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方法論記事

肝転移の前臨床マウスモデル

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DOI:

10.3791/51677

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2014年9月27日

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この記事について

サマリー

肝転移の前臨床マウスモデルは、半脾臓注入技術を介して行う。

要約

多数のマウスモデルは、ヒト癌を研究し、癌治療及び開発の理解を進めるために開発されてきた。ここで、同系マウスの膵臓腫瘍細胞の半脾臓注射を介して、肝転移の前臨床マウス膵臓腫瘍モデルについて説明する。このモデルは、肝臓への転移性疾患を有する患者における臨床症状の多くを模倣。マウスは、一貫して転移過程、実験的治療試験、および腫瘍免疫学研究の調査を可能に肝臓への転移を開発しています。

概要

膵管腺癌(PDA)は、米国1における癌関連死の第四の主要な原因である。転移性PDAと患者のための5年生存率2-12%1です。膵臓癌のアジュバントおよびネオアジュバント化学療法はこれまで以上に、今日より効果的であるが、まだ新しい治療法のための絶望的な必要性が残っている。

新規治療薬の開発は、信頼性の前臨床動物モデルを必要とする。皮下腫瘍モデルを使用して簡単ですが、その欠点は、ヒトの癌で見られる腫瘍の進行および微小環境を転移し、模倣するこれらの腫瘍のできないことがあります。そのようなKrasのとp53ノックイン発癌性変異(KPCモデル)2とYFP系統トレーサー(PKCYモデル)とKPCモデルを含む遺伝子操作されたマウスなどの遺伝子操作されたモデルは、3 immunocompeteにおける自然発生腫瘍の研究を可能にntのマウス。加えて、腫瘍微小環境は変更され、より厳密にヒト腫瘍進行に見られるものに似ている。残念ながら、腫瘍発生のタイミングが困難実験的治療を研究することができ、これらのモデル内の変数である。さらに、これらのマウスの戻し交配は、常に実行可能ではない時間と財務コミットメントのかなりの量を必要とする。最後に、注入された異種移植のPDAマウスモデルは変更した免疫不全マウス、または存在しない腫瘍微小環境を必要とする。その結果、これらの前臨床モデルにおいて実証実験的治療の有効性は、多くの場合、ヒト臨床試験4において再現性がない。

このhemisplenectomyマウスモデルは、C57BL / 6マウス5、6から誘導される高度に腫瘍形成、メチルコラントレン誘発性膵臓腫瘍細胞株であるPanc02腫瘍細胞を利用する。さらに、他のネズミPDA細胞株は、KPCマイクから誘導eは、このモデルで使用することができる。 Schulick らは以前にhemisplenectomy技術を開発し、大腸癌転移7の同系マウスモデルを作成しました。このhemisplenectomyモデル( 図1)は、新規の治療薬7-10の研究に自分自身を貸す免疫応答性マウスにおいて、一貫して同じ腫瘍接種を提供しています。

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プロトコル

全ての動物実験は、ジョンズ·ホプキンス大学の動物実験委員会のガイドラインに適合し、動物を研究室のケアの評価と認定協会(AAALAC)のガイドラインに従って維持した。外科的処置は、毎時15空気交換の最小値を受け、手術室で、無菌条件下で行われる。すべての商品は、手順の間に、各マウスの間に70%エタノールで前の手順で、もう一度オートクレーブで滅菌されています。外科手術を生き残るために期待されていない全てのマウスは、麻酔下で、依然としてながら頸椎脱臼に続いて3分間、CO 2の下で安楽死させる。

1。細胞調製

  1. 2×10 7細胞/ mlで、リン酸緩衝生理食塩水で培養されたPanc02細胞を再懸濁し、そして氷上に保つ。

2マウスの準備

  1. ケタミンの管理腹腔内分割用量で8〜12週齢のC57BL / 6雌マウスへの電子(100mg / kgの)キシラジン(10mg / kg)を混合した。
  2. つま先ピンチ引っ込め反射がマウスが完全に麻酔をかけていることを確実にするために廃止されていることを確認してください。
  3. 完全にマウスを麻酔するために、必要に応じて(100mg / kgの)キシラジン(10mg / kgの)と混合ケタミンの追加の用量を投与する。
  4. マウスは麻酔下にある間、乾燥を防ぐために、マウスの眼にPuralube獣医軟膏を適用します。
  5. 創傷の汚染を回避するために、マウスの手術領域を剃る。
  6. 準備は、ヨウ素を70%エタノールで切開の肋骨下の領域を離れ、。
  7. 無菌性を維持するために腹部に外科用ドレープを配置します。

