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DOI: 10.3791/54050-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
この記事には、マウスの皮膚の遺伝的標識、外科的除神経、皮膚生検、およびホールマウントβ-ガラクトシダーゼ染色による標識上皮の可視化のための詳細なプロトコルが含まれています。これらの方法は、正常皮膚と病理学的皮膚のマウスモデルで神経の必要性をテストするために使用できます。
この手順の全体的な目標は、正常な皮膚と病理学的な皮膚に対する神経の影響を調べることです。この方法は、皮膚神経が恒常性や疾患に影響を与えるかどうかなど、正常な皮膚生物学における重要な質問に答えるために使用できます。この手法の主な利点は、同じ動物の無傷の皮膚サンプルと除神経された皮膚サンプルを比較できることです。
この手法を視覚的に示示することは、神経を認識して除去するのが難しく、周囲の組織への損傷を最小限に抑えることが重要であるため、非常に重要です。まず、マウスに麻酔をかけ、つま先をつまんで適切な鎮静面に達したことを確認します。また、マウスが正常な呼吸と心拍を示すことを確認します。
次に、無菌手術エリアの加温パッドに動物を置きます。電動クリッパーを使用して、生検が行われる背側から慎重に毛を取り除きます。次に、ベタダインとアルコールワイプを使用して剃った部分を拭きます。
すべての髪の毛の切り抜きがサイトから取り除かれていることを確認します。次に、黒いマーカーを使用して生検部位の輪郭を描きます。毛包の縦断面を取得するには、生検の長い方の端が背側正中線の前方から後方のパラセティダルに走る必要があります。
メスを使用して、下にある筋膜を損傷することなく全層切除を行います。出血は通常最小限です。生検サンプルには、表皮、真皮、皮下脂肪、および肉球脂肪が含まれている必要があります。
切除した皮膚サンプルを、真皮を下にして乾いたペーパータオルで平らにします。余分なペーパータオルを切り取り、他のサンプルを収集する必要がある場合は、サンプルを冷たいTBSに最大1時間保管します。マウスに戻り、約3mm間隔で60本のナイロン縫合糸を使用して生検部位を縫合します。
次に、マウスが意識を取り戻すまで、回復ケージでマウスを監視します。指定された施設の動物ケアに従って鎮痛薬を使用し、マウスが苦痛を感じているように見える場合は、そのガイドラインに従ってください。手術後7〜10日以内に、縫合糸を抜いてください。
組織学またはホールマウント染色のための生検の処理に進みます。動物に麻酔をかけ、背側の皮膚全体を剃り、生検手順と同様にその領域をきれいにします。次に、首の付け根から尾の約半センチメートル上まで背側正中線に沿って滅菌メスを使用して切開を行います。
滅菌鈍い鉗子を使用して、左側の皮膚を脇腹から離してゆっくりと引っ込め、首の近くの肩甲骨脂肪パッドから後肢のすぐ上まで下にある組織を視覚化します。次に、解剖光学顕微鏡で背側皮膚神経を特定します。これらは、胴体壁の半透明の筋膜を尾側に移動する白いストランドとして現れ、その後、鋭く曲がり、皮膚の下の緩い結合組織に入ります。
次に、超極細鉗子を使用して、解剖学的部位T3からT12に位置する動物の左側から神経を切除し、体幹壁でセグメントが曲がるところから皮膚への侵入部位まで神経を摘み取ります。鉗子を垂直に向け、曲げ部位から約半センチメートル下の神経をつかみます。つかんだら、上に引っ張って神経を伸ばし、周囲の組織から分離して神経を取り除きます。
隣接する血管を傷つけないようにしてください。0.9%の生理食塩水を定期的に滴下することにより、手順全体を通して組織を湿らせておくようにしてください。.体幹壁から皮膚に伸びるすべての神経を引き続き取り除きますが、体幹壁の密集した筋膜内の神経を乱さないでください。
次に、露出した皮膚フラップから神経を取り除きます。これらの繊維は、背側皮膚神経の遠位枝を構成し、皮膚フラップの真皮側の結合組織内に散発的に位置する白い分岐鎖として現れます。これらの細い枝を取り除くには、鉗子を真皮表面とほぼ平行に配置し、神経をつかんで上向きに摘み取ります。
この方法で、目に見えるすべての神経を取り除きます。血管や皮膚に穴を開けないでください。このステップでは、隣接する血管が破裂しないようにすることが重要です。
血管が隣接している神経を見つけた場合は、最終的には隣接する血管がない領域まで神経をたどり、摘み取って取り除きます。次に、背側正中線切開の右側にある皮膚を緩めますが、神経は取り除かないでください。これは、対側の偽の手術制御として機能します。
最後に、動物を縫合し、以前と同様に術後にモニターします。その後、手術の数週間後に神経の安定した喪失を確認するために、滅菌済みの皮下注射針を使用して除神経領域を優しく刺します。動物が反応するかどうか、通常は身震いしたり、頭を回したりするかどうかに注意してください。
皮膚領域が安定して除神経されている場合、動物はほとんどまたはまったく反応を示しません。反応のない領域と反対側の偽側から皮膚生検を採取し、実験サンプルと対照サンプルを一致させます。生検から、複数の組織切片をサンプリングして、偽標本と除神経標本の間のタッチドームの存在量または形態の潜在的な違いを特定することが重要です。
グリーブワンクリーERT2マウス系統は、タッチドーム上皮などの高いヘッジホッグ経路活性を示す皮膚の領域に、タモキシフェン誘導遺伝子組換えの標的化を可能にします。これらのマウスを交配して、アボラクシレポーターマウスにタッチドーム上皮を視覚化するように誘導しました。ノードは、通常のタッチドームとそれに関連するメルケル細胞の両方を維持するために重要です。
これは、通常のタッチドームの形態が徐々に失われ、除神経後にケラチン8つの沈着細胞が失われることによって実験的に実証されています。神経は、グリーブ1クリーERE2表現、および偽の皮膚と除神経された皮膚の両方からの家庭用ベータ集団の側面染色によって監視されるように、タッチドームでハリネズミの信号伝達を促進するためにも重要です。このビデオを見た後、背側皮膚神経が正常な皮膚機能に関与しているかどうか、または病気を調節するかどうかをテストするために、これらの神経を外科的に切除する方法をよく理解しているはずです。
一度習得すれば、この技術は動物へのストレスを最小限に抑えながら、日常的かつ確実に行うことができます。この手順の後、アミノ蛍光染色などの方法を使用して、神経が皮膚から完全に切除されているかどうか、および遺伝子発現が影響を受けているかどうかを確認することができます。
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