Name: Campionamento, ordinamento e caratterizzando microplastiche negli ambienti acquatici con carichi di materiale solido in sospensione alta e grandi detriti galleggianti (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-07-28T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 31 s
Description: Scopri un protocollo per campionare e caratterizzare microplastiche in ambienti acquatici con alti carichi di sedimenti. Questo metodo consente di quantificare i contaminanti nei fiumi con precisione.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Il progetto per il quale è stato istituito questo protocollo è stato finanziato dal National Oceanic and Atmospheric Administration (NOAA) programma di detriti marini (n # NA16NO29990029). Vi ringraziamo Miles Corcoran alle grandi fiumi National Research and Education Center (NGRREC) a Alton, Illinois, per aiuto con operazione di selezione e barca di sito. Lavoro di campo e di laboratorio è stato completato con l'aiuto di Camille Buckley, Michael Abegg, Josiah Wray e Rebecca Wagner.

1. raccolta di campioni di acqua
<ol><li>Raccogliere campioni d'acqua e acqua dati di qualità di interesse in barca dove il fiume è ben mescolato, idealmente alle posizioni dove la fase di fiume o di scarico è noto (ad esempio, stazioni di misura di United States Geological Survey (USGS)). 20 per assicurare che l'acqua è ben mescolata, guida la barca utilizzando un misuratore portatile immerso nel fiume dove la conducibilità rimane relativamente costante.</li>
	<li>Presso i siti di campionamento, record posizione coordinate e profondità. Per trovare la profondità di 0,6, basta moltiplicare la profondità totale di 0,6. Misura parametri di qualità dell'acqua di interesse (ad es., torbidità, temperatura, conducibilità, pH e ossigeno disciolto (DO)) utilizzando un misuratore portatile. Per misurare i parametri, pompa acqua campione da profondità desiderata in un contenitore largo-bocca utilizzando la pompa peristaltica e immediatamente prendere le misure (punto 1.5).</li>
	<li>Utilizzare una pompa peristaltica con tubazione per ottenere campioni dalla superficie e profondità di 0,6. Allegare la lunghezza corretta della tubazione della pompa per la profondità specificata.<ol>
<li>A causa delle forti correnti in sistemi fluviali, allegare una catena di 6,4 mm saldata al tubo della pompa utilizzando fascette per aiutare il peso della tubazione. Alla fine della catena, inserire un blocco peso o cemento per ulteriore peso della catena e montaggio della tubazione. Attenzione: Non collegare il blocco di cemento o di peso direttamente al tubo della pompa.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Posizionare l'estremità degli effluenti del tubo sopra il bordo della barca, dall'abbigliamento che potesse far fibre. Abbassare lentamente la fine influente del tubo fino alla profondità desiderata (cioè, la superficie o la profondità di 0,6). Quindi, eseguire la pompa in senso inverso per spurgare il tubo con aria per almeno 30 s. Aria di spurgo, invertire la direzione di pompa e risciacquare il tubo con l'acqua del campione alla profondità desiderata, consentendo all'acqua di drenare fuori dalla barca o in un contenitore per rifiuti. Fermare la pompa dopo il tubo è stato sciacquato per almeno 30 s.</li>
	<li>Sciacquare il contenitore utilizzato per misure di qualità dell'acqua tre volte con acqua, scarico acqua di risciacquo ogni volta. Una volta risciacquato, riempire il contenitore con acqua campione e misurare i parametri di qualità dell'acqua di interesse utilizzando un misuratore portatile (punto 1.2).</li>
	<li>Raccogliere un sottocampione di microplastic inserendo l'effluente di tubazione in un contenitore di 1 L con etichetta, che è stato pre-risciacquato con almeno 250 mL di acqua DI tre volte. Quindi, risciacquare il contenitore altre tre volte con l'acqua del campione, eliminando l'acqua di risciacquo ogni volta. Una volta che il contenitore di microplastic viene sciacquato, riempirlo con il campione.</li>
	<li>Utilizzando lo stesso metodo di pompa peristaltica descritto al punto 1.6, raccogliere un sottocampione per solidi sospesi totali (SST) in un flacone da 250 mL con etichetta, che è stato pre-risciacquata con almeno 100 mL di acqua DI tre volte. Sciacquare la bottiglia tre volte con acqua di campione, scartando l'acqua di risciacquo ogni volta. Una volta che il contenitore di TSS è risciacquato, riempirlo con il campione.</li>
	<li>Raccogliere triplici copie di campo e gli spazii in bianco almeno una volta al giorno nel campo, nello stesso modo descritto pochi passi 1.6-1.7, per scopi di qualità assurance/quality control (QA/QC). Per raccogliere un campo vuoto, portare due contenitori 1 L DI acqua al campo. Dopo spurgo della tubazione della pompa con aria, aprire il primo contenitore DI acqua e sciacquare il tubo della pompa utilizzando il metodo descritto al punto 1.4. Una volta che il tubo è risciacquato, aprire il secondo contenitore di acqua DI e pompa in un contenitore vuoto di 1 L e una bottiglia da 250 mL per microplastic e TSS blanks, rispettivamente.</li>
	<li>È possibile memorizzare il microplastic e sottocampioni di TSS sul ghiaccio fino al ritorno al laboratorio, dove verranno archiviati a-20 ° C fino a quando non vengono elaborati. Attenzione: Assicurarsi di lasciare qualche spazio di testa nei contenitori del campione affinché non vengano danneggiati a causa di espansione del ghiaccio quando si congela. Nota: Il protocollo può essere messo in pausa qui.</li>
</ol>2. TSS determinazione
<ol><li>Uso United States Environmental Protection Agency (EPA) metodo 160,2 per determinare TSS con sottocampioni 250 mL raccolti nel campo23. Confrontare i valori calcolati di TSS con la plastica totale trovata.</li>
</ol>3. montaggio del dispositivo di filtrazione Microplastic
<ol><li>Sciacquare abbondantemente la filtrazione dispositivo e nylon mesh setacci (Figura 1) tre volte con almeno 250 mL di acqua deionizzata. Inserire setacci a maglia delle dimensioni dei pori desiderata (ad es., 50 µm, 100 µm, 300 µm, 500 µm) in ogni unione congiunta con poro dimensione decrescente dall'alto verso il basso del dispositivo di filtrazione (Figura 1A). Sigillare ogni unione congiunta ermeticamente per prevenire le infiltrazioni.</li>
