Name: Creazione di Sub-50 Nm nanofluidic giunzioni in PDMS Microfluidic Chip tramite processo di auto-assemblaggio di particelle colloidale (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-03-13T15:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 13 s
Description: Scopri la tecnica di auto-assemblaggio di nanoparticelle di silice colloidale per creare giunzioni nanofluidiche in chip microfluidici PDMS. Questo metodo consente la concentrazione elettrocinetica di campioni di DNA e proteine con membrane selettive per cationi.

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Questo lavoro è stato sostenuto da NIH R21 EB008177-01A2 e New York University di Abu Dhabi (NYUAD) Fund Research Enhancement 2013. Esprimiamo il nostro ringraziamento al personale tecnico del MIT MTL per il loro supporto durante la microfabbricazione e James Weston e Nikolas Giakoumidis di NYUAD per la loro supporto a scattare foto al SEM e la costruzione di un partitore di tensione, rispettivamente. La fabbricazione di dispositivi di PDMS è stato condotto nella struttura di base microfabbricazione di NYUAD. Infine, vorremmo ringraziare Rebecca Pittam dal NYUAD Centro per la borsa di studio digitale per riprese e montaggio video.

1. Preparazione del cordone Sospensioni silice colloidale <ol><li> Preparazione di 300 nm e 500 nm silice sospensioni tallone <ol><li> Vortex la sospensione di silice tallone stock (10% w / v in acqua) per 30 sec. per ottenere una sospensione omogenea. Pipettare un totale di 600 microlitri sospensione madre in una provetta da 1,5 ml e centrifugare a 2.600 xg per 1 min. </li><li> Sostituire il surnatante con 400 microlitri di tampone 1 mM sodio fosfato (PB, pH 7,0). </li><li> Sospendere le perline di silice in una concentrazione finale del 15% in 1 mM soluzione di fosfato di sodio a pH 7,0 mediante vortex. </li></ol></li><li> Superficie funzionalizzare perline carbossilici silice 500 nm con poli (allilamina cloridrato, PAH), e con poli polielettroliti (sodio stirene solfonato, PSS) <ol><li> Sospendere 0,1 g di 500 perline di silice nm con gruppo carbossilico con 10 ml 1 M NaCl (pH 7,0) per 1% (w / v) sferette. </li><li> Preparare 0,4% PAH (MW 65K) in 1 M NaCl sciogliendo 300 ml di soluzione madre (20% w / v in acqua) in 15 ml di 1 M NaCl. Preparare 0,9% PSS (MW 70K) in soluzione 1 M NaCl sciogliendo 0,18 g PSS in 20 ml di soluzione 1 M NaCl. Vortex sia soluzioni per 1 min. per sciogliere completamente i polielettroliti. </li><li> Aggiungere 200 ml di soluzione di IPA a 9,8 ml di 1% sfere carbossilici silice in una provetta da 15 ml per depositare uno strato di polielettrolita carica positiva su perline di silice con carbossile gruppo funzionale. Agitare la sospensione di sferette per 1 min. e incubare su un rotatore tubo per 60 min. a RT. </li><li> Centrifugare la sospensione di sferette a 1801 xg per 1 min. e lavare i non legate PAH cinque volte con acqua deionizzata 10 ml. Dopo ogni centrifuga e la rimozione del supernatante, le perle sono state densamente sul fondo della provetta. Interrompere il ciuffo tallone pipettando vigorosa con 2 ml di acqua deionizzata prima di aggiungere 8 ml di acqua deionizzata in modo che le perle possono essere ri-sospesi e lavato via prima della fase successiva centrifugazione. </li><li> Seguirela procedura descritta in 1.2.3 e 1.2.4 per la verniciatura PSS di depositare uno strato di carica negativa sulle perle. Risospendere le sfere in 9,8 ml di 1 M NaCl prima della deposizione di PSS dopo aver rimosso il surnatante acqua deionizzata dalla fase di lavaggio 5 ° di 1.2.4. <ol><li> Utilizzare la stessa fase di pipettaggio vigoroso con 2 ml di 1 M NaCl per rompere il ciuffo tallone sul fondo della provetta 15 ml e aggiungere 8 ml di 1 M NaCl. Aggiungere 200 ml di soluzione PSS a 9,8 ml delle perline di silice depositati con un singolo strato di IPA. Dopo vortex per 1 min. e incubazione per 60 min. sul rotatore tubo, ripetere 5 fasi di lavaggio con acqua deionizzata. </li><li> Misurare il potenziale zeta delle perline prima e dopo ogni rivestimento polielettrolita utilizzando un sistema di dispersione della luce dinamica secondo il protocollo del produttore per verificare la procedura di deposizione polielettrolita è stata eseguita correttamente (vedi Tabella 1). </li></ol></li><li> Ripetere cinque fasi di lavaggio con acqua deionizzata seguenti strato singolo PSSdeposizione e risospendere le sfere in 650 ml di 1 mM tampone fosfato di sodio con 0,05% Tween 20 (15% w / v) prima dell&#39;uso nel dispositivo microfluidico per migliorare la sua scorrevolezza. </li></ol></li><li> Seguire la procedura sopra descritta da 1.2.5 a 1.2.6 per 500 perle nm silice con ammina gruppo funzionale per depositare un singolo strato di PSS. </li></ol> 2. Realizzazione della PDMS Microfluidic Chip <ol><li> Microfabbricazione del maestro di silicio <ol><li> Realizzare il maestro di silicio per lo stampaggio PDMS utilizzando tecniche di microfabbricazione come segue. <ol><li> cappotto Spin un sottile fotosensibile 1 micron a 4.000 giri su un wafer di silicio. Modello il livello utilizzando la litografia di proiezione (tempo di esposizione 170 msec.) E 700 Nm incidere nanocanali planari profonde e 2 micron di larghezza (in qualità di nanotraps per le perline di silice) con ioni reattivi. </li><li> Utilizzare i seguenti parametri di incisione per ottenere una velocità di attacco di 3,5 nm / s: CHF 3 (45 sccm), CF 4 (15 SCCM), Ar (100 SCCM), pressione 100 mTorr, potenza RF 200 W. </li></ol></li><li> cappotto Spin il secondo spesso strato di resina fotosensibile 1 micron a 2.000 giri ed eseguire un allineamento alle nanotraps precedenza fantasia. Motivo microcanali tramite contatto litografia e da una profonda incisione ioni reattivi (DRIE) di silicio. Utilizzare la DRIE parametri 26 nella tabella 2. </li></ol></li><li> Fabbricazione di stampo PDMS <ol><li> Silanizzare il maestro silicio con triclorosilano (50 ml) in un vaso vuoto O / N. ATTENZIONE: Tricholorosilane è un materiale tossico e corrosivo. Usare sempre in una cappa chimica con un equipaggiamento di protezione personale. </li><li> Miscelare la base per il catalizzatore nel rapporto 10: 1 e fuso PDMS sul master silicio silanizzato e curare a 70 ° C per 2 ore in un forno a convezione. </li><li> Rimuovere la lastra PDMS dal master silicio con un coltello e plasma legame su un wafer vuoto utilizzando un detergente plasmatica dopo una pltrattamento asma in un pulitore plasma per 1 min. Attaccare i nastri lungo il bordo per segnare una linea di partizione per i seguenti PDMS colata passo. </li><li> Silanizzare lo stampo PDMS in un barattolo vuoto con triclorosilano (50 ml) O / N. </li><li> PDMS Cast (base: catalizzatore in rapporto 10: 1) sullo stampo PDMS silanizzata e curare a 70 ° C per 2 ore in un forno a convezione. </li></ol></li><li> Fabbricazione del dispositivo PDMS <ol><li> Rimuovere la lastra PDMS curato dallo stampo PDMS lungo la linea divisoria contrassegnato con il nastro. </li><li> fori serbatoio punzone con 1,5 millimetri biopsia, pulito, con un nastro, lavare con alcool isopropilico (IPA) e asciugare con azoto. </li><li> legame Plasma il dispositivo PDMS su un x 75 mm vetrino da microscopio a 25 mm dopo un trattamento al plasma e un detersivo plasma per 1 min. </li></ol></li><li> Ultrasonicate la sospensione di sferette per 60 min. in un bagno ad ultrasuoni prima del riempimento. Pipetta una sospensione tallone 10 ml (300 nm di silice non-funzionalizzato essereannunci o 500 perline carbossilici nm silice con strati PAH-PSS, o 500 nm silice perline amminici con uno strato PSS) nelle insenature 4 e 6 ciascuno (vedi Figura 1 A, B) immediatamente dopo l&#39;incollaggio plasma della piastrina PDMS a un substrato di vetro. Toccare delicatamente sul chip PDMS con un puntale per migliorare l&#39;imballaggio tallone. <ol><li> Dopo aver riempito i canali di distribuzione di perline, coprire tutte le prese ad eccezione di 1 e 9 con del nastro adesivo. Far asciugare il dispositivo per 3 ore e conservare a + 4 ° C prima dell&#39;uso. Figura 2 fornisce uno schema passo-passo del processo di auto-assemblaggio colloidale. </li></ol></li></ol> 3. Esperimento per electrokinetic Concentrazione di DNA <ol><li> Riempire i serbatoi 3, 7 con una soluzione tampone (10 microlitri di 1 mM PB) e serbatoio 5 con un campione di DNA (10 ml di 10 nM in 1 mM PB) e applicare una leggera pressione negativa con un puntale capovolta su serbatoi 2 , 8 e 10 per riempire i canali con le soluzioni senza bolle (vedi <strong&gt; Figura 1B). </li><li> Aggiungere 10 ml di 1 mM PB di serbatoi 2 e 8 e 10 ml di 10 nM DNA al serbatoio 10 per equilibrare la pressione ed attendere 5 min. per raggiungere l&#39;equilibrio. </li><li> Inserire i fili Pt in serbatoi 3, 5, 7, 10. </li><li> Applicare tensione attraverso la giunzione nanofluidic utilizzando un partitore di tensione collegato ad un misuratore di sorgente e fili Pt. applicare First 30 V su serbatoi 5, 10 e GND serbatoi 3, 7. </li><li> Diminuire la tensione di 25 V sul serbatoio 10 dopo ~ 30 sec. </li><li> Utilizzare un otturatore meccanico con apertura periodica ogni 5 s per minimizzare photobleaching del campione durante la registrazione dei segnali di fluorescenza del DNA. </li></ol>

