RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
it_IT
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/61372-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Qui viene presentato un protocollo per aprire transitoriamente la barriera emato-encefalica (BBB) sia focalmente che attraverso un cervello di topo per fornire anticorpi marcati fluorescentemente e attivare la microglia. Viene inoltre presentato un metodo per rilevare la somministrazione di anticorpi e l'attivazione della microglia mediante istologia.
Solo una piccola frazione degli anticorpi terapeutici viene assorbita dal cervello. Utilizzando il nostro metodo, gli anticorpi vengono erogati nel cervello aprendo transitoriamente la barriera emato-encefalica. Questa tecnica ci consente di somministrare anticorpi nel cervello del topo in modo non invasivo.
Per eseguire il controllo di qualità delle microbolle utilizzando un contacapsule, rimuovere la soluzione di microbolle dall'amalgamatore e utilizzare un ago da 19 gauge per perforare il setto del flaconcino della soluzione di microbolle. Utilizzare una siringa da un millilitro dotata di ago calibro 19 per diluire 100 microlitri di microbolle in cinque millilitri di soluzione filtrata e pipettare 100 microlitri della soluzione diluita di microbolle in 10 millilitri di soluzione filtrata in una cuvetta. Bloccare la cuvetta in posizione sulla piattaforma del contatore di cellule e assicurarsi che venga utilizzata un'apertura di 30 micron per l'acquisizione del campione.
Nel software, caricare il metodo operativo standard e selezionare modifica metodo operativo standard e concentrazione. Immettere 5.000 volte per la diluizione e fare clic su applica e OK. Fai clic su modifica informazioni per selezionare un nome file adatto. Selezionare l'anteprima e verificare che la concentrazione del campione di microbolle sia inferiore al 10%Selezionare Avvia e OK per iniziare l'acquisizione del campione.
Dopo la misurazione, sciacquare l'apertura del contatore di celle con una soluzione di flusso filtrata. Sonicare la cuvetta di soluzione di microbolle diluita per 30 secondi a bagnomaria. Misurare la soluzione di microbolle sonicate come dimostrato e fare clic su modifica informazioni per etichettare i dati come vuoti.
Dopo aver misurato il grezzo, sottrarre la lettura finale dalla lettura iniziale per escludere eventuali particelle che non siano microbolle. Per etichettare le sezioni con anticorpi IgG fluorescenti anti-topo, etichettare un milligrammo di anticorpo IgG di topo con Alexa Flour 647 in tampone bicarbonato di sodio molare 0,1 molare secondo le istruzioni del produttore per 15 minuti a temperatura ambiente. Al termine dell'incubazione, caricare la soluzione di anticorpi marcata in fluorescenza su una colonna di centrifugazione e purificare l'anticorpo mediante centrifugazione.
Quindi utilizzare uno spettrofotometro per misurare la concentrazione proteica. Per configurare il sistema a ultrasuoni a scansione focalizzata, aggiungere uno spazio di cinque millimetri al bolo d'acqua per posizionare il fuoco a ultrasuoni nove millimetri sotto il fondo del bolo d'acqua. Riempire il bolo d'acqua con circa 300 millilitri di acqua deionizzata degassata e posizionare l'array anulare nel bolo d'acqua riempito.
Utilizzare uno specchio dentale per verificare che non ci siano bolle d'aria sulla superficie e avviare il software applicativo. Nel menu della forma d'onda, selezionare imposta il ciclo di lavoro della forma d'onda e impostare la frequenza di ripetizione dell'impulso su 10 Hertz, il ciclo di lavoro su 10%, la messa a fuoco su 80 millimetri, la frequenza centrale su un megahertz, l'ampiezza su 0,65 megapascal e l'indice meccanico su 0,65. Premere set per definire la forma d'onda e memorizzare la forma d'onda.
