Name: Fabbricazione di micro-tessuti utilizzando i moduli di Collagene Gel cellule contenenti (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-12-13T17:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 28 s
Description: Impara a creare micro-tessuti modulari utilizzando gel di collagene con cellule endoteliali per studi di ingegneria tissutale in vitro e in vivo. Questo metodo supporta la ricerca sulla rigenerazione tissutale.

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Il finanziamento è stato fornito dal National Institutes of Health (EB 001013), scienze naturali e ingegneria Research Council del Canada e Canadian Institutes of Health Research. Ringraziamo il Dott. AP McGuigan per la sua esperienza e aiutare nello sviluppo di moduli.

1) Preparazione dei tubi <ol><li> Tagliare 2-3 m di lunghezza di tubo in polietilene (0,76 mm ID x 1,22 mm di diametro). </li><li> Infilare un ago 20 G1 in una delle estremità del tubo. </li><li> Bobina il tubo e posto in un self-sigillo sacchetto convertitori (7 1 / 2 "x 13"). Le due estremità del tubo deve essere collocato alla fine non sigillata della borsa e registrato sul posto con nastro a gas sterilizzazione. </li><li> Borsa di tenuta e di gas sterilizzare. </li></ol> 2) Neutralizzazione di Collagene Nota: 1 ml di collagene riempie circa 2 metri di tubo in polietilene. <ol><li> Mettere la quantità necessaria di collagene necessario per la lunghezza desiderata del tubo in un tubo da 15 ml e continuare su ghiaccio. </li><li> Aggiungere 128 uL di 10x α-MEM per mL di collagene per il tubo e mescolare pipettare ripetutamente la soluzione. Nota: (1) La soluzione dovrebbe diventare giallo come la α-MEM è mescolato nel collagene acidificato e (2) cercare di minimizzare le bolle in fase di missaggio. </li><li> Neutralizzare il collagene con l'aggiunta di bicarbonato di sodio 0,8 M fino a quando il collagene, ha un pH di 7,4. Per una stima generale del bicarbonato di sodio pH aggiungere fino a quando la soluzione di collagene giallo diventa di colore rosa chiaro. Nota: Si richiede in genere 30-60 microlitri per ogni ml di collagene. </li><li> Tenere collagene neutralizzato sul ghiaccio fino al momento dell'uso, come il collagene viene neutralizzata gel se non mantenuto a 4 ° C. </li></ol> 3) Integrazione delle celle (opzionale) Nota: a seconda del tipo di cellula le cellule possono essere incorporati ad una concentrazione compresa tra 1 milione di cellule per ml a 20 milioni di cellule per ml. Utilizzare il supporto necessario per le celle che si desidera incorporare. <ol><li> Rimuovere i supporti dalle cellule e lavare con 5 ml di PBS. </li><li> Rimuovere PBS e aggiungere 3 mL tripsina-EDTA. </li><li> Incubare le cellule in tripsina-EDTA per 5 min a 37 ° C. </li><li> Risospendere le cellule in 7 dei media ml. </li><li> Contare le celle. </li><li> Trasferire il numero necessario di cellule per l'incorporamento di un tubo da 15 ml. </li><li> Agglomerare le cellule a 300 xg per 5 min. </li><li> Aspirare i media fuori il pellet cellulare. </li><li> Risospendere le cellule del collagene neutralizzato e tenere in ghiaccio. </li></ol> 4) gelificanti di Collagene <ol><li> In una cappa di sicurezza biologica tagliare la fine della busta sigillata contenente il tubo in polietilene. </li><li> Allegare una siringa da 3 ml l'ago 20G, alla fine, uno dei tubi con delle pinzette sterilizzate. Tenere il tubo nella borsa. </li><li> Inserire l'altra estremità del tubo nel collagene neutralizzato fino a quando la punta si trova al fondo della provetta conica con una pinzetta sterilizzata. Tenere il tubo conico sul ghiaccio. </li><li> Tirare il collagene nel tubo in polietilene da ritraendo lo stantuffo della siringa lentamente. Nota: Se il collagene è tirato nel tubo per poi rapidamente bolle si formano nel collagene. </li><li> Dopo aver estratto il collagene attraverso il tubo, estrarre l'ago 20G di tubi e mettere entrambe le estremità indietro nel sacco. Nastro la borsa chiusa. </li><li> Incubare il sacchetto a 37 ° C per 60 min. Se il collagene contiene cellule poi capovolgere il sacchetto sopra ogni 15 min. in modo che le cellule non accontentarsi di una parte del modulo. </li></ol> 5) Taglio di tubi contenenti il ​​collagene gelificati <ol><li> Intestazioni autoclave e la lama per il dispositivo di taglio e il vassoio per contenere tubo. </li><li> Montare il dispositivo di taglio. </li><li> Tubo posto in un vassoio sterile di fronte a taglio dispositivo e caricare il tubo nel dispositivo di taglio. </li><li> Impostare un tubo da 50 ml conica contenente 25 mL di mezzi in uscita del dispositivo di taglio per raccogliere i moduli di taglio. Nota: i media Usa contenente FBS, anche per il collagene, solo i moduli come i moduli non separato dal tubo senza FBS nei media. Se i moduli contengono cellule utilizzano il supporto richiesto per le cellule embedded. Se non ci sono cellule incorporati nei moduli di usare i media per le cellule endoteliali. </li><li> Impostare il dispositivo di taglio per taglio 2 mm di lunghezza di tubo e tagliare il tubo. </li><li> Incubare tagliare i moduli a 37 ° C per 60 min nel tubo da 50 ml. </li></ol> 6) Rimozione dei moduli collagene da tubi <ol><li> Vortex tubo 50 ml conica contenente moduli nel tubo per 10 secondi. Nota: Sii gentile quando separazione moduli integrati con celle ad alta densità per evitare la rottura. </li><li> Lasciate che i moduli depositano sul fondo della provetta. Dura circa 5 minuti. </li><li> Utilizzando un ampio bocca pipetta sierologica 10 ml trasferire i moduli si stabilirono in una provetta da 15 ml. </li><li> Ripetere i passaggi 6,1-6,3 due volte. </li><li> Passare al punto 7 per moduli cappotto con le cellule endoteliali o moduli di trasferimento a un non-tessuto piastra di coltura trattata. </li></ol> 7) rivestimento dei moduli con le cellule endoteliali <ol><li> Risolvere i moduli sul fondo di un tubo da 15 ml coniche con 5 ml di media per °e incorporati cellule. </li><li> Rimuovere i supporti dalle cellule endoteliali e lavare con 5 ml di PBS. </li><li> Rimuovere PBS e aggiungere 3 mL tripsina-EDTA. </li><li> Incubare le cellule in tripsina-EDTA per 5 min a 37 ° C. </li><li> Risospendere le cellule in 7 dei media ml. </li><li> Contare le celle. Hai bisogno di 5x10 6 cellule endoteliali per ml di moduli imballato nella parte inferiore del tubo conico. </li><li> Agglomerare le cellule a 300 xg per 5 minuti e risospendere in 5 ml di mezzi di comunicazione delle cellule endoteliali. </li><li> Aggiungere i 5 ml di supporti contenenti cellule endoteliali ai moduli. Nota: Questo dà un rapporto di 50:50 dei due tipi di supporto che abbiamo trovato a lavorare per la sopravvivenza e la funzione dei due tipi di cellule. Testare l'utilizzo di co-cultura medio formulato per garantire una corretta manutenzione dei fenotipi dei due tipi di cellule prima di utilizzarlo. </li><li> Incubare i moduli con le cellule endoteliali sia staticamente e dinamicamente. </li><li> Per i moduli statici mix di incubazione con cellule endoteliali per inversione e la camera d'aria in posizione verticale a 37 ° C per 15 min. Ripeti. </li><li> Dinamicamente seme le cellule endoteliali a dondolo con delicatezza il tubo a 37 ° C per 60 min. </li><li> Ripetere l'incubazione statica due volte. </li><li> Riposizionare i moduli in un piatto non tessuto coltura trattata e di incubare una notte a 37 ° C. </li><li> Il luogo giorno dopo, i moduli in una nuova non-tessuto piastra di coltura trattata con mezzi freschi (miscela 50:50 se si usa co-coltura di sistema) per rimuovere unattached cellule endoteliali. </li><li> Incubare i moduli che sono rivestite con le cellule endoteliali fino a che non coprono il 100% della superficie dei moduli. Questo richiede di solito circa 7 giorni. </li></ol> 8) Risultati Rappresentante: I moduli cilindrici sarà la prima volta che vengono rimossi dal tubo. Se i moduli contengono cellule embedded e / o sono rivestite di cellule endoteliali possono contratto fino al 50% in volume e sviluppare una forma ovale (Figura 1). I moduli diventerà anche più denso e più opaco se visti al microscopio ottico (figura 1). Anche quando le cellule endoteliali sono confluenti sulla superficie dei moduli vi è una formazione di giunzioni strette, che può essere visto da immunofluorescenza di VE-caderina (Figura 2). Trasferimento di massa analisi ha dimostrato che i moduli sono in grado di supportare celle ad alta densità (8x10 7 cellule / cm 3) senza lo sviluppo di un core necrotico a causa di trasportare l'ossigeno inadeguato, che è spesso problematico in più tessuti (ad esempio moduli di grande diametro, D = 1,4 mm) (Figura 3). <img src="/files/ftp_upload/2177/2177fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1: Modulo di fabbricazione e contrazione. Contrazione del modulo si sono verificati durante i tre giorni successivi HUVEC-C (linea di cellule endoteliali) semina risultati significativamente più piccola di diametro modulo e la lunghezza (p &lt;0,001) (A). Incorporato cellule HepG2 sono stati uniformemente distribuiti all'interno di moduli al momento della fabbricazione e mantenuto alta la vitalità (B). [Live cellule verdi, le cellule morte red] [adattato da Corstorphine 2010] <img src="/files/ftp_upload/2177/2177fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2: VE-caderina colorazione di immunofluorescenza di giunzioni cellulari CE strette 10 giorni dopo RAEC dove rivestito sulla superficie di un modulo. Barra di scala = 50 micron. <img src="/files/ftp_upload/2177/2177fig3.jpg" alt="Figura 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 3"> Figura 3: colorazione tricromica di Masson di moduli tipici (0,76 mm di diametro iniziale) e moduli di grandi dimensioni (1,4 mm di diametro iniziale) dimostrare l'effetto delle limitazioni di diffusione dell'ossigeno. Sette giorni dopo la fabbricazione, un gran numero di cellule morte si era formata all'interno del nucleo dei moduli di grandi dimensioni (pannello in basso a destra), lasciando solo un bordo sottile (~ 200μm di spessore) di cellule vitali. Al contrario, i piccoli moduli mantenuto una distribuzione uniforme ed elevato di cellule vive. [Moduli embedded con cellule HepG2 e rivestite con le cellule endoteliali.] [Tratto da Corstorphine 2010] <img src="/files/ftp_upload/2177/2177fig4.jpg" alt="Figura 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 4"> Figura 4: (A) HMEC-1 seminati su poloxamine - moduli di collagene. Dopo Giorno 1 del seeding del poloxamine-collagene moduli mantengono la loro forma cilindrica e non vi è limitata proprietà attaccamento delle cellule rispetto ai moduli collagene solo. Barra di scala = 200 micron. (B) Immagine al microscopio a luce di un modulo di collagene contenenti microsfere a base di PLGA biodegradabile. Barra di scala = 500 micron. <img src="/files/ftp_upload/2177/2177fig5.jpg" alt="Figura 5" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 5"> Figura 5: Esempi di test in vitro. (A) saggio Angiogenesi: capillare come formazioni sul modulo seminati con cellule endoteliali possono essere facilmente individuati e quantificati dopo 5 giorni di incubazione con derivate da tessuto adiposo cellule staminali. (B) immagini di microscopia confocale di un saggio dal vivo / morto sui moduli in cui la snenti di cellule vive è verde e per le cellule morte è rosso. <img src="/files/ftp_upload/2177/2177fig6.jpg" alt="Figura 6" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 6"> Figura 6: i moduli di collagene contenenti incorporato cellule staminali mesenchimali e di uno strato superficiale di cellule endoteliali. I moduli sono stati esposti a sollecitazioni di taglio (~ 0,64 dyn / cm 2) per 7 giorni in una camera di microfluidica e cominciano a mostrare la fusione nei punti di contatto. Le cellule endoteliali sono colorati con vWF (marrone) e nuclei di cellule staminali mesenchimali appaiono blu (H &amp; E). Barra di scala = 100μm. <img src="/files/ftp_upload/2177/2177fig7.jpg" alt="Figura 7" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 7"> Figura 7: Centinaia di moduli di collagene contenenti derivate da tessuto adiposo cellule staminali (ASC) e rivestito con cellule endoteliali microvascolari (HMEC) vengono impiantate sotto la pelle del topo per studiare ASC / HMEC interazione in vivo per le applicazioni di rigenerazione grasso.