<ol><li>Mawatari, K., Kazoe, Y., Shimizu, H., Pihosh, Y., Kitamori, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extended-Nanofluidics%3A+Fundamental+Technologies%2C+Unique+Liquid+Properties%2C+and+Application+in+Chemical+and+Bio+Analysis+Methods+and+Devices%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Chem%22%5BJournal%5D)">Extended-Nanofluidics: Fundamental Technologies, Unique Liquid Properties, and Application in Chemical and Bio Analysis Methods and Devices.</a> Anal Chem. 86, 4068-4077 (2014).</li>
<li>Tsukahara, T., Mawatari, K., Kitamori, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integrated+extended-nano+chemical+systems+on+a+chip%5BTitle%5D)+AND+%22Chem+Soc+Rev%22%5BJournal%5D)">Integrated extended-nano chemical systems on a chip.</a> Chem Soc Rev. 39, 1000-1013 (2010).</li>
<li>Mani, A., Zangle, T. A., Santiago, J. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On+the+Propagation+of+Concentration+Polarization+from+Microchannel-Nanochannel+Interfaces+Part+I%3A+Analytical+Model+and+Characteristic+Analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">On the Propagation of Concentration Polarization from Microchannel-Nanochannel Interfaces Part I: Analytical Model and Characteristic Analysis.</a> Langmuir. 25, 3898-3908 (2009).</li>
<li>Aizel, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enrichment+of+nanoparticles+and+bacteria+using+electroless+and+manual+actuation+modes+of+a+bypass+nanofluidic+device%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Enrichment of nanoparticles and bacteria using electroless and manual actuation modes of a bypass nanofluidic device.</a> Lab Chip. 13, 4476-4485 (2013).</li>
<li>Wang, Y. C., Stevens, A. L., Han, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Million-fold+preconcentration+of+proteins+and+peptides+by+nanofluidic+filter%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Chem%22%5BJournal%5D)">Million-fold preconcentration of proteins and peptides by nanofluidic filter.</a> Anal Chem. 77, 4293-4299 (2005).</li>
<li>Karnik, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrostatic+control+of+ions+and+molecules+in+nanofluidic+transistors%5BTitle%5D)+AND+%22Nano+letters%22%5BJournal%5D)">Electrostatic control of ions and molecules in nanofluidic transistors.</a> Nano letters. 5, 943-948 (2005).</li>
<li>Mao, P., Han, J. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fabrication+and+characterization+of+20+nm+planar+nanofluidic+channels+by+glass-glass+and+glass-silicon+bonding%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Fabrication and characterization of 20 nm planar nanofluidic channels by glass-glass and glass-silicon bonding.</a> Lab Chip. 5, 837-844 (2005).</li>
<li>Mao, P., Han, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Massively-parallel+ultra-high-aspect-ratio+nanochannels+as+mesoporous+membranes%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Massively-parallel ultra-high-aspect-ratio nanochannels as mesoporous membranes.</a> Lab Chip. 9, 586-591 (2009).</li>
<li>Balducci, A., Mao, P., Han, J. Y., Doyle, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Double-stranded+DNA+diffusion+in+slitlike+nanochannels%5BTitle%5D)+AND+%22Macromolecules%22%5BJournal%5D)">Double-stranded DNA diffusion in slitlike nanochannels.</a> Macromolecules. 39, 6273-6281 (2006).</li>
<li>Yamada, M., Mao, P., Fu, J. P., Han, J. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+Quantification+of+Disease-Marker+Proteins+Using+Continuous-Flow+Immunoseparation+in+a+Nanosieve+Fluidic+Device%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Chem%22%5BJournal%5D)">Rapid Quantification of Disease-Marker Proteins Using Continuous-Flow Immunoseparation in a Nanosieve Fluidic Device.</a> Anal Chem. 81, 7067-7074 (2009).</li>
<li>Huh, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tuneable+elastomeric+nanochannels+for+nanofluidic+manipulation%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Mater%22%5BJournal%5D)">Tuneable elastomeric nanochannels for nanofluidic manipulation.</a> Nat Mater. 6, 424-428 (2007).</li>
<li>Chung, S., Lee, J. H., Moon, M. W., Han, J., Kamm, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-lithographic+wrinkle+nanochannels+for+protein+preconcentration%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Mater%22%5BJournal%5D)">Non-lithographic wrinkle nanochannels for protein preconcentration.</a> Adv Mater. 20, 3011-3016 (2008).</li>
<li>Park, S. M., Huh, Y. S., Craighead, H. G., Erickson, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+for+nanofluidic+device+prototyping+using+elastomeric+collapse%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci%22%5BJournal%5D)">A method for nanofluidic device prototyping using elastomeric collapse.</a> Proc Natl Acad Sci. 106, 15549-15554 (2009).</li>
<li>Zeng, Y., Harrison, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Self-assembled+colloidal+arrays+as+three-dimensional+nanofluidic+sieves+for+separation+of+biomolecules+on+microchips%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Chem%22%5BJournal%5D)">Self-assembled colloidal arrays as three-dimensional nanofluidic sieves for separation of biomolecules on microchips.</a> Anal Chem. 79, 2289-2295 (2007).</li>
<li>Malekpourkoupaei, A., Kostiuk, L. W., Harrison, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fabrication+of+Binary+Opal+Lattices+in+Microfluidic+Devices%5BTitle%5D)+AND+%22Chem+Mat%22%5BJournal%5D)">Fabrication of Binary Opal Lattices in Microfluidic Devices.</a> Chem Mat. 25, 3808-3815 (2013).</li>
