 %, granulés)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S5881</td><td></td></tr><tr><td>Polydiméthylsiloxane (PDMS)</td><td>Dow Corning</td><td>3097358-1004</td><td>Distribué par Ellsworth Adhesives</td></tr><tr><td>Fibres d’acide poly(lactique)</td><td>Teijin Monofilament</td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Material</td></tr><tr><td>RW 20 Mélangeur numérique</td><td>IKA</td><td>3593001</td><td></td></tr><tr><td>Pot</td> <td>de dessiccateurFour à vide Pyrex</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>Fisher Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Troisième main</td><td>Jameco Electronics</td><td>26690</td><td>Porte-plaque</td></tr><tr><td>Pistolet à colle</td><td>Stanley</td><td>GR20L</td><td></td></tr><tr><td>PLA Broche</td><td></td><td></td><td>Sur mesure</td></tr><tr><td>Planche</td><td></td><td></td> de tension <td>sur mesure</td></tr></tbody></table>

processus de fabrication de microstructures tridimensionnelles en utilisant la vaporisation d&#39;un composant sacrificiel

Process of Making Three-dimensional Microstructures using Vaporization of a Sacrificial Component

Structures vasculaires dans les systèmes naturels sont en mesure d&#39;assurer le transport de masse élevée à travers des zones de surface élevée et une structure optimisée. Peu de techniques de fabrication de matière synthétique sont capables d&#39;imiter la complexité de ces structures tout en conservant l&#39;évolutivité. La vaporisation d&#39;un processus de composant sacrificiel (VASC) est en mesure de le faire. Ce processus utilise des fibres sacrificielles comme modèle pour former creux, microcanaux cylindriques incorporées dans une matrice. Tin (II) oxalate (SnOx) est incorporé dans le poly (lactique) fibres acide (PLA) qui facilite l&#39;utilisation de ce processus. Le SnOx catalyse la dépolymérisation des fibres PLA à des températures plus basses. Les monomères d&#39;acide lactique sont gazeux à ces températures, et peuvent être retirées de la matrice incorporé à des températures qui ne nuisent pas à la matrice. Ici, nous montrons une méthode pour aligner ces fibres à l&#39;aide de plaques de micro-usinés et un dispositif de tension pour créer des motifs complexes en trois dimensions des microcanaux disposés.Le processus permet l&#39;exploration de pratiquement n&#39;importe quel arrangement de fibres topologies et structures.

Cette procédure concerne un procédé de fabrication de structures microvasculaires incorporées dans une résine. Ces structures peuvent se conformer à une variété de modèles (Figure 2). La structure du réseau microvasculaire est seulement limité par les structures qui peuvent être formés avec les fibres sacrificielles. Utilisation d&#39;un agencement parallèle de canaux microvasculaires, le transport du gaz entre les courants de fluide est facilitée que les gaz traversent une ...

La vaporisation d&#39;un processus de composant sacrificiel (VASC) est utilisé pour fabriquer des structures microvasculaires. Cette procédure utilise des fibres d&#39;acide poly (lactique sacrificielles) pour former des microcanaux creuses avec un positionnement géométrique 3D précises fournies par des plaques de guidage laser micro-usinés.

Processus de fabrication de microstructures tridimensionnelles en utilisant la vaporisation d&#39;un composant sacrificiel

Vascular structures in natural systems are able to provide high mass transport through high surface areas and optimized structure. Few synthetic material ...