	<li>Piegare i misto cellulosa ester membrana filtro/i (142 mm di diametro) di dimensioni del poro desiderata (ad es., 0,45 µm) in una forma di cono e inserirlo nel dispositivo di filtrazione: Nota: Piegare la membrana filtrante fornirà più superficie per impedire l'intasamento del filtro.<ol>
<li>Bagnare il filtro a membrana con dell'acqua distillata. Umido, piegare la membrana filtrante in una forma di cono con un diametro che si inserisce il dispositivo di filtrazione. Inoltre, piegare un piccolo labbro lungo il bordo del cono in modo che si adatta sopra la parte superiore dell'Unione congiunta (Figura 1B). Attenzione: La membrana filtrante deve essere bagnata prima di piegare per evitare strappi.</li>
		<li>Posto il cesto di maglia in acciaio inox nell'ultima unione congiunta (Figura 1). Posizionare il filtro a membrana a forma di cono nel Cestino (Figura 1). Piegare il labbro del filtro membrana sopra il bordo dell'Unione congiunta. Nota: Il cestello in rete sosterrà il filtro e ridurre le rotture dopo aver applicato un vuoto.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Posto una maglia del setaccio con il più piccolo formato del poro desiderata (ad es., 50 µm) sopra la membrana filtrante nell'ultima Unione comune visto in Figura 1. Nota: Ciò fornirà un sostegno supplementare per tenere il filtro a membrana in posizione durante la filtrazione.</li>
	<li>Una volta che tutti i giunti di Unione sono sigillati ermeticamente, collegare il tubo dalla parte superiore del pallone filtrante alla base del dispositivo di filtrazione. Quindi collegare il tubo dal lato del pallone filtrante per la pompa del vuoto come illustrato nella Figura 2.</li>
</ol><img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57969/57969fig1.jpg"> Figura 1 : Montaggio del dispositivo di filtrazione. (A) il dispositivo di filtrazione è assemblato mettendo setacci di maglie di dimensione dei pori desiderata nei giunti di Unione superiori. (B), la cellulosa mista estere membrana filtro/i devono essere piegati in una forma conica per adattarsi al diametro del dispositivo di filtrazione; il cono deve includere un piccolo labbro per adattarsi sopra il bordo dell'Unione congiunta per fissare il filtro in luogo. (C) A cestello in rete viene inserito nell'Unione per aggiungere stabilità per la membrana filtrante. (D), il filtro a membrana piegato è aggiunto al carrello della maglia e le maglie più piccole del setaccio sono posizionata sopra la parte superiore della membrana filtrante. Dispositivo di filtrazione (E) completamente assemblato. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/57969/57969fig1large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57969/57969fig2.jpg"> Figura 2 : Assemblea del pallone e della pompa filtro. Un pallone filtrante è collegato all'adattatore vuoto dispositivo di filtrazione utilizzando un tubo in vinile trasparente. Il pallone filtrante viene quindi collegato alla pompa del vuoto. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/57969/57969fig2large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
4. campione filtrazione
<ol><li>Raccogliere gli spazii in bianco di attrezzature prima della filtrazione ogni volta che il dispositivo è montato. Sciacquare accuratamente il dispositivo tre volte con almeno 250 mL di acqua deionizzata prima il vuoto è raccolti. Questi spazi vuoti vengono raccolti utilizzando la procedura descritta nei passaggi 4.2-4.4.</li>
	<li>Accendere la pompa del vuoto. Assicurarsi che la pressione della pompa a vuoto non superiore a 127 mm Hg, o la membrana filtrante potrebbe strapparsi. Attenzione: A seconda della portata di filtrazione del campione, la pressione potrebbe aumentare all'interno del dispositivo di filtrazione se sedimento intasa i setacci a maglia o filtri a membrana. Questo potrebbe potenzialmente portare ad una rottura nel filtro membrana prima di raggiungere una lettura di 127 mm Hg. Per questo motivo, guardare da vicino la pressione come potrebbe dover essere regolato sotto 127 mm Hg su una base di campione per campione.</li>
	<li>Utilizzare un cilindro graduato da 500 mL, triple risciacquato con almeno 250 mL di acqua deionizzata, per misurare il volume totale del campione. Registrare il volume e trasferire il campione dal cilindro graduato per il dispositivo di filtrazione. Attenzione: A seconda delle dimensioni del campione d'acqua e il pallone filtrante, il pallone filtrante potrebbe essere necessario essere svuotato più volte durante la filtrazione del campione.<ol>
<li>Per svuotare il pallone filtrante, spegnere la pompa e scollegare i due tubi flessibili dal pallone. Svuotare la beuta in un contenitore separato dei rifiuti. Attenzione: Mantenere l'acqua filtrata campione fino a quando l'intero campione è stato filtrato e si conferma che la membrana filtrante è intatta.</li>
		<li>Per continuare il ciclo di filtrazione, ricollegare i tubi al pallone filtrante, come descritto al punto 3.4 e accendere la pompa.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Una volta che l'intero campione è stato filtrato, lavare il contenitore del campione e il cilindro graduato tre volte con almeno 250 mL di acqua deionizzata. Dopo ogni risciacquo, filtrare l'acqua usata per risciacquare il contenitore e cilindro graduato per garantire tutti i particolati sono stati filtrati.</li>
</ol>5. Smontaggio del dispositivo di filtrazione Microplastic
<ol><li>Sciacquare le pareti del dispositivo di filtrazione tre volte con almeno 250 mL di acqua deionizzata per garantire che tutte le particelle sono stati filtrati e nessun rimangono sul dispositivo di filtrazione.</li>
	<li>Spegnere la pompa del vuoto, quindi attentamente Svitare e staccare il primo sindacato. Accendere la pompa e utilizzare una bottiglia DI acqua per sciacquare i bordi del giunto dell'Unione. Lavare particolato ai bordi della maglia del setaccio nel centro per garantire che essi sono tutti raccolti.</li>
	<li>Spegnere la pompa e rimuovere con cautela il setaccio con maglie con il forcipe pulito, facendo attenzione a non toccare le particelle sulla superficie del setaccio della maglia. Inserire il setaccio con maglie in un piatto coperto di Petri e asciugare a 60 ᵒC per 24 h. Una volta asciutto, i campioni possono essere conservati fino a quando possono iniziare l'analisi.</li>