<li>Merlin, A., Salmon, J. -B., Leng, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic-assisted+growth+of+colloidal+crystals%5BTitle%5D)+AND+%22Soft+Matter%22%5BJournal%5D)">Microfluidic-assisted growth of colloidal crystals.</a> Soft Matter. 8, 3526-3537 (2012).</li>
<li>Schepelina, O., Zharov, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PNIPAAM-modified+nanoporous+colloidal+films+with+positive+and+negative+temperature+gating%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">PNIPAAM-modified nanoporous colloidal films with positive and negative temperature gating.</a> Langmuir. 23, 12704-12709 (2007).</li>
<li>Schepelina, O., Zharov, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Poly%282-%28dimethylamino%29ethyl+methacrylate%29-Modified+Nanoporous+Colloidal+Films+with+pH+and+Ion+Response%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Poly(2-(dimethylamino)ethyl methacrylate)-Modified Nanoporous Colloidal Films with pH and Ion Response.</a> Langmuir. 24, 14188-14194 (2008).</li>
<li>Smith, J. J., Zharov, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ion+transport+in+sulfonated+nanoporous+colloidal+films%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Ion transport in sulfonated nanoporous colloidal films.</a> Langmuir. 24, 2650-2654 (2008).</li>
<li>Gaspar, A., Hernandez, L., Stevens, S., Gomez, F. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrochromatography+in+microchips+packed+with+conventional+reversed-phase+silica+particles%5BTitle%5D)+AND+%22Electrophoresis%22%5BJournal%5D)">Electrochromatography in microchips packed with conventional reversed-phase silica particles.</a> Electrophoresis. 29, 1638-1642 (2008).</li>
<li>Lee, S. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-Fidelity+Optofluidic+On-Chip+Sensors+Using+Well-Defined+Gold+Nanowell+Crystals%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Chem%22%5BJournal%5D)">High-Fidelity Optofluidic On-Chip Sensors Using Well-Defined Gold Nanowell Crystals.</a> Anal Chem. 83, 9174-9180 (2011).</li>
<li>Hu, Y. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interconnected+ordered+nanoporous+networks+of+colloidal+crystals+integrated+on+a+microfluidic+chip+for+highly+efficient+protein+concentration%5BTitle%5D)+AND+%22Electrophoresis%22%5BJournal%5D)">Interconnected ordered nanoporous networks of colloidal crystals integrated on a microfluidic chip for highly efficient protein concentration.</a> Electrophoresis. 32, 3424-3430 (2011).</li>
<li>Zhang, D. -W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfabrication-free+fused+silica+nanofluidic+interface+for+on+chip+electrokinetic+stacking+of+DNA%5BTitle%5D)+AND+%22Microfluid+Nanofluid%22%5BJournal%5D)">Microfabrication-free fused silica nanofluidic interface for on chip electrokinetic stacking of DNA.</a> Microfluid Nanofluid. 14, 69-76 (2013).</li>
<li>Syed, A., Mangano, L., Mao, P., Han, J., Song, Y. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Creating+sub-50+nm+nanofluidic+junctions+in+a+PDMS+microchip+via+self-assembly+process+of+colloidal+silica+beads+for+electrokinetic+concentration+of+biomolecules%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Creating sub-50 nm nanofluidic junctions in a PDMS microchip via self-assembly process of colloidal silica beads for electrokinetic concentration of biomolecules.</a> Lab Chip. 14, 4455-4460 (2014).</li>
<li>Kim, S. J., Song, Y. A., Han, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanofluidic+concentration+devices+for+biomolecules+utilizing+ion+concentration+polarization%3A+theory%2C+fabrication%2C+and+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Chem+Soc+Rev%22%5BJournal%5D)">Nanofluidic concentration devices for biomolecules utilizing ion concentration polarization: theory, fabrication, and applications.</a> Chem Soc Rev. 39, 912-922 (2010).</li>
<li>Fu, J. P., Mao, P., Han, J. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Continuous-flow+bioseparation+using+microfabricated+anisotropic+nanofluidic+sieving+structures%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Continuous-flow bioseparation using microfabricated anisotropic nanofluidic sieving structures.</a> Nat Protoc. 4, 1681-1698 (2009).</li>
<li>Plecis, A., Nanteuil, C., Haghiri-Gosnet, A. M., Chen, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electropreconcentration+with+Charge-Selective+Nanochannels%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Chem%22%5BJournal%5D)">Electropreconcentration with Charge-Selective Nanochannels.</a> Anal Chem. 80, 9542-9550 (2008).</li>
<li>Ko, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanofluidic+preconcentration+device+in+a+straight+microchannel+using+ion+concentration+polarization%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Nanofluidic preconcentration device in a straight microchannel using ion concentration polarization.</a> Lab Chip. 12, 4472-4482 (2012).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Seguendo lo schema di progettazione dispositivo comune per studiare nanofluidica, abbiamo inventato un incrocio nanofluidic tra due canali microfluidica utilizzando l&#39;auto-assemblaggio di evaporazione-driven di nanoparticelle colloidali invece di litografia patterning una serie di nanocanali. Quando scorre le particelle colloidali nel canale consegna tallone, una matrice di nanotraps con una profondità di 700 nm e una larghezza di 2 micron su entrambi i lati del canale di recapito tallone con una larghezza totale di...

