2010年12月7日
我々は、細胞分裂の2つの連続ラウンドを定量化するために、成体マウスの組織へのチミジン類似体(CldUとIDU)のシーケンシャル取り込みを検出するための戦略を導出している。この戦略は、細胞の寿命の長い組織の売上高は、発癌性形質転換、またはトランジット増幅細胞を検出するのに便利です。
こんにちは。Calor D-U-I-D-U染色プロトコルへようこそ。本日のビデオでは、ステップ3の再水和、透過処理、および抗原賦活化から開始します。まず、スライドをキャリアにセットしてください。
スライドをセットしたら、キシレン浴に5分間浸します。続いて、2回目のキシレン浴に再度5分間浸します。
100%エタノール溶液から始めて50%溶液で終えるように、スライドを順次移動させて再水和を続けます。次に、細胞膜を透過させるため、スライドを1×PBSに5分間浸し、再水和を完了させます。スライドを0.2% Triton X溶液に5分間浸します。マイクロ波を用いた組織抗原賦活化の準備として、スライドをガラスビーカーに入れ、溶液がスライドの上端から5 cm上まで浸かる十分な量の0.01 M クエン酸ナトリウム緩衝液を加えます。
蒸発による損失を考慮し、溶液が沸騰するまでスライドを電子レンジで加熱します。フルパワーで約3〜10分かかります。スライドが沸騰していることを確認してください。
電子レンジの出力を10~80%に下げ、さらに20分間、スライドをゆっくりと沸騰させ続けます。沸騰後、スライドの入ったビーカーをベンチトップに置き、室温になるまで約2時間かけてゆっくりと冷却させます。スライドが室温に達していることを確認してください。
スライドを1.5 Nの塩酸に浸し、室温で40分間処理します。塩酸からスライドを取り出し、1 x PBSで5分間洗浄します。続いて、2回目の1 x PBS洗浄を行います。
液体ブロッキングワックスペンを使用して、1×PBSアクセス溶液からスライドを取り出します。各組織切片を円で囲み、スライドを再びPBSに戻します。気密容器の底に濡れたペーパータオルを敷いて、加湿インキュベーションチャンバーを作成します。
1x PBSで希釈した10%ブロッキング血清のブロッキング溶液を調製します。典型的には1×1.5 cm程度の組織切片において、各切片全体を溶液で完全に覆うことが重要です。ブロッキング溶液は50 µLの量で十分です。
マウス抗BRDU抗血清を5% donkey serumで希釈し、一次IDU抗体を調製します。希釈倍率は1:250とします。この一次溶液を各スライド切片にピペッティングして添加します。
スライドを4°Cの冷蔵庫に入れます。一晩インキュベーションする場合は、高ストリンジェンシー洗浄液を準備してください。TBSTが適しています。
スライドを互い背中合わせに配置します。スライドを約35〜40 millilitersのTBST溶液に入れます。チューブを37 degrees Celsiusに設定した振盪式細菌培養インキュベーターに入れます。
225 RPMで20分間振とうさせます。次に、スライドをキャリアにセットします。スライドをXPBSに入れ、PBSで5分間洗浄します。
続いて、XPBSで2回目の洗浄を5分間行います。ラット抗BRDU抗体を5% donkey serumで希釈し、一次CLDU抗体溶液を調製します。濃度1:250で添加し、スライドをペーパータオルの上に置き、ワックスペンで再描画します。
ピペットを用いて、各組織切片に一次CLDU溶液を滴下し、全体を覆います。すべての組織切片が完全に覆われるよう、溶液を約50 microliters使用してください。スライドを4 °Cの冷蔵庫に入れ、一晩インキュベートします。
スライドをキャリアに入れ、1×PBSで5分間洗浄します。次に、別の1×PBSに移し、さらに5分間洗浄します。CY2 donkey anti-RADおよびPS5 donkey anti-mouse抗体を5%ドンキー血清で希釈し、二次抗体を用意します。核染色はDAPIを用いて行います。組織切片全体を二次抗体で完全に覆ってください。
組織を完全に覆うには、50 µL の溶液で十分なはずです。再水和チャンバーを室温の暗所に置き、1 時間インキュベートします。スライドをキャリアに入れ、XPBS で 5 分間 1 回洗浄します。
スライドを2回目の1×PBS洗浄液に5分間浸します。ペーパータオルで余分なPBS溶液を吸い取ります。次に、Prolong Gold 抗退色封入剤を取り、各組織切片の上に少量ずつ滴下します。
カバーガラスを取り、スライド切片の上にそっと置きます。ペーパータオルをプレスとして使用し、スライド切片とカバーガラスの間に閉じ込められた余分な気泡を押し出します。最後に、ピペットチップを使用して、残っている余分な気泡を押し出します。結果を定量化するため、高エネルギー光源と複数の蛍光チャンネルを備えた蛍光顕微鏡を用いて、目的の組織の画像を撮影してください。
まず、Dabi陽性細胞の数をカウントします。次に、SI 2チャンネル画像を用いてCLDU陽性細胞の数をカウントします。最後に、SCI 5チャンネル画像を用いてIDU陽性細胞の数をカウントします。
最後に、SCI twoチャンネルとSCI fiveチャンネルの画像ファイルを交互に切り替えて、ダブルポジティブに標識された細胞をカウントします。
本記事では、成マウス組織におけるチミジンアナログ(CldUおよびIdU)の逐次的な取り込みを検出する方法を提示します。これにより、2回の連続した細胞分裂の定量が可能になります。この手法は、長寿命組織における細胞回転、腫瘍形成能による形質転換、および一過性増殖細胞の研究において有用です。
連続的な細胞分裂を正確に定量化することで、疾患に関連する系における増殖ダイナミクスが明確になり、ターゲットバリデーションにおけるメカニズム的なリスク低減が可能になります。このアプローチは、一過性の増殖反応と持続的な増殖反応を区別することで、前臨床モデルにおける予測の信頼性を高め、リード化合物の同定やポートフォリオの選別(トリアージ)に寄与します。また、本手法を長寿命組織に適用することで、腫瘍学や再生医療におけるトランスレーショナルなバイオマーカーの探索が促進されます。
この手法は、ターゲットのバリデーションからリード化合物の同定、そして前臨床有効性評価に至る創薬の連続的なプロセスに組み込むことができ、各段階におけるgo/no-go判断を裏付ける増殖指標を提供します。