	<li>Ripetere i passaggi da 5.1-5.3 per ogni articolazione dell'Unione un setaccio con maglie di alloggiamento.</li>
	<li>Per l'ultima unione congiunta che ospita un filtro a membrana e setaccio maglia, ripetere i passaggi da 5.1-5.3 per il setaccio con maglie. Attenzione: Prestare attenzione quando risciacquo il setaccio con maglie, come campione può essere perso se sciacquato sotto la membrana filtrante.</li>
	<li>Accendere la pompa del vuoto e sciacquare i bordi del filtro membrana con una bottiglia DI acqua. Lavare particolato ai bordi del filtro membrana al centro per garantire che il campione completo è filtrato. Prima di rimuovere il filtro a membrana, assicurarsi che tutta l'acqua è passata attraverso di essa e che l'acqua non è pool sulla sua superficie. Attenzione: Ancora una volta, stare attenti durante il risciacquo del filtro a membrana come campione può essere perso se risciacquati sotto esso.</li>
	<li>Rimuovere con cautela e si dispiegano il filtro a membrana con il forcipe. Inserire il filtro a membrana in una capsula di Petri o sacchetto di carta appropriato per il suo diametro. Nota: La membrana filtrante deve essere umida mentre gestito per evitare strappi.</li>
	<li>Asciugare il filtro membrana coperto in forno a 60 ᵒC per 24 h. Una volta asciutto, conservare i campioni fino a quando possono iniziare l'analisi. Nota: Il protocollo può essere messo in pausa qui.</li>
</ol>6. particolato analisi
<ol><li>Lasciare il setaccio con maglie o membrana filtro di Petri e togliere solo il coperchio per iniziare esaminando il campione per microplastiche. Questo farà sì che se eventuali particelle cadono con il filtro a maglia setaccio o membrana che resteranno in di Petri, che può essere analizzato dopo tutte le particelle vengono rimossi dal filtro a setaccio o membrana rete.</li>
	<li>Esaminare il filtro a maglia setaccio o membrana sotto uno stereomicroscopio (ingrandimento X 14-90) per identificare fibre e particelle di plastica sospetta. Utilizzare i seguenti criteri quando individui sospette materie plastiche: nessuna struttura cellulare, le fibre sono spessore uguale in tutto, e le particelle non sono lucido24.</li>
	<li>Rimuovere tutti i sospetti di plastica dal filtro maglia setaccio o membrana e inserirli in una fiala di raccolta contenente etanolo al 70%. Registrare il colore e la forma (ad es., particolato, fibra, pellicola, ecc.) di ogni sospetto di plastica.</li>
	<li>Una volta che tutte le materie plastiche sospetta sono rimossi dal filtro maglia setaccio o membrana e quantificate, esaminare il coperchio ed il fondo del piatto Petri seguendo passaggi 6.2-6.3.</li>
	<li>Dopo la maglia setaccio o filtro a membrana e capsula di Petri sono state esaminate e tutte le materie plastiche sospetta rimosso e quantificato, posizionare le particelle o fibre dalla fiala di raccolta su un vetrino rivestito in alluminio 12 slot per analisi usando un micro ATR-FTIR. Nota: Non è sempre fattibile per testare ogni sospetto plastica sulla micro ATR-FTIR. Pertanto, "strategicamente scegliere" l'importo che affronterà gli obiettivi dello studio e anomalie nella plastica sospetti (ad esempio, un numero elevato di particelle o fibre simili)25. In senso generale, verificare come molti sospetti materie plastiche come possibile, ma non meno di 20%.<ol>
<li>Una volta ritenuta sospetto delle materie plastiche sono analizzate utilizzando micro ATR-FTIR, utilizzo di database spettrale per determinare se un dato campione è di plastica e, in caso affermativo, determinare il tipo di polimero di plastica.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Fowler, C. W. <a target="_blank" href="https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0025326X87800206">Marine debris and northern fur seals: A case study.</a> Marine Pollution Bulletin. 18, 326-335 (2015).</li>
<li>Eriksen, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plastic+pollution+in+the+world%27s+oceans%3A+More+than+5+trillion+plastic+pieces+weighing+over+250%2C000+tons+afloat+at+sea%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Plastic pollution in the world's oceans: More than 5 trillion plastic pieces weighing over 250,000 tons afloat at sea.</a> PLoS One. 9 (12), e111913(2014).</li>
<li>Jambeck, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Marine+pollution.+Plastic+waste+inputs+from+land+into+the+ocean%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Marine pollution. Plastic waste inputs from land into the ocean.</a> Science. 347 (6223), 768-771 (2015).</li>
<li>Andrady, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microplastics+in+the+marine+environment%5BTitle%5D)+AND+%22Marine+Pollution+Bulletin%22%5BJournal%5D)">Microplastics in the marine environment.</a> Marine Pollution Bulletin. 62 (8), 1596-1605 (2011).</li>
<li>Cole, M., Lindeque, P., Halsband, C., Galloway, T. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microplastics+as+contaminants+in+the+marine+environment%3A+a+review%5BTitle%5D)+AND+%22Marine+Pollution+Bulletin%22%5BJournal%5D)">Microplastics as contaminants in the marine environment: a review.</a> Marine Pollution Bulletin. 62 (12), 2588-2597 (2011).</li>
<li>Browne, M. A., et al. <a target="_blank" href="https://pubs.acs.org/doi/abs/10.1021/es201811s">Accumulation of microplastic on shorelines worldwide: Sources and sinks.</a> Environmental Science & Technology. 45 (21), 9175-9179 (2011).</li>
<li>Murphy, F., Ewins, C., Carbonnier, F., Quinn, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Wastewater+treatment+works+%28WwTW%29+as+a+source+of+microplastics+in+the+aquatic+environment%5BTitle%5D)+AND+%22Environmental+Science+%26+Technology%22%5BJournal%5D)">Wastewater treatment works (WwTW) as a source of microplastics in the aquatic environment.</a> Environmental Science & Technology. 50 (11), 5800-5808 (2016).</li>
<li>Zubris, K. A., Richards, B. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthetic+fibers+as+an+indicator+of+land+application+of+sludge%5BTitle%5D)+AND+%22Environmental+Pollution%22%5BJournal%5D)">Synthetic fibers as an indicator of land application of sludge.</a> Environmental Pollution. 138 (2), 201-211 (2005).</li>