3開腹

  1. 経皮、メスを用いて腹膜を介して左耳に沿って、左肋骨下の切開を加えます。
  2. 同時デジタルPを適用することにより、切開部を通して脾臓エクスプレス切開の頭蓋および尾側の側面に沿って案内圧力スイッチ。
  3. 脾臓の下端で脾臓の血管の位置を確認します。
  4. 脾臓の極での脾臓の血管を損傷しないように注意しながら、脾臓の中心部に2ホライゾン中型結紮クリップを配置することによって、脾臓を割ります。
  5. 汚染を避けるために戻って腹膜に脾臓の上極を配置します。

4。腫瘍注射

  1. 26 Gのx 5/8 "注射器の中にリン酸緩衝生理食塩水を150μlを描画します。
  2. 注入時に常に直立位置に注射器を維持し、同じ注射器にPanc02100μlの(2×10 6)細胞を描画します。
  3. 70%エタノール溶液中に針を浸し。針は、無菌性を確保するために70%エタノールに浸漬する。
  4. 注射器が常に直立させていることを確認されて露出した半脾臓にゆっくりと細胞を注入する。 syrinのベベルGEは脾臓で細胞を注入することを避けるために、脾臓カプセルを通じて常に観察されるべきである。脾臓や血管のホワイトニングは、注入時に観察されるべきである。
  5. 脾臓を昇格し、脾臓の血管を閉塞するために、脾臓で1メディアホライゾンクリップを適用します。
  6. 膵臓と脾臓血管の最も遠位の側面に小さなホライゾンクリップを適用します。
  7. ホライゾン·クリップの上にカットして半脾臓から膵臓と脾臓血管を連結する。
  8. その '側にマウスを置き、蒸留水で切開を灌漑。

麻酔から5。腹部閉鎖およびリカバリ

  1. 4-0ランニングステッチで腹膜を閉じます。
  2. 皮膚切開を閉じるために二から三の皮膚クリップを適用します。
  3. 手術後の痛みを緩和するためには0.1mg / kgのブプレノルフィンまたは5〜10ミリグラム/ kgのカルプロフェンを皮下投与する。
  4. RECのための加熱パッド上でマウスを置きますオーヴェリーモバイルまで、とマウスは、通常の呼吸パターンを示しています。動物は、唯一の完全外科的手順から回復した後、他の動物の会社に戻ります。

6。剖検審査及び肝臓の収穫

  1. 手術後30〜60日の間、マウスは転移の臨床症状を示すように開始され、安楽死が必要になります。人道的な安楽死を必要とする転移性疾患の徴候は拡大された腹部および腹水の開発が含まれています。 CO 2の吸入によりマウスを安楽死させる。
  2. 吸入後、頸椎脱臼を行います。
  3. 動物は非反応性であることが決定された後、ハサミを使用して腹部を露出させるために腹膜を通って切開する。
  4. 鉗子やハサミを使用して、静かに腹部から肝臓を切った。
  5. OCT化合物中の肝臓および液体窒素を用いたフラッシュ凍結を配置します。 -80℃で肝臓に保管してください。代わりに、ライブrは、埋め込まれた24時間およびパラフィンをRTで16%中性緩衝ホルマリンで固定することができる。

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結果

半脾臓に注入Panc02腫瘍細胞技術が正しく行われた場合、肺および腹膜転移が観察されない一方( 図1)マウスの100%においてフォームの肝臓転移、。この技術は、複数の独立した実験においてPanc02細胞を使用して100以上のマウスに対して行われており、再現性、すべての未処置のマウスはhemisplenectomy手順( 図2)以下の30と60日の間の肝転移で死亡する。未処理および処理群の間の統計的有意性を得るためには、グループ当たり10匹のマウスが必要とされている。しかし、この数は、使用される細胞株および治療方式に関して変化するであろう。 Panc02細胞は、このモデルで使用される場合、複数の肝転移は剖検( 図3)上に観察することができる。

組織特異的Krasのおよびp53有するトランスジェニックマウス由来の同系膵臓腫瘍細胞株であるKPC腫瘍細胞、ノックイン変異は図11に示すように、このモデルで使用することができる。類似した肝転移におけるこれらの細胞の結果を使...