Nanofluidics è un settore emergente della ricerca di μ TAS (Micro Total Analysis Systems) per studiare i processi biologici o fenomeni di trasporto di ioni e molecole alla scala di lunghezza di 10 GENNAIO - 10 FEBBRAIO nm. Con l&#39;avvento degli strumenti nanofluidic quali nanocanali, processi di trasporto di molecole e ioni possono essere monitorati con una precisione senza precedenti e manipolati, se necessario, sfruttando le caratteristiche che sono disponibili solo in questa scala di lunghezza per la separazione e la rilevazione. 1,2 Uno dei queste caratteristiche nanoscala è un elevato rapporto tra superficie e massa di carica (o numero Dukhin) in nanocanali che può causare uno squilibrio di carica e avviare la polarizzazione concentrazione di ioni (ICP) tra il nanochannel e microcanali. 3 Una piattaforma dispositivo comune per lo studio dei fenomeni nanofluidic consiste in un sistema a due microcanali collegati da una serie di nanocanali come una giunzione. 4-6 </sup&gt; Il materiale di scelta per la costruzione di un dispositivo quale nanofluidic è il silicio causa della sua elevata rigidità che impedisce il canale di collassare durante i processi di incollaggio. 7 Tuttavia, dispositivo di silicio fabbricazione richiede maschere costose e notevoli quantità di elaborazione nella struttura camera sterile. 8- 10 Data la particolarità di fabbricazione di dispositivi per stampaggio e di legame al plasma, polidimetilsilossano (PDMS) è stata ampiamente accettata come materiale da costruzione per la microfluidica e sarebbe un materiale ideale per nanofluidica pure. Tuttavia, il modulo suo basso di Young intorno 360-870 KPa, rende il canale PDMS facilmente comprimibile durante l&#39;incollaggio al plasma. Il rapporto minimo aspetto del nanochannel (larghezza profondità) deve essere inferiore a 10: 1 che significa che la fabbricazione di dispositivi PDMS tramite fotolitografia principio diventerà estremamente difficile se la profondità nanochannel deve essere inferiore a 100 nm, che richiedono una larghezza di canale inferiore al limite di corrente di fotolitoografia a circa 1 micron. Per superare questo limite, ci sono stati tentativi di creare nanocanali in PDMS utilizzando metodi non litografiche come lo stretching di avviare le crepe con profondità media di 78 nm 11 o per formare le rughe dopo il trattamento al plasma. 12 Crollare un canale PDMS con pressione meccanica permesso un altezza nanochannel partire da 60 nm. 13 Anche se questi metodi non-litografici altamente inventive ammessi nanocanali costruzione di sotto di 100 nm in profondità, la controllabilità dimensionale della fabbricazione nanochannel pone ancora un ostacolo per una vasta accettazione di PDMS come materiale da costruzione per i dispositivi nanofluidic. Un altro problema critico delle nanocanali, sia in silicio o PDMS, è la funzionalizzazione superficiale nel caso vi è la necessità di modificare la carica superficiale sulla parete del canale per la manipolazione di ioni o molecole. Dopo il montaggio dispositivo tramite incollaggio, i nanocanali sono estremamente difficili daraggiungere per funzionalizzazione superficiale dovuto al trasporto a diffusione limitata. Per creare un canale nanoscala con alta fedeltà dimensionale e facile funzionalizzazione superficiale, il metodo di auto-assemblaggio di particelle colloidali indotte mediante evaporazione 14-16 in dispositivi microfluidici può essere uno degli approcci promettenti. Oltre la controllabilità della dimensione dei pori e proprietà di superficie, c&#39;è anche la possibilità di regolare la dimensione dei pori quando si utilizzano in-situ particelle colloidali rivestite polielettroliti controllando la temperatura, pH 17, 18,19 e forza ionica. 18 A causa di queste vantaggi, il metodo di auto-assemblaggio di particelle colloidali ha già trovato applicazioni per electrochromatography, 20 biosensori, concentrazione 21 proteine ​​22 e la separazione delle proteine ​​e DNA in microfluidica. 14,23 in questo studio abbiamo dispiegati questo metodo autoassemblaggio per costruire un dispositivo preconcentrazione electrokinetic inPDMS che richiede una giunzione tra due nanofluidic microcanali. 24 Il meccanismo fondamentale dietro la concentrazione electrokinetic si basa sulla polarizzazione concentrazione di ioni (ICP). 25 Una descrizione dettagliata di produzione e di assemblaggio passi è inclusa nella seguente protocollo.

