$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Prendi i neuroni fissi e permeabilizzati in un tubo.
Aggiungere un buffer di blocco per impedire il legame di anticorpi non specifici.
Centrifugare la sospensione e rimuovere il surnatante. Quindi, risospendere i neuroni in tampone.
Trasferire la sospensione in parti uguali in provette contenenti anticorpi primari non marcati e marcati con fluoroforo.
Incubare, consentendo agli anticorpi di legarsi in modo specifico alla catena respiratoria mitocondriale o alle subunità del complesso MRC, a una proteina associata al DNA mitocondriale e a una proteina della membrana esterna mitocondriale all'interno dei neuroni.
Rimuovere eventuali anticorpi non legati.
Incubare con anticorpi secondari marcati con fluorofori che si legano agli anticorpi primari non marcati.
Centrifugare la miscela ed eliminare il surnatante.
Risospendere i neuroni in tampone e trasferirli in provette da microcentrifuga.
Eseguire la citometria a flusso per rilevare i segnali fluorescenti sui neuroni marcati, corrispondenti ai livelli di espressione delle subunità del complesso MRC e la misurazione dei livelli relativi di DNA mitocondriale.
Bloccare i campioni in 1 millilitro di tampone bloccante e lavare le cellule mediante centrifugazione con PBS come dimostrato. Per rilevare diversi complessi e subunità mitocondriali, incubare le cellule per 30 minuti con i rispettivi anticorpi primari descritti nel manoscritto del testo. Dopo aver lavato le cellule una volta con PBS, incubare le cellule con anticorpi secondari per 30 minuti.
Al termine dell'incubazione, lavare e risospendere le cellule in PBS come dimostrato. Trasferire la sospensione cellulare in una provetta da microcentrifuga da 1,5 millilitri, tenuta al buio, su ghiaccio. Successivamente, analizza le cellule sul citometro a flusso e rileva i segnali e filtra uno utilizzando un filtro passa-banda 530/30.