<li>Fendall, L. S., Sewell, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contributing+to+marine+pollution+by+washing+your+face%3A+Microplastics+in+facial+cleansers%5BTitle%5D)+AND+%22Marine+Pollution+Bulletin%22%5BJournal%5D)">Contributing to marine pollution by washing your face: Microplastics in facial cleansers.</a> Marine Pollution Bulletin. 58 (8), 1225-1228 (2009).</li>
<li>Gregory, M. R. <a target="_blank" href="https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0025326X96000471">Plastic 'scrubbers' in hand cleansers: A further (and minor) source for marine pollution identified.</a> Marine Pollution Bulletin. 32 (12), 867-871 (1996).</li>
<li>Bayo, J., Olmos, S., López-Castellanos, J., Alcolea, A. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/316645721_Microplastics_and_microfibers_in_the_sludge_of_a_municipal_wastewater_treatment_plant">Microplastics and microfibers in the sludge of a municipal wastewater treatment plant.</a> International Journal of Sustainable Development and Planning. 11, 812-821 (2016).</li>
<li>McCormick, A., Hoellein, T. J., Mason, S. A., Schluep, J., Kelly, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microplastic+is+an+abundant+and+distinct+microbial+habitat+in+an+urban+river%5BTitle%5D)+AND+%22Environmental+Science+%26+Technology%22%5BJournal%5D)">Microplastic is an abundant and distinct microbial habitat in an urban river.</a> Environmental Science & Technology. 48 (20), 11863-11871 (2014).</li>
<li>Farrell, P., Nelson, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Trophic+level+transfer+of+microplastic%3A+Mytilus+edulis+%28L.%29+to+Carcinus+maenas+%28L.%29%5BTitle%5D)+AND+%22Environmental+Pollution%22%5BJournal%5D)">Trophic level transfer of microplastic: Mytilus edulis (L.) to Carcinus maenas (L.).</a> Environmental Pollution. 177, 1-3 (2013).</li>
<li>Rochman, C. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scientific+evidence+supports+a+ban+on+microbeads%5BTitle%5D)+AND+%22Environmental+Science+%26+Technology%22%5BJournal%5D)">Scientific evidence supports a ban on microbeads.</a> Environmental Science & Technology. 49 (18), 10759-10761 (2015).</li>
<li>Taylor, M. L., Gwinnett, C., Robinson, L. F., Woodall, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plastic+microfibre+ingestion+by+deep-sea+organisms%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Plastic microfibre ingestion by deep-sea organisms.</a> Scientific Reports. 6, 33997(2016).</li>
<li>Mani, T., Hauk, A., Walter, U., Burkhardt-Holm, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microplastics+profile+along+the+Rhine+River%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Microplastics profile along the Rhine River.</a> Scientific Reports. 5, 17988(2015).</li>
<li>Morritt, D., Stefanoudis, P. V., Pearce, D., Crimmen, O. A., Clark, P. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plastic+in+the+Thames%3A+a+river+runs+through+it%5BTitle%5D)+AND+%22Marine+Pollution+Bulletin%22%5BJournal%5D)">Plastic in the Thames: a river runs through it.</a> Marine Pollution Bulletin. 78 (1-2), 196-200 (2014).</li>
<li>National Park Servies. , 
 <a target="_blank" href="https://www.nps.gov/miss/riverfacts.htm">https://www.nps.gov/miss/riverfacts.htm</a> (2017).</li>
<li>United States Census Bureau. , 
 <a target="_blank" href="https://www.census.gov/geo/maps-data/data/tiger-data.html">https://www.census.gov/geo/maps-data/data/tiger-data.html</a> (2010).</li>
<li>United States Geological Survey (USGS). , 
 <a target="_blank" href="https://waterdata.usgs.gov/nwis/rt">https://waterdata.usgs.gov/nwis/rt</a> (2016).</li>
<li>Grimes, C. B. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/254304874_Fishery_Production_and_the_Mississippi_River_Discharge">Fishery Production and the Mississippi River.</a> Fisheries. 28 (8), 17-26 (2001).</li>
<li>Talvitie, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Do+wastewater+treatment+plants+act+as+a+potential+point+source+of+microplastics%3F+Preliminary+study+in+the+coastal+Gulf+of+Finland%2C+Baltic+Sea%5BTitle%5D)+AND+%22Water+Science+and+Technology%22%5BJournal%5D)">Do wastewater treatment plants act as a potential point source of microplastics? Preliminary study in the coastal Gulf of Finland, Baltic Sea.</a> Water Science and Technology. 72 (9), 1495-1504 (2015).</li>
<li><a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22United+States+Environmental+Protection+Agency+%28USEPA%29+Method+160.2%3A+Residue%2C+Non-filtereable+%28Gravimetric%2C+Dried+at+103-105C%29%22">United States Environmental Protection Agency (USEPA) Method 160.2: Residue, Non-filtereable (Gravimetric, Dried at 103-105C)</a>. , (1971).</li>
<li>Nor, N. H., Obbard, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microplastics+in+Singapore%27s+coastal+mangrove+ecosystems%5BTitle%5D)+AND+%22Marine+Pollution+Bulletin%22%5BJournal%5D)">Microplastics in Singapore's coastal mangrove ecosystems.</a> Marine Pollution Bulletin. 79 (1-2), 278-283 (2014).</li>
<li>Woodall, L. C., Gwinnett, C., Packer, M., Thompson, R. C., Robinson, L. F., Paterson, G. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+a+forensic+science+approach+to+minimize+environmental+contamination+and+to+identify+microfibres+in+marine+sediments%5BTitle%5D)+AND+%22Marine+Pollution+Bulletin%22%5BJournal%5D)">Using a forensic science approach to minimize environmental contamination and to identify microfibres in marine sediments.</a> Marine Pollution Bulletin. 95 (1), 40-46 (2015).</li>
<li><a target="_blank" href="https://www.congress.gov/bill/114th-congress/senate-bill/1424">S. 1424 - 114th Congress: Microbead-Free Waters Act of 2015</a>. , <a target="_blank" href="www.congress.gov">www.congress.gov</a> (2015).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Microplastic raccolta utilizzando reti da posta derivanti è il metodo convenzionale in ambienti come l'oceano dove sia sedimenti e le concentrazioni di plastica sono campioni di basso, così che richiedono grandi volumi. Tuttavia, reti da posta derivanti non sono sempre pratici o sicuro nei fiumi con sedimento elevati carichi e grandi galleggianti o sommersi detriti. Inoltre, non è possibile utilizzare una rete a deriva quando tentando di accuratamente catturare e quantificare microplastic materiali, in particolare fibre,...