<table><tbody><tr><td>Sale di sodio poli(acido stirensolfonico)</td><td>Polysciences&nbsp;</td><td>08772</td><td></td></tr><tr><td>Soluzione di poli(allilammina)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>479144-5G</td><td></td></tr><tr><td>Microsfera di silice - 300 nm</td><td>Polysciences&nbsp;</td><td>24321</td><td></td></tr><tr><td>Microsfera di silice - 500 nm</td><td>Polysciences&nbsp;</td><td>24323</td><td></td></tr><tr><td>Microsfera di silice carbossile funzionale - 500 nm</td><td>Polysciences&nbsp;</td><td>24753</td><td></td></tr><tr><td>Microsfera di silice ammina funzionale - 500 nm</td><td>Polysciences&nbsp;</td><td>24756</td><td></td></tr><tr><td>Sylgard 184 Kit elastomero siliconico</td><td>Dow Corning</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Trichlorosilane</td><td>Sigma Aldrich</td><td>175552</td><td></td></tr><tr><td>Pulitore ad ultrasuoni</td><td>Branson</td><td>3510</td><td></td></tr><tr><td>Rotatore di tubi...</td><td>VWR</td><td>10136-084</td><td></td></tr><tr><td>Miscelatore a vortice</td><td>WiseMix</td><td>VM-10</td><td></td></tr><tr><td>Microcentrifuga</td><td>VWR</td><td>Micro 1207</td><td></td></tr><tr><td>Pulitore al plasma</td><td>Harrick Plasma</td><td>PDC-001-HP</td><td></td></tr><tr><td>Miscelatore PDMS</td><td>Thinky</td><td>ARE-250</td><td></td></tr><tr><td>Forno</td><td>Thermo Scientific</td><td>PR305220M</td><td></td></tr><tr><td>Microscopio</td> <td>a epifluorescenzaNikon</td><td>Eclipse Ti CCD</td><td></td></tr><tr><td>Camera</td><td>Andor</td><td>Clara</td><td></td></tr><tr><td>Elettrodi in platino</td><td>Alfa Aesar</td><td>43014</td><td></td></tr><tr><td>Misuratore di sorgente</td><td>Keithley</td><td>2400</td><td></td></tr><tr><td>Multimetro digitale</td><td>Extech</td><td>410</td><td></td></tr><tr><td>Vetrini per microscopia</td><td>Thermo Scientific</td><td>2951-001</td><td></td></tr><tr><td>Tween 20</td><td>Merck Millipore</td><td>822184</td><td></td></tr><tr><td>Cloruro di sodio</td><td>Fisher Scientific</td><td>7646-14-5</td><td></td></tr><tr><td>Fosfato di sodio monobasico</td><td>Sigma Aldrich</td><td>71505</td><td></td></tr><tr><td>Fosfato di sodio bibasico</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S3264</td><td></td></tr><tr><td>DNA</td><td>IDT</td><td></td><td>CAA CCG ATG CCA CAT CAT TAG CTA C</td></tr><tr><td>B-Ficoeritrina</td><td>Life Technologies</td><td>P-800</td><td></td></tr><tr><td>Sistema di diffusione dinamica della luce per la misurazione del potenziale Zeta</td><td>Malvern</td><td>Zetasizer Nano S</td><td></td></tr><tr><td>Photoresist</td><td>Shipley</td><td>SPR700-1.0</td><td></td></tr><tr><td>Litografia a proiezione</td><td>Nikon</td><td>NSR2005i9</td><td></td></tr><tr><td>Incisore ionico reattivo</td><td>Materiali applicati</td><td>AME P5000</td><td></td></tr><tr><td>ICP incisore ionico reattivo profondo</td><td>STS</td><td>STS-6 "</td><td></td></tr><tr><td>Litografia a contatto</td><td>Visioni elettroniche</td><td>EV620</td><td></td></tr><tr><td>Photoresist Coater Developer</td><td>SSI</td><td>SSI 150</td><td></td></tr><tr><td>Profilatrice di superfici senza contatto</td><td>Wyko</td><td>NT 9800</td><td></td></tr></tbody></table>

