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DOI: 10.3791/54353-v
Yoshihiro Koya1,2, Hiroaki Kajiyama2, Wenting Liu1,2, Kiyosumi Shibata2, Takeshi Senga3, Fumitaka Kikkawa2
1Bell Research Center for Reproductive Health and Cancer, 2Department of Obstetrics and Gynecology,Nagoya University Graduate School of Medicine, 3Department of Cancer Biology,Nagoya University Graduate School of Medicine
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Afin de clarifier le processus en plusieurs étapes de la dissémination peritoneale d'un carcinome de l'ovaire, l'étude actuelle présente un modèle expérimental murin du développement de la tumeur d'origine et métastases péritonéales par inoculation orthotopique avec ces cellules tumorales.
L’objectif global de cette procédure est d’observer le développement de la formation tumorale originale et métastatique dans le carcinome épithélial de l’ovaire. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine de l’oncologie gynécologique, telles que la compréhension de la biologie tumorale ou de la défémination péritonéale. Le principal avantage de cette technique est que l’inoculation orospatiale du carcinome épithélial de l’ovaire humain, ou cellules EOC, est réalisée par une approche rétropéritonéale cultivée avec un flanc dorsal. Pour préparer une lignée cellulaire de carcinome ovarien humain à cellules claires, plaquez et maintenez les cellules ES2 dans un milieu RPMI-1640 avec 10 % de FBS et PenStrep à 37 degrés Celsius et 5 % de CO2. Dans la phase de croissance logarithmique, retirez l’ancien milieu de la culture et utilisez trois à quatre millimètres de PBS pour laver les cellules une fois. Ensuite, ajoutez un millimètre de trypsine/EDTA et secouez le récipient pour couvrir toute la monocouche. Retirez et jetez la solution de trypsine et remettez les cellules dans l’incubateur pendant trois à cinq minutes. Après avoir examiné les cellules au microscope pour s’assurer qu’elles se sont détachées et flottent, ajoutez cinq millimètres de milieu de croissance frais contenant du sérum pour inactiver la trypsine et remettre les cellules en suspension avant de les transférer dans un tube conique de 15 millimètres. Centrifuger la suspension à 300 fois G et à température ambiante
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