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ディスカッション

半脾臓注入技術を経由して肝臓への膵臓癌転移のこの前臨床マウスモデルでは、肝臓への転移性疾患を有する患者の臨床的および免疫学的条件の多くを反映して説明した最初のモデルである。このモデルは、他のマウスモデルに比べていくつかの利点を提供しています。まず、膵臓癌のトランスジェニックモデルとは異なり、マウスのわずか30%が肝臓に転移を発症したおよび転移形成のタイミングは非常に可変であり、このモデルはαで100%のマウスにおいて一貫して肝臓に転移し得るという利点を提供均一な時間は、この設定に転移性疾患を研究するために研究者を可能にする。さらに、このモデルでは、再現可能なモデルでは、末梢血免疫分析を可能にする素朴な半脾臓を保持します。さらに、抗新生物療法の非存在下で、マウスは、最初の腫瘍負荷に応じて一貫性のある時点で腫瘍の進行により死亡し、生存率が一貫している一つの実験から次へ。最後に、このモデルは、肝転移13、腫瘍免疫学10、及び実験的治療試験9の研究などのさまざまなアプリケーションを有している。

この技術の重要なステップは、細...

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開示事項

著者らは、開示することは利害の関係する競合はありません。

謝辞

KFとKOはKSと一緒に共同最初の著者である

この作品は、ジョンズホプキンス医学部臨床科学者賞(LZ)、Viragh財団とジョンズ·ホプキンス大学をスキップViragh膵臓がんセンターは(EMJ、NIH K23 CA148964-01(LZ)、AHPBAフェローシップ(KS)によって部分的にサポートされていましたし、 LZ)、国立膵臓財団(LZ)、Lefkofskyファミリー財団(LZ)、胃腸癌のP50のCA062924(EMJ、LZ)、ラストガーテン財団(LZ)、およびソルゴールドマン膵臓がんセンター助成金のNCI SPORE(KS 、BHE、LZ)。

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材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
細胞培養培地と成分は細胞株によって異なります
リン酸緩衝生理食塩水ライフテクノロジーズ社 ギブコ10010-023
15ml遠心チューブコーニング430052
湾曲手術用ハサミロボズサージカルストアRS-6835
解剖 グレーフ鉗子ロボズサージカルストアRS-5130
ニードルホルダー (レギュラー)World Precision Instruments, Inc
3-0 または 4-0 縫合提供:外科部門、ジョンズ・ホプキンス
ウェック ホライゾン オープン ライゲーティング クリップ アプライヤー、小型、角度付きテレフレックス137085
ウェック ホライゾン オープン ライゲーティング クリップ アプライヤー、ミディアム、アングルテレフレックス237115
Weck Horizon 中型結紮クリップTeleflex002200
Weck Horizon 小型結紮クリップTeleflex001200
シリンジ、1 cc、TB シリンジ、3/8" スリップチップBecton Dickinson309625
シリンジ、1 cc、TB シリンジ、5/8" スリップチップBecton Dickinson309597
9 mm オートクリップ アプライヤーMikron427630
9 mm オートクリップベクトン ディキンソン427631
加熱パッドサンビームCAT93
70% エタノール多数のベンダーが販売
タミン塩酸塩 ホスピーラ22395DD
キシラジン塩酸塩シグマX1251
社 マイクロ糸 ケ

参考文献

  1. American Cancer Society. Cancer Facts & Figures. , American Cancer Society. Atlanta. (2013).
  2. Clark, C. E., Beatty, G. L., Vonderheide, R. H. Immunosurveillance of pancreatic adenocarcinoma: insights from genetically engineered mouse models of cancer. Cancer letters. 279, 1-7 (2009).
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