Plastica in primo luogo è stata osservata nell'oceano più presto 1930s1. Stime recenti della gamma di detriti marini di plastica da oltre 243.000 tonnellate metriche (MT) di plastica sulla superficie dell'oceano a MT 4,8-12,7 milioni di plastica entrando sull'oceano da terrestre fonti annualmente2,3. I primi studi su detriti marini plastica focalizzata sulla macroplastics (> 5 mm di diametro) come sono facilmente visibili e quantificabili. Tuttavia, recentemente è stato scoperto che rappresentano macroplastics < 10% dei detriti in plastica, dal conteggio, nell'oceano, che indica che la stragrande maggioranza dei detriti in plastica è microplastic (< 5 mm di diametro)2.
Microplastiche sono suddivise in due gruppi: microplastiche primario e secondario. Microplastiche primari sono costituiti da materie plastiche che sono fabbricate a un diametro < 5 mm e includono nurdles, crudo pellet usato per fare prodotti di consumo, microsfere usato come esfolianti in prodotti di cura personale (ad es., lavaggio del viso, scrub corpo, dentifricio in pasta) e abrasivi o lubrificanti nell'industria. Microplastiche secondari vengono creati all'interno dell'ambiente come detriti di plastica più grandi sono frammentato da fotolisi, abrasione e decomposizione microbica4,5. Fibre sintetiche sono anche microplastiche secondario e una preoccupazione crescente. Può rilasciare un singolo indumento > 1.900 fibre per lavare in lavatrice domestica6. Queste microfibre, come pure di microsfere da prodotti di cura personale, vengono lavati giù gli scoli e nel sistema fognario prima di entrare in impianti di trattamenti delle acque reflue. Murphy (2016) trovato che un impianto di trattamento delle acque reflue che serve una popolazione di 650.000 ridotto la concentrazione di microplastic di 98,4% da affluente di effluente, ancora 65 milioni microplastiche rimase in acque reflue e fanghi ogni giorno7. Anche con alte percentuali di microplastiche viene rimosso durante i processi di trattamento, milioni, forse miliardi, di microplastiche passano attraverso impianti di trattamento delle acque reflue al giorno e immettere acque superficiali degli effluenti6,8 ,9,10,11.
A causa del loro rilascio nell'ambiente, microplastiche sono stati trovati nei tessuti digestivi e respiratori di organismi marini attraverso tutti i livelli trofici12,13,14,15. Loro impatto dopo l'assorbimento è variabile, con alcuni studi danno non osservazione, mentre altri dimostrano numerosi effetti quali fisica e chimica del tessuto danno4,6,14,15. A causa di queste scoperte, l'interesse in questo campo è aumentato negli ultimi cinque decenni. Tuttavia, solo recentemente hanno cominciati a quantificare i detriti in plastica, particolarmente microplastiche, nei sistemi d'acqua dolce, come fiumi e laghi, o valutare l'effetto sugli organismi che abitano in questi habitat12,16, studi 17,18. I fiumi sono una fonte importante di plastica detriti trovati nell'oceano come ricevono scarichi di acque reflue e il deflusso di acque superficiali che contengono microplastiche e macroplastics.
Il protocollo dettagliato qui può essere utilizzato per raccogliere campioni di microplastic dove le reti da posta derivanti non sono realizzabili; in particolare, negli ambienti acquatici con alte concentrazioni di sedimenti sospesi e grandi detriti come il fiume Mississippi galleggianti. Lo spartiacque del fiume del Mississippi è uno dei più grandi del mondo ed ha una popolazione di > 90 milioni di persone, probabilmente rendendola una delle maggiori fonti di detriti in plastica per l'oceano19,20. Ogni anno, il fiume del Mississippi gli scarichi una media di 735 km3 di acqua dolce nel Golfo del Messico, insieme con alte concentrazioni di sedimenti sospesi (~ 60 a > 800 mg/L) e grandi detriti13,21. Sono stati raccolti campioni di acqua a due profondità (cioè, superficie e profondità di 0,6) in varie località lungo il fiume Mississippi e i suoi affluenti in contenitori di polietilene a bassa densità (PE) 1L traslucido utilizzando una pompa peristaltica. In laboratorio, i campioni sono stati filtrati utilizzando nylon mesh setacci e filtri a membrana estere mista cellulosa simultaneamente con un cilindro di cloruro di polivinile (PVC) su misura 63,5 mm (2,5 pollici) con giunti di Unione per inserire i filtri e setacci22. L'inclusione delle unioni di PVC nel dispositivo di filtrazione permette per la filtrazione di come tante o poche classi di dimensione delle particelle come desiderato. Inoltre, può essere utilizzato per catturare microplastic detriti fino a dimensioni inferiori al micron utilizzando filtri a membrana quando si studia fibre sintetiche. Una volta filtrato, i campioni sono stati essiccati e materie plastiche sospette sono state identificate e ordinate dalla maglia setacci e filtri a membrana sotto un microscopio stereoscopico. Materie plastiche sospetta quindi sono state esaminate usando micro-attenuato di riflettanza totale spettroscopia infrarossa trasformata di Fourier (micro ATR-FTIR) per eliminare i materiali non sintetici o per determinare il tipo di polimero. Considerando le dimensioni di microplastic polveri e fibre, la contaminazione è all'ordine del giorno. Fonti di contaminazione includono la deposizione atmosferica, abbigliamento, attrezzature di laboratorio e di campo, come pure deionizzata (DI) fonti d'acqua. Più passaggi sono incluse in tutto il protocollo per ridurre la contaminazione da varie fonti durante lo svolgimento di tutte le fasi dello studio.