<ol><li>Chamberlain, M. D., Gupta, R., Sefton, M. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chimeric+vessel+tissue+engineering+driven+by+endothelialized+modules%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Chimeric vessel tissue engineering driven by endothelialized modules.</a> , (2010).</li>
<li>Corstorphine, L. E., Sefton, M. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effectiveness+factor+and+diffusion+limitations+in+collagen+gel+modules+containing+HepG2+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Tissue+Eng+Regen+Med%22%5BJournal%5D)">Effectiveness factor and diffusion limitations in collagen gel modules containing HepG2 cells.</a> J Tissue Eng Regen Med. , (2010).</li>
<li>Gupta, R., Van Rooijen, N., Sefton, M. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fate+of+endothelialized+modular+constructs+implanted+in+an+omental+pouch+in+nude+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng%22%5BJournal%5D)">Fate of endothelialized modular constructs implanted in an omental pouch in nude rats.</a> Tissue Eng. Part A 15, 2875-2887 (2009).</li>
<li>Leung, B. M., Sefton, M. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+modular+tissue+engineering+construct+containing+smooth+muscle+cells+and+endothelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Biomed+Eng%22%5BJournal%5D)">A modular tissue engineering construct containing smooth muscle cells and endothelial cells.</a> Ann Biomed Eng. 35, 2039-2049 (2007).</li>
<li>McGuigan, A. P., Leung, B., Sefton, M. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fabrication+of+cell-containing+gel+modules+to+assemble+modular+tissue-engineered+constructs+%5Bcorrected%5D%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Fabrication of cell-containing gel modules to assemble modular tissue-engineered constructs [corrected].</a> Nat Protoc. 1, 2963-2969 (2006).</li>
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<li>McGuigan, A. P., Sefton, M. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+thrombogenicity+of+human+umbilical+vein+endothelial+cell+seeded+collagen+modules%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">The thrombogenicity of human umbilical vein endothelial cell seeded collagen modules.</a> Biomaterials. 29, 2453-2463 (2008).</li>
<li>Sosnik, A., Leung, B., McGuigan, A. P., Sefton, M. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collagen%2Fpoloxamine+hydrogels%3A+cytocompatibility+of+embedded+HepG2+cells+and+surface-attached+endothelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng%22%5BJournal%5D)">Collagen/poloxamine hydrogels: cytocompatibility of embedded HepG2 cells and surface-attached endothelial cells.</a> Tissue Eng. 11, 1807-1816 (2005).</li>
</ol>

