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基本的な線虫Caenorhabditis elegans方法:同期との観測
基本的な線虫Caenorhabditis elegans方法:同期との観測
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JoVE Journal Biology
Basic Caenorhabditis elegans Methods: Synchronization and Observation

基本的な線虫Caenorhabditis elegans方法:同期との観測

Full Text
49,135 Views
11:34 min
June 10, 2012

DOI: 10.3791/4019-v

Montserrat Porta-de-la-Riva1,2, Laura Fontrodona1, Alberto Villanueva1,2, Julián Cerón1,2

1Department of Cancer and Human Molecular Genetics,Bellvitge Institute for Biomedical Research, 2C. elegans Core Facility,Bellvitge Institute for Biomedical Research

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

線虫を維持し、伝播の容易さ

このビデオでは、最初のレベルの段階でCエレガンスを同期する方法を紹介します。これは簡単な方法ですが、非常に一般的な方法なので、非常に便利です。あなたはまだ初心者です。

C言語の専門家であれば、このプロトコルを最適化するためのヒントがここにあるかもしれません。ワームの同期の基礎は、アルカリ性次亜塩素酸塩溶液ウサギの成虫に対するクレンと胚の相対的な抵抗性に依存しています。内部に多くの胚を持つこれらの成虫は、次亜塩素酸塩溶液でインキュベートされ、殺されて胚だけが残るようにします。

同期の2番目の部分は、食物の不足によって達成されるため、胚は異なる時間に捕まる場合でも、Lの胚よりも遠くまで成長することはありません。ブリッツプロトコルを開始するための最初のステップは、卵が横たわっている段階でワームを配置し、そこにいくつかの卵がプレートに散らばっていることです。収穫するために、Mナインを使用して成虫を回復します。

また、プレートの表面を既にリードしている胚は、X線フィルム片のような柔らかい材料で削り取ることができ、回収した細菌を数回のMナインウォッシュで洗い流すことができる。通常はカップルで十分です。ワームを洗ったら、好みに応じて作りたての漂白液を追加します。

チューブを振っている間、インキュベーションの時間を制御します。実体顕微鏡で成虫の世代をモニターすることができます。死体がほとんどない場合は、チューブが完全にいっぱいになるまでMナインを追加して反応を停止します。

プロトコールを完了するには、少なくとも3回の洗浄を行います。M nineでは、卵はM nineバッファーで一晩中躊躇しながらインキュベートされるため、孵化は可能ですが、ワームのさらなる発達を防ぐことができます。同期は 15 度から 25 度までの任意の温度で実行できますが、15 度をお勧めします。

発達が遅いため、その開発中に述べたように、エレガンは成虫になる前に4つの幼虫期を経ます。それは、それが育てられる温度によって異なります。タイプCエルガンは15〜25度の範囲の成長温度に耐えます。ただし、成長率は高くなります。

ここの上限温度は、24時間後にワームが発生する段階がどのように異なるかを確認できます。15度と25度で48時間後の25度では、すでに胚を観察しています。しかし、プレートの表面に胚を見るには80時間以上待たなければなりません。

15°Cで増殖した線虫が最適な結果を得るためには、ブリッツ実験を行う際にいくつかの問題を考慮する必要があります。また、実験が実施するための欲求段階である線虫を認識することも重要です。そこで、サイズ、微分干渉、造影顕微鏡、またはその染色のいずれかでステージを区別する方法をご紹介します。

このグラフでは、温度に応じて、GaNワームの成長速度を理解することができます、私たちが言うように、25度ではるかに速く成長しています。動物の大きさと海の要素の発達との間には相関関係があります。適切なソフトウェアを使用すれば、動物を測定し、適切な発生領域に分類することができます。

しかし、このグラフによれば、サイトは発達段階の全体的なマーカーです。より合意された病期分類は、海の一部、分別干渉、造影顕微鏡、またはDPI染色のいずれかによって使用および認識できる解剖学的構造を観察することによって達成できます。私たちの研究室では、このプロトコルを使用して、モノ染色、in situ視覚化、およびアップイン染色のマイクロ卵として、さまざまな実験で線虫を同期

させています。

さらに、このプロトコルは、汚染を取り除くのにも役立ちます。微分干渉コントラストまたはノマー顕微鏡法を使用してコントラストを強化します。未染色の透明なサンプルでは、動物は2%のベースに生きたままマウントされます アグロス 事前に調製し、必要に応じて4度で保存することができます。

溶かして65度に保つことができます。アグロスが溶けたら、スライドにテープを貼り、3枚目のスライドの両側に置きます。慎重にいくつかのアグロを取り、テープなしでスライドに一滴を置きます。

横方向に配置された別のスライドでアグロスを覆います。パスが固まったら、2つのスライドを慎重にスライドさせて分離します。パッドはそのうちの1つにくっつきます。

パッドにAmazonの一部を追加して、ワームを固定します。解剖顕微鏡でいくつかのワームを選び、それらをleleの滴に移します。パスの損傷を避けます。

カバースライドを取り、端にマニキュアを追加します このスライドにカバースリップを慎重に置き、腸の形成を防ぎます。調製物は顕微鏡下ですぐに観察することができます。c Elganの解剖学の最も簡単な機能の1つはAlvaです。

例えば、クリスマス3の形をしたアーバはL4段の特徴です。開発を通じたc elganの解剖学の詳細な情報は、www.orla.org から入手できます。タピス染色は、個々の細胞を同定するための一般的な手順です。

トンネルによる固定は、ワームを迅速に固定する方法です。ダッピー染色には、まず顕微鏡スライドの表面にM nineバッファーを一滴加えます。プレートから直接いくつかのワームを選び、それらをMnineのドロップに移します。

パイプまたは軟組織のいずれかで余分なM nineを除去します。ワームにトンネルを追加します。もう一度やり直してください。

最初の一滴が乾いたら、APIとオーバースリープを含む封入剤を添加してから、調製物を顕微鏡に持ち込みます。goの発達は、apiを使用したウォームステントで簡単に観察できます。

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基本的なプロトコル 問題64 遺伝学 発生生物学 分子生物学 C.エレガンス 同期化 開発 ノマルスキー DAPI染色

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