<table><tbody><tr><td>Contenitori Cubitainer da 1 litro in polietilene a bassa densità</td><td>VWR</td><td>89094-140</td><td>Contenitori utilizzati per raccogliere e conservare i campioni.</td></tr><tr><td>2-1/2" Clear Schedule 40 Tubo in PVC rigido</td><td>United States Plastic Corporation</td><td>34138</td><td>Il tubo in PVC utilizzato per realizzare il dispositivo viene fornito come un tubo da 2,43 m. Il tubo è stato quindi tagliato alle lunghezze desiderate per ogni sezione separata da giunti di unione. Le lunghezze delle sezioni sono state decise prevedendo che le dimensioni dei pori più piccole avrebbero intasato il dispositivo più rapidamente. Sezioni più lunghe sono state posizionate sopra le dimensioni dei pori più piccole per raccogliere e trattenere l'acqua per evitare di dover smontare il dispositivo per cambiare un filtro mentre un campione rimaneva nel dispositivo. Per un dispositivo di filtrazione sono necessari un pezzo da 18 pollici, uno da 12 pollici e due da 6 pollici.</td></tr><tr><td>2-1/2" PVC SCH 40 Presa di raccordo&nbsp;</td>I giunti di unione <td>della Supply House</td><td>457-025</td><td>sono stati incollati su un tubo in PVC per alloggiare setacci in nylon e membrane in cellulosa mista.</td></tr><tr><td>Foglio di rete intrecciata in nylon 6, bianco sporco opaco, larghezza 12", lunghezza 12", dimensione della maglia 500 micron, area aperta 38% (confezione da 5)</td><td>Piccole parti tramite Amazon</td><td>CMN-0500-C/5PK-05</td><td>I fogli di rete sono stati tagliati in cerchi per corrispondere al diametro del diametro esterno del tubo in PVC. I bordi sono stati incollati per garantire che non si verificassero sfilacciamenti. Il diametro della colla non deve estendersi nel diametro interno del PVC in modo che non venga influenzato durante la filtrazione.</td></tr><tr><td>Foglio di rete tessuta in nylon 6, bianco opaco, larghezza 12", lunghezza 12", dimensione della maglia 100 micron, area aperta del 44% (confezione da 5)</td><td>Piccole parti tramite Amazon</td><td>B0043D1TB4</td><td>I fogli di rete sono stati tagliati in cerchi per corrispondere al diametro esterno del tubo in PVC. I bordi sono stati incollati per garantire che non si verificassero sfilacciamenti. Il diametro della colla non deve estendersi nel diametro interno del PVC in modo che non venga influenzato durante la filtrazione.</td></tr><tr><td>Foglio di rete tessuta in nylon 6, bianco opaco, larghezza 12", lunghezza 12", dimensione della maglia 50 micron, area aperta del 37% (confezione da 5)</td><td>Piccole parti tramite Amazon</td><td>B0043D1SGA</td><td>I fogli di rete sono stati tagliati in cerchi per corrispondere al diametro esterno del tubo in PVC. I bordi sono stati incollati per garantire che non si verificassero sfilacciamenti. Il diametro della colla non deve estendersi nel diametro interno del PVC in modo che non venga influenzato durante la filtrazione.</td></tr><tr><td>Membrana mista in estere di cellulosa, 0,45 um, 142 mm, 25/pz</td><td>VWR</td><td>10034-914</td> Come <td>ultimo filtro è stato utilizzato un filtro a membrana in cellulosa mista con 0,45 um. Un grande diametro è stato utilizzato per consentire al filtro di essere piegato in un cono per aumentare la superficie del filtro e prevenire l'intasamento.</td></tr><tr><td>Cestello in rete metallica Foglie di tè Filtro per teiera 76 mm di diametro 3 pezzi</td><td>Uxcell via Amazon</td><td>a15071600ux0260</td><td>Il cestello in rete forniva un supporto extra per il filtro a membrana per evitare strappi quando la pressione veniva applicata da una pompa a vuoto.</td></tr><tr>1<td>/2" PVC Inserto spinato maschio Adattatore</td> Casa <td>di alimentazione</td><td>1436-005</td><td>È stato aggiunto un adattatore per vuoto per consentire la filtrazione sotto vuoto in caso di filtrazione lenta a causa dell'elevata concentrazione di sedimenti.</td></tr><tr><td>1/2 pollice O.D. x 3/8 pollici I.D. x 10 piedi Tubo in vinile trasparente in PVC</td> Home <td>Depot</td><td>702229</td><td>Tubo utilizzato per collegare la pompa del vuoto al dispositivo di filtraggio.</td></tr><tr><td>Strumento multiparametrico YSI Professional Plus con cavo Quatro</td><td>YSI</td><td>6050000</td><td>Misuratore portatile utilizzato per misurare parametri aggiuntivi della qualità dell'acqua (ad es. torbidità, temperatura, conducibilità, pH e ossigeno disciolto (DO)).</td></tr><tr><td>Torbidimetro portatile 2100P</td><td>Hach</td><td>4650000</td><td>Misuratore portatile utilizzato per misurare la torbidità.</td></tr><tr><td>Tubi in PE rivestiti in FEP</td><td>Geotech</td><td>87050529</td><td>Tubing utilizzato con pompa perestaltica per la raccolta di campioni d'acqua dalle profondità desiderate.</td></tr><tr><td>Pompa peristaltica Geopump Serie II</td><td>Geotech</td><td>91350123</td><td>Pompa utilizzata per la raccolta di campioni d'acqua.</td></tr><tr><td>Il microscopio MeiJi Techno EMZ-8TR</td><td>Microscope.com</td> il microscopio <td>EMZ8TR-PLS2</td><td>utilizzati analizzano setacci a rete e filtri a membrana per eliminare microplastiche sospette.</td></tr><tr><td>Spettrometro Nicolet iS10 FTIR</td><td>Thermo Electron North America</td><td>912A0607</td><td>FTIR utilizzato per analizzare le microplastiche sospette.</td></tr><tr><td>Microscopio FTIR Nicolet iN5</td><td>Thermo Electron North America</td><td>912A0895</td><td>Microscopio FTIR utilizzato per analizzare microplastiche sospette.</td></tr><tr><td>Germanio (Ge) ATR</td><td>Thermo Electron North America</td><td>869-174400</td><td>Geranio Accessorio ATR utilizzato insieme al microscopio Nicolet iN5 FTIR per analizzare la microplastica sospetta.</td></tr><tr><td>Supporti in alluminio EZ-Spot Micro (confezione da 5)</td><td>Thermo Electron North America</td><td>0042-545</td><td>Vetrini per microscopio utilizzati insieme al microscopio Nicolet iN5 FTIR per analizzare microplastiche sospette.</td></tr><tr><td>Vetrini per campioni in vetro rivestito di alluminio</td><td>Thermo Electron North America</td><td>0042-544</td><td>Vetrini per microscopio utilizzati insieme al microscopio Nicolet iN5 FTIR per analizzare microplastiche sospette.</td></tr></tbody></table>