creazione di sub-50 nm nanofluidic giunzioni in pdms microfluidic chip tramite processo di auto-assemblaggio di particelle colloidale

Creating Sub-50 Nm Nanofluidic Junctions in PDMS Microfluidic Chip via Self-Assembly Process of Colloidal Particles

Polidimetilsilossano (PDMS) è il materiale da costruzione prevalente di rendere i dispositivi microfluidici per la sua facilità di stampaggio e di incollaggio e la sua trasparenza. A causa della morbidezza del materiale PDMS, tuttavia, è difficile da utilizzare per la costruzione di PDMS nanocanali. I canali tendono a collassare facilmente durante l&#39;incollaggio plasma. In questo articolo, presentiamo un metodo di auto-assemblaggio di evaporazione-driven di nanoparticelle silice colloidale per creare giunzioni nanofluidic con sub-50 nm pori tra due microcanali. La dimensione dei pori e la carica superficiale della giunzione nanofluidic è sintonizzabile semplicemente cambiando il colloidale di silice tallone dimensioni e la superficie funzionalizzazione esterno del dispositivo microfluidico assemblato in una fiala prima che il processo di auto-assemblaggio. Utilizzando l&#39;auto-assemblaggio di nanoparticelle con un formato del branello di 300 nm, 500 nm e 900 nm, è stato possibile realizzare una membrana porosa con dimensione dei pori di ~ 45 nm, ~ 75 nm e ~ 135 nm, rispettivamente. sotto elettricoal potenziale, questo nanoporous membrana avviato concentrazione di ioni di polarizzazione (ICP) agisce come membrana cationi selettiva concentrarsi DNA da ~ 1.700 volte entro 15 min. Questo processo nanofabbricazione non litografica apre una nuova possibilità di costruire una giunzione nanofluidic sintonizzabile per lo studio dei processi di trasporto nanoscala di ioni e molecole all&#39;interno un chip microfluidico PDMS.

Un chip concentratore electrokinetic in PDMS che contiene una giunzione nanofluidic auto-assemblato tra due microcanali è mostrato nella Figura 1A). Il canale al centro del dispositivo viene riempito con una soluzione campione di DNA e fiancheggiata da due canali di soluzione tampone per lato con 50 micron di larghezza canale di recapito tallone (Figura 1B). La sospensione colloidale di silice è volato nel canale di mandata tallone subito dopo l&#39;inco...