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Abbiamo fabbricato diversi diversi micro-tessuti con moduli integrati con diversi tipi di cellule 1-11. Abbiamo incorporato con successo cardiomiociti primari, isolotti, le cellule staminali adipose e cellule stromali mesenchimali così come diverse linee cellulari tra cui HepG2, NIH 3T3 e clonare 9 cellule del fegato. Abbiamo ricoperto i moduli con vari tipi di cellule endoteliali, comprese le cellule endoteliali aortiche ratto, cellule endoteliali della vena ombelicale e le cellule endoteliali microvascolari...

<table><tbody><tr><td>Tubazione Intramedic PE60</td><td>BD Biosciences</td><td>427416</td><td>È possibile utilizzare tubazioni di diverso diametro per modificare il diametro dei moduli</td></tr><tr><td>Soluzione salina fosfato (PBS)</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>20012-027</td><td></td></tr><tr><td>Tripsina-EDTA</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>25200-072</td><td></td></tr><tr><td>Collagene acido Purcol, 3 mg/mL</td><td>Cedarlane Labs</td><td>5005-B</td><td></td></tr><tr><td>Bicarbonato di sodio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S5761</td><td></td></tr><tr><td>Ago da 20G</td><td>BD Biosciences</td><td>305175</td><td>Il diametro dell'ago deve essere simile al diametro della tubazione</td></tr><tr><td>Siringa da 3 mL</td><td>BD Biosciences</td><td>309585</td><td></td></tr><tr><td>Provetta da 15 mL</td><td>BD Biosciences</td><td>352096</td><td></td></tr><tr><td>Provetta da 50 mL</td><td>BD Biosciences</td><td>352070</td><td></td></tr><tr><td>Convertitori confezionati singolarmente 7 1/2&amp;#8221; x 13&amp;#8221;</td><td>Cardinal Health</td><td>92713</td><td></td></tr><tr><td>Pipetta sierologica da 10 ml con punta larga</td><td>BD Biosciences</td><td>357504</td><td></td></tr><tr><td>Pipetta sierologica da 10 ml</td><td>BD Biosciences</td><td>357551</td><td></td></tr><tr><td>Pipetta sierologica da 5 ml</td><td>BD Biosciences</td><td>357543</td><td></td></tr></tbody></table>