L'objectif général de cette procédure est de fabriquer des structures microvasculaires tridimensionnelles. Cela est réalisé en premier lieu en créant des fibres sacrificielles en incorporant de l'oxalate d'étain(II) dans des fibres d'acide polylactique. La deuxième étape consiste à structurer les fibres en trois dimensions à l'aide de plaques de structuration.Ensuite, les fibres sont coulées dans une résine d'encapsulation. La dernière étape consiste à extraire les fibres de la résine sous chaleur et vide. En définitive, le système microvasculaire peut être utilisé à de nombreuses fins, notamment l'échange de chaleur, le transport de masse et les systèmes d'auto-réparation.En général, les personnes novices dans cette méthode éprouveront des difficultés en raison du haut degré de dextérité manuelle et de perception visuelle requis pour manipuler les fibres. La démonstration visuelle de cette méthode est essentielle, car le traitement chimique des fibres et l'assemblage des plaques de motif sont difficiles à apprendre, étant donné qu'ils exigent une coordination oculo-manuelle et un équipement spécialisé. Commencez le processus d'infusion du catalyseur dans les fibres à l'aide d'un fuseau personnalisé et d'une source de fibres d'acide polylactique de diamètre connu.Ici, 200 microns. Enroulez la quantité souhaitée de fibres autour des trois quarts inférieurs du mandrin. Réduisez le recouvrement des fibres afin d'assurer une exposition maximale de la surface dans un flacon qui peut être scellé.Mélanger 400 millilitres d'eau déionisée avec 40 millilitres de dysbarique. Un 30. Fermer la bouteille et agiter jusqu'à obtention d'une solution homogène.Placez ensuite un bécher de 1000 millilitres dans un bain-marie à 37 degrés Celsius. Versez 400 millilitres de trifluoroéthanol dans le bécher. Ajoutez la solution Water Disper dans le bécher et mélangez jusqu'à homogénéité.Ajoutez un gramme de vert de malachite ou d'un autre colorant au mélange et remuez jusqu'à dissolution. Fixez maintenant le rotor au mélangeur numérique et ajustez la hauteur de manière à ce que le rotor se trouve à un demi-pouce du fond. Réglez le mélangeur sur 400 tr/min et commencez à mélanger lentement.Ajoutez 1,3 gramme de catalyseur d'oxalate d'étain au mélange. Ajustez le pH du mélange à l'aide d'hydroxyde de sodium jusqu'à ce qu'il soit approximativement compris entre 6,8 et 7,2. Ensuite, fixez un couvercle sur le bécher et augmentez la vitesse de rotation de l'agitateur à 500 tr/min.Conserver ceci pendant 24 heures dans les deux premières heures. Rompre manuellement tout agglomérat d'oxalate d'étain qui se forme. Au bout de 24 heures, préchauffer un four à 35 degrés Celsius.Retirez le fuseau du mélangeur et placez-le au four. Laissez-le sécher toute la nuit. Après au moins huit heures de séchage, retirez le fuseau du four et déroulez les fibres du fuseau.Éliminer l'excès de catalyseur des fibres. La fabrication de l'unité d'échange gazeux microvasculaire commence par l'obtention d'une paire de plaques de façonnage en laiton découpées au laser, comportant le motif microvasculaire souhaité. Fixer les plaques sur des supports à pinces.Coupez un morceau de 25,4 cm de fibre catalysée par microcanal. Utilisez une plaque découpée selon le diamètre de la fibre pour éliminer tout catalyseur résiduel présent sur les fibres. Utilisez la pointe d'un pistolet à colle chaude pour amincir les bords de la fibre.Faites cela en extrudant lentement les extrémités des fibres. Une fois terminé, faites passer les fibres à travers les trous correspondants des paires de plaques de modelage en laiton. Ensuite, vissez les plaques sur une boîte de moulage.Veillez à ce que les fibres ne soient pas tordues lors de l'attachement des plaques. Ensuite, faites passer les extrémités des fibres dans les chevilles de réglage de la planche de tension personnalisée et tendez les fibres de PLA jusqu'à ce qu'elles soient bien tendues. Prenez garde de ne pas trop tendre les fibres et de les casser.Éliminer les particules excédentaires du motif de fibres à l'aide d'air comprimé. Mélanger maintenant la base de polydiméthylxine avec son agent de réticulation selon un rapport volumétrique de 10 pour 1, puis placer le mélange dans un flacon desséchant. Débarrasser le mélange des bulles d'air pendant 10 minutes sous vide.Verser le mélange de PDMS dans le moule, mais pas directement sur les fibres. Utiliser une aiguille de calibre 26 pour éliminer les bulles d'air présentes dans le moule ou entre les fibres. Une fois cette étape terminée, polymériser l'ensemble à 85 degrés Celsius pendant 30 minutes.Lorsque la boîte est refroidie, desserrez les plaques de laiton de la boîte de moulage en veillant à ne pas courber les plaques ni tirer trop fort. Retirez la première étape durcie de la boîte de moulage. Utilisez une aiguille hypodermique dont le calibre est d'au moins deux fois le diamètre extérieur des fibres pour percer des trous dans un bouchon RTV ; avec l'aiguille en place, faites passer le filament à travers le trou.Ensuite, retirez l'aiguille. Le motif de trous devrait être similaire à celui de la plaque de perçage en laiton, mais plus largement espacé. Puis, fixez les embouts à une boîte de moulage plus grande.Verser une deuxième couche de PDMS et éliminer toutes les bulles de gaz résiduelles. Procéder à nouveau à une cuisson à 85 degrés Celsius pendant 30 minutes. Après la deuxième cuisson, couper les fibres de PLA excédentaires sur l'échantillon.Placer l'objet dans une étuve sous vide à 210 degrés Celsius pendant 24 heures ou jusqu'à ce que la majeure partie des fibres de PLA ait été éliminée. Si du PLA ne peut pas être retiré, injecter un millilitre de chloroforme pour dissoudre ce qui reste dans les microcanaux. Cela achève la fabrication de l'unité.Cette procédure décrit une méthode de fabrication de structures microvasculaires dans une résine, comme on peut le voir dans l'unité d'échange gazeux. Représentée en haut. En bas à gauche, un agrandissement d'un segment de la structure.Des colorants ont été utilisés pour une meilleure clarté visuelle. À droite, on observe le motif hexagonal de trous de 200 microns et de 300 microns utilisés pour créer les microcanaux. Les microcanaux sont entièrement creux et peuvent être séparés par moins de 50 microns.La structure du réseau microvasculaire est uniquement limitée par les structures pouvant être formées par les fibres sacrificielles. Il est possible que des fuites et des obstructions apparaissent dans les microcanaux. À gauche de cette unité d'échange gazeux se trouve une obstruction.On peut souvent les retirer à l’aide d’un solvant. À droite, on voit un exemple de fuite. Ces fuites apparaissent lorsque les fibres sacrificielles ne sont pas correctement nettoyées ou suffisamment tendues. Une fois maîtrisée, cette technique peut être réalisée en 45 minutes pour la création des fibres et en 60 minutes pour la fabrication des unités microvasculaires.Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez bien comprendre comment fabriquer des fibres sacrificielles afin de créer un motif tridimensionnel, et comment résoudre les problèmes éventuels liés à ce processus complexe.

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