Proponiamo una semplice tecnica di auto-assemblaggio di nanoparticelle colloidali di silice per creare una giunzione nanofluidica tra due microcanali in polidimetilsilossano (PDMS). Utilizzando questa tecnica, una membrana a microsfere nanoporose con una dimensione dei pori fino a ~ 45 nm è stata costruita all'interno di un microcanale e applicata alla preconcentrazione elettrocinetica di campioni di DNA.

Creazione di Sub-50 Nm nanofluidic giunzioni in PDMS Microfluidic Chip tramite processo di auto-assemblaggio di particelle colloidale

Polydimethylsiloxane (PDMS) is the prevailing building material to make microfluidic devices due to its ease of molding and bonding as well as its ...

Questo protocollo dimostra una nuova e semplice tecnica di auto-assemblaggio di nanoparticelle di silice colloidale per creare una giunzione nanofluidica tra due microcanali in polidimetilsilossano. La membrana a microsfere con una dimensione dei pori di circa 45 nanometri, che funge da membrana cationo-selettiva, può essere utilizzata per la concentrazione elettrocinetica di campioni di DNA e proteine. Panoramica: Nella prima fase, il dispositivo PDMS con nanotrappole viene fuso attraverso un processo di doppio stampaggio.Dopo aver incollato al plasma il dispositivo su un substrato di vetro, le perle di silice funzionalizzate in superficie vengono iniettate nei microcanali per formare la membrana colloidale autoassemblante. Infine, una tensione viene applicata attraverso la membrana utilizzando un misuratore di sorgente e un divisore di tensione. La deplezione ionica e l'aumento della concentrazione sono osservati utilizzando un microscopio a epifluorescenza invertito, con una telecamera CCD.Preparazione delle sospensioni di particelle colloidali di silice: A partire dalle perle di silice da 300 nanometri; stock di perline vortex per 30 secondi; prelevare 600 microlitri di sospensione in una provetta Eppendorf e centrifugare per un minuto a 2.600 g. Dopo la centrifugazione, rimuovere con cura il surnatante. Risospendere le perle con 400 microlitri di tampone fosfato di sodio da un millimolare, per raggiungere una concentrazione di lavoro del 15%.Vortice per raggiungere una sospensione omogenea. Ripetere gli stessi passaggi per preparare perle di silice a 500 nanometri. Per le perle di silice carbossilica da 500 nanometri, pesare 100 milligrammi in un tubo Falcon da 15 millilitri.Quindi trasferire 9,8 millilitri di cloruro di sodio monomolare per risospendere le perle. Agitare energicamente il tubo. Capovolgere il tubo più volte per spostare le perline colpite sul fondo.Per modificare la carica superficiale sulle perle, prepariamo due polielettroliti: PAH e PSS. Il PSS allo 0,9% viene preparato sciogliendo 180 milligrammi di PSS con 200 millilitri di cloruro di sodio monomolare. Lo 0,4% di IPA viene preparato condensando 300 microlitri della soluzione madre in 15 millilitri di cloruro di sodio monomolare.Agitare entrambe le soluzioni per assicurarsi che siano completamente disciolte. Per depositare uno strato di IPA caricato positivamente, aggiungere 200 microlitri della soluzione di IPA alla sospensione del tallone. Agitare per un minuto e incubare la sospensione in un rotatore per un'ora a temperatura ambiente.Per lavare via gli IPA non legati, centrifugare la sospensione a 1,801 g per un minuto, per far precipitare le perle. Rimuovere il surnatante. Pipettare da uno a due millilitri d'acqua nel tubo per rompere le perline.Aggiungere i restanti otto millilitri di acqua e poi vortice. Ripetere la procedura di lavaggio altre quattro volte. Dopo il quinto lavaggio e la centrifugazione, scartare il surnatante e ripristinare le perle con 9,8 millilitri di cloruro di sodio monomolare.Per depositare lo strato di PSS caricato negativamente, aggiungere 200 microlitri della soluzione di PSS alla sospensione del tallone. Agitare per un minuto e incubare la sospensione nel rotatore per un'ora a temperatura ambiente. Lavare le perline cinque volte con acqua deionizzata come fatto per il rivestimento IPA.Dopo l'ultimo lavaggio, scartare il surnatante e risospendere le perle con 650 microlitri di tampone fosfato di sodio millimolare allo 0,05%Tween 20. Trasferire la sospensione del tallone in una provetta Eppendorf. Per la preparazione delle perle di silice amminica a 500 nanometri, ripetere la stessa procedura per depositare un singolo strato di PSS caricato negativamente.Fabbricazione del chip microfluidico PDMS: per fabbricare il master in silicio, prima rivestire un fotoresist sottile un micrometro a 4.000 giri/min su un wafer di silicio. Quindi utilizzare la litografia a proiezione e l'incisione ionica reattiva per creare nanocanali planari profondi 700 nanometri e larghi due micrometri come nanotrappole per le perline. Quindi rivestire il 2° strato di fotoresist a 2.000 giri/min ed eseguire un allineamento con le nanotrappole precedentemente modellate.Aggiungere i microcanali tramite litografia a contatto e incisione ionica del silicio con reattività profonda. Per creare lo strato di rilascio, silanare il master di silicone in un barattolo sottovuoto con 50 microlitri di triclorosilano, per una notte. Per fondere lo stampo PDMS, mescolare la base PDMS con l'agente indurente in un rapporto 10:1.Versare il composto sopra il master in silicone. Mettere il panetto con