fabbricazione di micro-tessuti utilizzando i moduli di collagene gel cellule contenenti

Fabrication of Micro-tissues using Modules of Collagen Gel Containing Cells

Questo protocollo descrive la fabbricazione di un tipo di micro-tessuti chiamate moduli. L&#39;approccio modulo genera uniforme, scalabile e tessuti vascolarizzati. I moduli possono essere fatte di collagene così come altri materiali gelable o reticolabile. Sono circa 2 mm di lunghezza e 0,7 mm di diametro sulla fabbricazione, ma ridursi in dimensione con le cellule incorporato o quando i moduli sono rivestite di cellule endoteliali. I moduli singolarmente sono abbastanza piccoli che le celle sono incorporate nel limitare la diffusione di ossigeno e altre sostanze nutritive, ma i moduli possono essere imballate insieme per formare tessuti che sono più grandi perfusable. Questi tessuti sono modulari in costruzione a causa diversi tipi di cellule possono essere incorporati in o rivestiti sui moduli prima di essere imballate insieme per formare tessuti complessi. Ci sono tre passi principali per rendere i moduli: (1) neutralizzare il collagene e l&#39;incorporamento di cellule in esso, (2) gelificazione il collagene nel tubo e tagliare i moduli e (3) rivestimento dei moduli con le cellule endoteliali.

Creazione di micro-tessuti con gel di collagene cilindriche, chiamati moduli, che contengono cellule embedded e la cui superficie è rivestita con le cellule endoteliali.

Fabbricazione di micro-tessuti utilizzando i moduli di Collagene Gel cellule contenenti

Questo protocollo descrive la fabbricazione di un tipo di microtessuti denominati moduli. L'approccio basato sui moduli genera strutture uniformi, scalabili e vascolarizzate...