campionamento, ordinamento e caratterizzando microplastiche negli ambienti acquatici con carichi di materiale solido in sospensione alta e grandi detriti galleggianti

Sampling, Sorting, and Characterizing Microplastics in Aquatic Environments with High Suspended Sediment Loads and Large Floating Debris

La presenza ubiquitaria di detriti di plastica nell'oceano è ampiamente riconosciuta dalla comunità scientifica, pubbliche e agenzie governative. Tuttavia, solo recentemente microplastiche nei sistemi d'acqua dolce, come fiumi e laghi, stato quantificato. Campionamento di Microplastic alla superficie solitamente consiste di distribuzione di reti da posta dietro neanche una barca fissa o in movimento, che limita il campionamento per ambienti con bassi livelli di sospese sedimenti e detriti galleggianti o sommersi. Gli studi precedenti che impiegate reti da posta derivanti per raccogliere microplastic detriti in genere utilizzato reti con ≥ 300 µm maglia, permettendo di detriti in plastica (particelle e fibre) sotto questa dimensione per passare attraverso la rete e quantificazione di eludere. Il protocollo dettagliato qui consente: 1) campionario in ambienti con alta sospesi carichi e galleggianti o sommerse detriti, 2) la cattura e la quantificazione di fibre e particelle microplastic < 300 µm. campioni di acqua sono stati raccolti utilizzando un pompa peristaltica in contenitori di polietilene a bassa densità (PE) per essere archiviati prima di filtraggio e di analisi in laboratorio. Filtrazione è stato fatto con un dispositivo di filtrazione microplastic su misura contenenti staccabili giunti di Unione che ospitava in nylon mesh setacci e misto cellulosa filtri a membrana estere. Maglia setacci e filtri a membrana sono stati esaminati con un microscopio stereoscopico a quantificare e separare le fibre e le particelle in microplastic. Questi materiali sono stati poi esaminati usando una riflettanza totale attenuata micro Fourier transform infrared spectrometer (micro ATR-FTIR) per determinare il tipo di polimero di microplastic. Recupero è stata misurata da chiodare campioni usando blu PE polveri e fibre di nylon verde; recupero percentuale è stata determinata per essere 100% per il particolato e 92% per le fibre. Questo protocollo guiderà studi simili su microplastiche nei fiumi ad alta velocità con alte concentrazioni di sedimento. Con semplici modifiche alla pompa peristaltica e dispositivo di filtrazione, gli utenti possono raccogliere e analizzare i vari volumi di campione e dimensioni del particolato.

Per convalidare i tassi di recupero del presente protocollo, tre campioni (V1V -3) dalla baia di Oso, Corpus Christi, Texas (adiacente il Texas A &amp; M University Campus di Corpus Christi), sono stati addizionati con particolati PE 10 blu (che vanno da 50-100 µm in diametro) e 50 fibre di nylon verde di varie lunghezze (Figura 3). TSS del campione è stata calcolata (sezione 2) e quindi i campioni sono stati filtrati utilizzando i metod...

Maggior parte della ricerca microplastic fino ad oggi si è verificato nei sistemi marini dove sono relativamente bassi livelli di solidi sospesi. Attenzione si sta ora spostando ai sistemi d'acqua dolce, che possono caratterizzato da carichi di alta sedimenti e detriti galleggianti. Questo protocollo risolve raccogliendo ed analizzando campioni di microplastic provenienti dagli ambienti acquatici che contengono carichi elevati di solidi sospesi.