PDMS in un barattolo sottovuoto per eliminare le bolle d'aria e cuocerlo in forno a 70 gradi C per reticolare il PDMS. Dopo aver cotto per due ore, rimuovere con cura la lastra PDMS dal master in silicone.Trattare la superficie con plasma per creare un legame permanente con un wafer di silicio vuoto. Attacca del nastro lungo il bordo per contrassegnare una linea di partizione per la successiva fase di fusione PDMS. Per creare uno strato distaccante, silanare lo stampo PDMS in un barattolo sottovuoto per una notte.Gettare il PDMS sopra lo stampo PDMS e trasferirlo in un barattolo sottovuoto per il degasaggio. Quindi cuocerlo in forno. Staccare la lastra PDMS polimerizzata dallo stampo PDMS lungo la linea di partizione contrassegnata con nastro adesivo.Tagliare con cura i dispositivi e praticare dei fori con un punzone per biopsia da 1,5 millimetri nei serbatoi. Dopo la pulizia della superficie con nastro adesivo e alcool isopropilico, incollare al plasma il dispositivo PDMS su un vetrino da microscopio da 25 mm x 75 millimetri. Immediatamente dopo l'incollaggio al plasma, iniettare 10 microlitri di sospensione negli ingressi quattro e sei dei canali di erogazione delle microsfere.Dopo aver riempito i canali di erogazione delle perline, coprire tutti i serbatoi ad eccezione delle uscite uno e nove dei canali di erogazione delle perline. Asciugare il dispositivo all'aria per tre ore a temperatura ambiente e conservarlo a quattro gradi C prima dell'uso. Le micrografie del dispositivo mostrano le particelle colloidali assemblate all'interno dei canali di erogazione delle perle superiore e inferiore.L'immagine SEM mostra particelle colloidali di silice autoassemblate a 300 nanometri intrappolate con gli array di nanotrappole, tra il campione e il canale tampone. Riempire gli ingressi tre e sette dei canali tampone con 10 microlitri di tampone fosfato di sodio millimolare. Riempire l'ingresso del canale del campione cinque con 10 microlitri di campione di DNA a 10 nanomolari.Applicare una leggera pressione negativa con una punta di pipetta rovesciata su tutte le uscite per riempire i canali con le soluzioni senza bolle d'aria. Aggiungere 10 microlitri di tampone fosfato di sodio ai serbatoi due e otto e 10 microlitri di campione di DNA al serbatoio 10, per stabilizzare la pressione per cinque minuti. Esperimento per la concentrazione elettrocinetica del DNA: collegare il chip microfluidico con un divisore di tensione collegato a un misuratore di sorgente.Inserire i fili PT nei serbatoi tre, sette, cinque e 10. Applicare tensione attraverso una giunzione nanofluidica. Per prima cosa applicare 30 volt sui serbatoi cinque e 10 e a terra sui serbatoi tre e sette.Diminuire la tensione a 25 volt sul serbatoio 10 dopo circa 30 secondi. Risultati della preconcentrazione elettrocinetica: il canale microfluidico è riempito di DNA, con concentrazione iniziale a 10 nanomolari. Le micrografie time-lapse mostrano la formazione di una regione di deplezione ionica, entrambe le giunzioni colloidali nanofluidiche.La regione di esaurimento degli ioni è stata avviata in 10 secondi. Un tappo di DNA concentrato è stato generato quando la tensione è stata applicata al canale del campione, mentre i canali tampone sono stati messi a terra. Le linee tratteggiate sono state utilizzate per evidenziare le pareti del canale.Un fattore di concentrazione di circa 1.700 volte viene raggiunto entro 15 minuti utilizzando una membrana colloidale a 300 nanometri. L'intensità media della fluorescenza del DNA aumenta in funzione del tempo in un membrabe nanoporoso. Le linee tratteggiate rappresentano il livello del segnale per il DNA a 10 nanomolari, 17 micromolari, due micromolari e 10 micromolari.Il tappo concentrato viene generato sulla membrana nanoporosa delle perle di silice da 300 nanometri; le perle di silice a 500 nanometri; le perle di ammina di silice da 500 nanometri, rivestite con un singolo strato di PSS; e le perle di carbossile di silice da 500 nanometri, rivestite con due strati di IPA e PSS. Conclusioni: Utilizzando la membrana di silice colloidale autoassemblata con una dimensione dei pori stimata di 45 nanometri, abbiamo dimostrato la polarizzazione della concentrazione ionica vicino alla giunzione nanofluidica e abbiamo concentrato un campione di DNA di 1700 volte entro 15 minuti. Rispetto ai nanocanali a base di silicio, il principale vantaggio della membrana colloidale autoassemblata è la possibilità di eseguire la funzionalizzazione della superficie completamente al di fuori del dispositivo microfluidico sigillato, in una fiala separata.Riteniamo che questo approccio apra la possibilità di fabbricare rapidamente una piattaforma micro nanofluidica con pori di dimensioni facilmente regolabili, controllando la dimensione delle perle, la forza ionica o il valore del pH della soluzione tampone per studiare il trasporto ionico e molecolare nell'intervallo da 10 a 100 nanometri.

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Creazione di Sub-50 Nm nanofluidic giunzioni in PDMS Microfluidic Chip tramite processo di auto-assemblaggio di particelle colloidale (Video) | JoVE Journal

Creazione di Sub-50 Nm nanofluidic giunzioni in PDMS Microfluidic Chip tramite processo di auto-assemblaggio di particelle colloidale

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