L'obiettivo generale di questa procedura è produrre microtessuti modulari che possono essere utilizzati per esperimenti di ingegneria tissutale. Questo viene ottenuto innanzitutto aspirando la soluzione di collagene in un tubo di polietilene mediante una siringa e successivamente inducendo la gelificazione del collagene. Il secondo passaggio consiste nel tagliare il tubo di polietilene in segmenti lunghi due millimetri per formare i moduli microtessutali.Il terzo passaggio della procedura consiste nel separare i moduli dal tubo, e infine i moduli vengono rivestiti con cellule endoteliali. In definitiva, i micro tessuti ottenuti possono essere utilizzati per saggi cellulari in vitro allo scopo di studiare l'interazione tra cellule mediante una camera microfluidica. Inoltre, i micro tessuti possono essere impiantati per generare tessuti destinati allo studio dell'interazione e del rimodellamento dei micro tessuti in vivo.Ciao, mi chiamo Brendan Long del laboratorio Sepan presso l'Università di Toronto. Uno degli ostacoli principali nella creazione di sostituti tessutali tridimensionali di grandi dimensioni è la mancanza di una rapida vascolarizzazione dopo l'impianto. In questo video, vi mostreremo come creare tessuti modulari rivestiti con cellule endoteliali per superare tale limitazione.La procedura sarà dimostrata da deemed Chamberlain, un borsista post-dottorato del laboratorio di Septin. La quantità di collagene da neutralizzare dipenderà dalla lunghezza del tubo in polietilene. In questa dimostrazione, utilizzeremo un tubo in polietilene lungo due metri con un diametro interno di 0,76 millimetri e un diametro esterno di 1,22 millimetri.Per preparare il tubo, inserire un ago da 20 G in un'estremità del tubo, quindi posizionare il tubo in una busta autoclavabile con chiusura ermetica per la sterilizzazione gassosa. Poiché un millilitro di collagene riempie circa due metri di tubo in polietilene, neutralizzeremo un millilitro di collagene. Versare il collagene in un tubo conico da 15 millilitri e mantenere il tubo sul ghiaccio.Aggiungere 128 microlitri di 10 x alpha MEM per millilitro di collagene al tubo e mescolare ripetutamente aspirando e dispensando la soluzione con una pipetta. Avendo cura di minimizzare la formazione di bolle, la soluzione dovrebbe diventare gialla quando l'alpha MEM viene mescolata con il collagene acidificato. Successivamente, neutralizzare il collagene aggiungendo bicarbonato di sodio 0,8 M. Per una stima generale del pH, aggiungere bicarbonato di sodio fino a quando la soluzione di collagene gialla diventa di colore rosa chiaro.Di solito sono necessari da 30 a 60 microlitri per millilitro di collagene per raggiungere un pH di 7,4. Per evitare che il collagene neutralizzato geli, mantenerlo sul ghiaccio fino al momento dell'uso. Per iniziare la procedura di gelificazione del collagene, prendere il sacchetto contenente il tubo di polietilene sterilizzato e portarlo all'interno di una cappa a sicurezza biologica; tagliare l'estremità sigillata del sacchetto mantenendo il tubo all'interno del sacchetto stesso.Utilizzare pinze sterili per fissare una siringa da tre millilitri all'ago da 20 gauge precedentemente inserito in un'estremità del tubo. Inserire l'altra estremità del tubo nel collagene neutralizzato fino a quando la punta raggiunge il fondo del tubo conico, che deve essere mantenuto sul ghiaccio. Questo passaggio successivo va eseguito lentamente, altrimenti si introducono bolle d'aria nel collagene.Ritrarre lentamente lo stantuffo della siringa per aspirare il collagene nel tubo di polietilene. Quando il collagene è stato completamente aspirato attraverso il tubo, rimuovere l'ago da 20 gauge ed inserire nuovamente entrambe le estremità del tubo all'interno della busta. Dopo aver sigillato la busta con del nastro adesivo, incubare a 37 gradi Celsius per 60 minuti.Si utilizzerà un dispositivo di taglio preassemblato per tagliare il tubo. Per iniziare questa procedura, posizionare il tubo in un vassoio sterile davanti al dispositivo di taglio e inserire il tubo nel dispositivo di taglio all'uscita dello stesso; preparare un tubo conico da 50 millilitri contenente 25 millilitri di mezzo per cellule endoteliali. Per raccogliere i moduli tagliati, impostare il dispositivo di taglio in modo da tagliare spezzoni di tubo di due millimetri e quindi procedere al taglio del tubo.Incubare i moduli tagliati nel tubo conico da 50 millilitri a 37 gradi Celsius per 60 minuti. Per rimuovere i moduli di collagene dal tubo, vortexare il tubo conico da 50 litri contenente i moduli a velocità media. Lasciare sedimentare il modulo sul fondo del tubo per 10 secondi, operazione che richiede circa cinque minuti.Un pellet sciolto di moduli si formerà sul fondo del tubo, mentre il tubo formerà uno strato in superficie al mezzo. Dopo che i moduli si sono depositati, utilizzare una pipetta sierologica da 10 millilitri con bocca larga per trasferirli in un tubo conico da 15 millilitri. Vortexare il tubo conico da 15 millilitri, quindi lasciare depositare i moduli per altre due volte.I moduli sedimentati dal secondo e terzo vortice vengono trasferiti anche essi