Campionamento, ordinamento e caratterizzando microplastiche negli ambienti acquatici con carichi di materiale solido in sospensione alta e grandi detriti galleggianti

The ubiquitous presence of plastic debris in the ocean is widely recognized by the public, scientific communities, and government agencies. However, only ...

Questo metodo aiuterà i ricercatori a quantificare i carichi di microplastica nei fiumi, che spesso contengono elevati carichi di sedimenti, poiché sono una delle principali fonti di detriti di plastica nell'oceano. Il vantaggio principale di questa tecnica è che consente il filtraggio e lo smistamento di microplastiche e campioni d'acqua con elevati carichi di sedimenti a dimensioni non tipicamente incluse in studi precedenti. Per iniziare, sciacquare tre volte il dispositivo di filtrazione e i setacci a rete di nylon con acqua deionizzata.Quindi posizionare i setacci a rete in ciascun giunto di unione, con le dimensioni della colata che diminuiscono dall'alto verso il basso. Per evitare perdite, sigillare ermeticamente ogni giunto. Successivamente bagnare un filtro a membrana a base di estere di cellulosa misto con acqua deionizzata.Mentre il filtro è ancora umido, piegarlo in un cono. Quindi posizionare un cestello in rete di acciaio inossidabile nell'ultimo giunto di unione. Posizionare con cura il filtro a membrana piegato nel cestello.Piegare il bordo del filtro sul bordo del giunto. Quindi posizionare un setaccio a rete sopra il filtro a membrana nell'ultimo giunto di unione

sampling-sorting-characterizing-microplastics-aquatic-environments

Research

Ricerca

JoVE Journal

Environment

Ambiente

Il protocollo seguente descrive la metodologia per: microplastiche campionamento sulla superficie del mare, la separazione di identificazione microplastic e chimica delle particelle. Questo protocollo è in linea con le raccomandazioni per il monitoraggio microplastiche pubblicati dal sottogruppo tecnico MSFD su rifiuti marini.

Protocollo per microplastiche campionamento sulla superficie del mare e Analisi dei campioni

Le microplastiche agiscono come vettori di contaminanti organici potenzialmente tossici con effetti imprevedibili. Questo protocollo descrive una metodologia alternativa per valutare i livelli di pesticidi organocloruri adsorbiti sui pellet di plastica e identificare la struttura chimica del polimero. Il fuoco è sulla estrazione del fluido pressurizzato e la riflessione totale attenuata che Fourier trasforma la spettroscopia a infrarossi.

Estrazione di pesticidi di organochlorato da pellicole di plastica e analisi di tipo plastico

Plancton e particelle in sospensione giocano un ruolo importante nei cicli biogeochimici nell'oceano. Qui, forniamo un metodo ultra-pulito, basso sforzo per la raccolta di varie dimensioni delle particelle e plancton in mare con la capacità di gestire grandi volumi di acqua di mare.

Un apparato multistrato ultra-pulito per la raccolta di plancton marino dimensioni frazionato e particelle in sospensione

Citometria a flusso in combinazione con il clustering visual offre un facile da usare e veloce metodo per lo studio di biofilm acquatici. Può essere utilizzato per la caratterizzazione di biofilm, rilevamento delle modifiche nella struttura della comunità di biofilm e la rilevazione delle particelle abiotiche incorporato nel biofilm.

Caratterizzazione di biofilm acquatici con citometria a flusso

Gli embrioni/larve zebrafish si sviluppano esternamente e sono otticamente trasparenti. Il bioaccumulo delle microplastiche nei pesci nelle prime fasi della vita viene facilmente valutato con microperline etichettate fluorescentmente.

Accumulo e distribuzione di microplastiche fluorescenti nelle prime fasi della vita di Zebrafish

Qui viene presentato un metodo per estrarre le microplastiche dal suolo e identificare i loro tipi di polimeri. Il metodo è stato ottimizzato per l'esecuzione, l'applicabilità e l'economicità. Getta le basi scientifiche per standardizzare il metodo analitico per identificare le microplastiche nei suoli.

Separazione e identificazione di microplastiche convenzionali dai terreni agricoli

Qui forniamo una descrizione dettagliata del campionamento delle acque sotterranee da un pozzo per l'analisi delle microplastiche utilizzando un sistema di campionamento brevettato sviluppato a tale scopo. Il protocollo descrive in dettaglio i metodi per il campionamento delle microplastiche dai fori, nonché la separazione e l'identificazione chimica delle microplastiche.

Campionamento e identificazione di microplastiche nelle acque sotterranee

Viene presentato un protocollo per il sezionamento di carote di sedimenti e l'estrazione di acque interstiziali in condizioni anossiche al fine di consentire l'analisi di specie sensibili al redox sia nei solidi che nei fluidi.

Sedimenti Nucleo sezionamento ed estrazione di Pore acque sotto anossiche condizioni

Viene presentato un protocollo sulla caratterizzazione e l'applicazione di cinque diversi dispositivi di campionamento passivo.

Caratterizzazione e applicazione di passivi Campionatori per il monitoraggio dei pesticidi in acqua

Viene presentato un sistema di esposizione a flusso continuo robusto e flessibile progettato per mantenere i sedimenti in sospensione. Il sistema viene utilizzato per studiare gli effetti dei sedimenti sospesi su varie specie acquatiche e sulle fasi di vita in laboratorio.

Un sistema di esposizione di flusso-through per valutare sospeso Sedimenti Effetti sulla vita acquatica

Scopri un protocollo per campionare e caratterizzare microplastiche in ambienti acquatici con alti carichi di sedimenti. Questo metodo consente di quantificare i contaminanti nei fiumi con precisione.

Campionamento, ordinamento e caratterizzando microplastiche negli ambienti acquatici con carichi di materiale solido in sospensione alta e grandi detriti galleggianti (Video) | JoVE Journal

Campionamento, ordinamento e caratterizzando microplastiche negli ambienti acquatici con carichi di materiale solido in sospensione alta e grandi detriti galleggianti

Esplora altri video