Dopo aver selezionato il piano di trattamento, aprire la scheda di scansione nella finestra del controller di movimento e immettere i valori di avvio, arresto e incremento per il movimento nella dimensione X e i valori di avvio, arresto e incremento per il movimento nella direzione Y. Per definire le azioni per i siti di trattamento, fare clic su evento e aprire la finestra di modifica dello script. Selezionare un elenco di azioni che verranno eseguite nell'ordine selezionato in ciascun sito di trattamento e impostare il tipo di movimento su griglia raster.
Nella scheda eventi, seleziona aggiungi azioni e sposta lo spostamento in modo sincrono, avvia il trigger ARB, attendi e arresta le azioni ARB nel pannello dello script. Quindi fare clic su Azione di attesa e selezionare un tempo di attesa di 6.000 millisecondi. Per preparare un animale per l'analisi, dopo aver confermato la mancanza di risposta al pizzicamento delle dita dei piedi in un topo anestetizzato, utilizzare un pennarello indelebile per etichettare il centro della testa, quindi incollare l'involucro di plastica sul fondo di una piccola pesa con il fondo tagliato e riempire la pesa con gel per ultrasuoni.
Per il trattamento a ultrasuoni focalizzati, capovolgere la fiala di microbolle e caricare delicatamente un microlitro di soluzione per grammo di peso corporeo del topo in una siringa da insulina calibro 29. Aggiungere 100 microlitri di anticorpo marcato in fluorescenza alla siringa e capovolgere delicatamente e far rotolare la siringa tra il pollice e l'indice per mescolare l'anticorpo e le microbolle all'interno della siringa. Iniettare con cautela e lentamente per via retro-orbitale 150 microlitri di microbolla e soluzione anticorpale nel topo e impostare un timer per due minuti.
Applicare un unguento oftalmico, quindi posizionare il mouse nel supporto per la testa e fissare il naso nel supporto. Posizionare la piccola barca di pesatura riempita di gel per ultrasuoni sopra la testa e abbassare il bolo dell'acqua finché non si trova sopra il gel per ultrasuoni all'interno della barca di pesatura. Quindi utilizzare il joystick per allineare visivamente la messa a fuoco del trasduttore all'interno del centro della testa.
Quando il timer si spegne, nella scheda movimento del software, selezionare Ripristina origine e selezionare una scansione completa. Al termine del trattamento, applicare un unguento oftalmico sugli occhi dell'animale e posizionare il topo in una camera di recupero riscaldata. Qui vengono mostrati i risultati rappresentativi delle misurazioni del contatore di coltura delle dimensioni e della concentrazione che possono essere ottenute quando le microbolle vengono prodotte correttamente.
L'assorbimento degli anticorpi da parte del cervello può essere facilmente visualizzato nell'intero cervello o nelle sezioni di tessuto utilizzando uno scanner a infrarossi o una microscopia a fluorescenza delle sezioni. Come dimostrato in queste immagini, la colorazione rappresentativa per i marcatori della microglia può essere utilizzata per determinare se le microglia diventano più fagocitiche dopo la somministrazione dell'anticorpo. È importante garantire il benessere e la sicurezza degli animali, soprattutto quando si eseguono le iniezioni retro-orbitali e si applica il trasduttore sopra le teste dei topi.
Questo metodo consente l'applicazione di vari modelli di scansione per colpire diverse regioni del cervello, come l'ippocampo, la corteccia o i singoli emisferi cerebrali. Questa tecnica può essere utilizzata per sviluppare nuove terapie e farmaci che penetrano la barriera emato-encefalica e per studiare il meccanismo di formazione e apertura della barriera emato-encefalica.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
07:42
Related Videos
18.3K Views
01:28
Related Videos
123 Views
04:40
Related Videos
3.1K Views
02:58
Related Videos
605 Views
02:51
Related Videos
480 Views
08:22
Related Videos
8.9K Views
08:58
Related Videos
4.9K Views
08:02
Related Videos
5.2K Views
08:37
Related Videos
4.1K Views
06:29
Related Videos
4.7K Views