nel tubo da 15 millilitri. Dopo che tutti i moduli sono stati rimossi dal tubo e raccolti insieme, portare il volume del mezzo nel tubo a cinque millilitri. I moduli sono ora pronti per essere rivestiti con cellule endoteliali, come verrà mostrato successivamente per preparare le cellule endoteliali al rivestimento dei moduli.Prima di tutto, rimuovere il mezzo dalle cellule e lavare con PBS. Dopo aver rimosso il PBS, aggiungere tre millilitri di tripsina EDTA e incubare per cinque minuti a 37 gradi Celsius. Successivamente, risospendere le cellule in sette millilitri di mezzo e trasferirle in un tubo da 15 millilitri.Contare le cellule utilizzando un emocitometro; saranno necessarie cinque volte 10 alla sesta cellule endoteliali per millilitro di moduli compattati sul fondo del tubo conico. Centrifugare le cellule a 300 ×g per cinque minuti. Risospendere il pellet cellulare in cinque millilitri di mezzo per cellule endoteliali.Ora aggiungere cinque millilitri di mezzo contenente cellule endoteliali ai moduli. I moduli vengono incubati con le cellule endoteliali, sia in condizioni statiche che dinamiche: per l'incubazione statica, mescolare i moduli con le cellule endoteliali mediante inversione, quindi posizionare il tubo in posizione verticale a 37 gradi Celsius per 15 minuti. Dopo 15 minuti, invertire nuovamente il tubo e incubare a 37 gradi Celsius per altri 15 minuti.Per incubare i moduli con le cellule endoteliali in modo dinamico, agitare delicatamente il tubo da 15 millilitri a 37 gradi Celsius per 60 minuti. Al termine dell'incubazione con le cellule endoteliali, trasferire i moduli in una piastra non trattata per colture cellulari e incubare tutta la notte a 37 gradi Celsius; il giorno successivo, posizionare i moduli in una nuova piastra non trattata per colture cellulari con mezzo fresco per rimuovere le cellule endoteliali non aderite. Incubare i moduli rivestiti con cellule endoteliali a 37 gradi Celsius fino a quando le cellule copriranno il 100% della superficie dei moduli.Questo richiede solitamente circa sette giorni. I moduli appariranno cilindrici quando vengono rimossi per la prima volta dal tubo. Se sono ricoperti da cellule endoteliali, possono contrarsi fino al 50% del volume e assumere una forma ovale, oltre a diventare più densi e opachi quando osservati al microscopio ottico.In queste immagini, il diametro e la lunghezza dei moduli sono indicati rispettivamente con d e l. Questa immagine mostra cellule Hep G2 incorporate, distribuite in modo uniforme all'interno dei moduli al momento della fabbricazione. Le cellule hanno mantenuto un'elevata vitalità, indicata dal colore verde delle cellule vive.Le cellule morte appariranno di colore rosso quando le cellule endoteliali sono confluenti. Sulla superficie dei moduli si forma una giunzione stretta, visibile mediante immunofluorescenza. La colorazione della cadherina VE per l'analisi del trasferimento di massa ha dimostrato che i moduli sono in grado di sostenere elevate densità cellulari senza sviluppare un nucleo necrotico a causa di un trasporto inadeguato di ossigeno, problema spesso riscontrato nei tessuti di maggiori dimensioni.In questo esempio, la colorazione con tri-cromo di massa di moduli di piccole dimensioni tipici mostra che i moduli hanno mantenuto una distribuzione uniforme ed elevata di cellule vive sette giorni dopo la fabbricazione. Al contrario, un elevato numero di cellule morte si era formato nel nucleo dei moduli di grandi dimensioni, lasciando soltanto un sottile strato periferico di cellule vitali. Sono stati inoltre prodotti moduli con una miscela di collagene e un polimero a ine oppure contenenti microsfere eluente farmaco.Qui, quando le cellule EC hm sono seminate su moduli di collagene palin, i moduli mantengono la loro forma cilindrica e presentano proprietà di adesione cellulare limitate rispetto ai moduli di solo collagene. Viene mostrata un'immagine al microscopio ottico di un modulo di collagene contenente microsfere biodegradabili a base di PLGA. Diversi saggi in vitro si sono dimostrati compatibili con questi moduli.Ad esempio, in un saggio di angiogenesi, formazioni simili a capillari su un modulo seminato con cellule endoteliali possono essere facilmente rilevate e quantificate dopo cinque giorni di incubazione con cellule staminali derivate dal tessuto adiposo. In un altro esempio, immagini al microscopio confocale di un saggio live/dead sui moduli mostrano le cellule vive colorate in verde e le cellule morte colorate in rosso. Infine, i moduli sono stati utilizzati anche in camere microfluidiche e impiantati in topi e ratti per studiare l'interazione tra diversi tipi cellulari e il modo in cui i microtessuti vengono rimodellati in risposta dell'organismo ospite.Al termine della procedura, i moduli possono essere coltivati in una piastra di Petri o in altri contenitori come un biorreattore o un dispositivo microfluidico. Questo metodo può essere inoltre adattato per creare diversi tipi di tessuto utilizzando varie combinazioni di tipi cellulari o tubi con diametri differenti. Grazie per aver guardato.

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