January 11th, 2018
この原稿は、形態および齧歯動物の下顎内携帯電話の変更を分析するための方法を示します。
この実験の全体的な目標は、X線写真の形態測定と組織学的分析を使用して、マウスの下顆軟骨の圧縮負荷の影響を観察することです。これらの指標は、げっ歯類の下顆内の構造的および細胞的変化に関する重要な質問に答えるのに役立ちます。ここに示す手法の主な利点は、他の小さな生まれた動物や参加した動物の分析に使用できることです。
このプロトコルでは、分離され、解剖されたマウスの下顎骨がすぐに使用できます。ペトリ皿の上で、下顎骨をX線キャビネットシステムに移します。次に、26キロボルトで5秒間X線写真を撮ります。
次に、分析ソフトウェアで画像を開いて、形態測定を行います。まず、ユニットボタンを使用してスケールバーを設定します。次に、マーカースタイル2を使用して6つの解剖学的ポイントを選択します。
まず、下顆の最も後方の点をポイント1として選択します。次に、ポイント 2 の切開プロセスを選択します。次に、ポイント 3 のシグモイド ノッチで最も深いポイントを選択します。
次に、下顎枝の凹面の最も深い点である点4を選択し、次に、顆関節面の最も前方の点である点5を選択します。次に、顆関節面の最も後方の点を点6として選択し、長さツールを使用して長さの測定を続行します。次に、ポイント3から4までの垂線ツールを使用して、ポイント1からポイント3と4の間の線までの垂線の長さである顆頭の長さを測定します。
次に、ポイント1と2の間の下顎の長さを測定します。最後に、ポイント5と6の間の顆頭の幅を測定します。データを保存するには、画面右側の測定リストをコピーします。
固定されているが脱灰していない下顎骨を埋め込む前に、PBSの30%スクロースに一晩浸します。翌日、余分な軟部組織を解剖し、下顆を慎重に切り取ります。次に、サンプルをプラスチック型に入れ、顆の内側表面を型の基部に当て、サンプルを型の底部と平行にします。
その後、包埋用樹脂に浸し、ドライアイスで樹脂を冷やします。次に、さらに埋め込み樹脂で型を仕上げます。それらを冷凍庫またはドライアイスで冷却した冷たい2つのメチルブタンに移します。
冷やしたら、試料をマイナス20°Cまたはマイナス80°Cで保存して切片化します。顆の矢状切片のMCCにおけるCol10a1発現を定量化するには、画像解析ソフトウェアパッケージで組織学的画像を開き、なげなわツールを使用して関心のある領域を選択します。この場合、MCC 地域が選択されます。
ヒストグラム ボックスに報告される領域内のピクセル数をメモします。次に、色の範囲を調整してCol10a1の赤いピクセルを選択します。スポイトツールを使用して画像から赤いピクセルを選択し、[OK]をクリックします。次に、ヒストグラムボックスに報告された領域内の赤いピクセルの数を記録します。
領域内の赤いピクセルの割合は、Col10a1 の発現量を表します。次に、同じ基本的な手法を使用して、MCCおよび軟骨下骨のTRAP活性を定量化します。まず、軟骨下骨領域の軟骨を解析する領域として選択し、総ピクセル数に注目します。
次に、ELF97基板によって生成された黄色のピクセルを選択します。正のピクセルの数に注意し、TRAPの正のピクセルの割合を計算します。次に、DEPIによって青色で対比染色されたEDU陽性細胞を定量します。
再度、対象領域を選択し、その中の青色のピクセルを定量化します。また、この方法を使用して、同じ領域内の EDU 正のピクセルの数を決定します。圧縮性TMJ負荷を受けたマウスの形態測定では、負荷によって下顎骨と顆頭の長さが大幅に増加したことが示されました。
それにもかかわらず、荷重は顆幅の大きな変化をもたらさなかった。コラーゲン分布の定量化により、負荷を受けた動物の顆のCol10a1発現とMCCの有意な増加が明らかになりました。一方、Col2a1の発現はコントロールとあまり変わらなかった。
TRAP活性は、顆および負荷を受けたマウスの軟骨下領域で増加し、亜増殖も増加しました。EDU染色は増殖細胞の数を示します。MCCにおけるプロテオグリカン分布は、トルイジンブルー染色領域と距離マップを評価することにより定量化した。
負荷されたグループの顆のMCCでの距離マッピングが大幅に増加しました。しかし、プロテオグリカン染色領域は群間で統計的に差がありませんでした。このビデオを見た後、げっ歯類の下顆の細胞と構造変化を分析する方法についてよく理解しているはずです。
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この原稿は、げっ歯類の下顎関節円板の形態計測および細胞変化を分析する手法を提示しています。この研究は、マウスの下顎関節軟骨への圧縮負荷の影響に焦点を当てています。
This method enables quantitative assessment of structural and cellular adaptations in the murine mandibular condyle under compressive loading, providing a preclinical model for mechanobiology studies relevant to temporomandibular joint disorders. By linking mechanical stimuli to molecular and histological endpoints such as Col10a1 expression, TRAP activity, and proteoglycan distribution, the approach supports target validation in cartilage homeostasis pathways. The morphometric and imaging workflow offers a scalable, reproducible platform for de-risking therapeutic hypotheses in jaw development and osteoarthritic conditions.
The method integrates into discovery workflows by providing early-phase structural and phenotypic data that inform target selection and mechanistic de-risking in joint tissue biology.