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タイムラプス構造照明顕微鏡のためのミトコンドリアヌクレオイドの特異的標識
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JoVE Journal Biology
Specific Labeling of Mitochondrial Nucleoids for Time-lapse Structured Illumination Microscopy

タイムラプス構造照明顕微鏡のためのミトコンドリアヌクレオイドの特異的標識

Full Text
7,790 Views
07:53 min
June 4, 2020

DOI: 10.3791/60003-v

Visnja Jevtic1, Petra Kindle1, Sergiy V. Avilov1

1Imaging Facility,Max Planck Institute of Immunobiology and Epigenetics

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This protocol enables the specific labeling of mitochondrial nucleoids in live cells, facilitating the quantitative study of their motion at high resolution. By utilizing a commercially available DNA gel stain, the method circumvents the need for fluorescent protein overexpression, thus avoiding artifacts and broadening applicability to non-transfectable cell types.

Key Study Components

Research Area

  • Cell biology
  • Microscopy
  • Molecular biology

Background

  • Mitochondrial nucleoids play a crucial role in cellular function.
  • Conventional staining methods can introduce artifacts.
  • The study focuses on optimizing conditions for selective nucleoid labeling.

Methods Used

  • Super-resolution structured illumination microscopy (SR-SIM)
  • HeLa cells
  • SYBR Gold staining

Main Results

  • The protocol allows effective visualization of mitochondrial nucleoids as bright spots.
  • Time-lapse imaging provides tracking of nucleoid motion in real time.
  • High-resolution imaging reveals dynamics that surpass the diffraction limit.

Conclusions

  • This study demonstrates a novel method for labeling mitochondrial nucleoids, yielding valuable insights into their motion.
  • The findings enhance the understanding of mitochondrial dynamics and their significance in cell biology research.

Frequently Asked Questions

What is the purpose of labeling mitochondrial nucleoids?
Labeling allows for the visualization and tracking of nucleoid dynamics in live cells, providing insights into mitochondrial function.
Why use SYBR Gold instead of fluorescent proteins?
SYBR Gold avoids the artifacts associated with protein overexpression and can be used in non-transfectable cell types.
What imaging technology is used in this protocol?
The protocol utilizes super-resolution structured illumination microscopy (SR-SIM) for high-resolution imaging.
Can this method be applied to other cell types?
Yes, the protocol is designed to work with non-transfectable cells, expanding its utility across different cell types.
How does the time-lapse imaging enhance understanding of mitochondrial dynamics?
Time-lapse imaging allows researchers to observe live motion and behavior of nucleoid structures over time, providing dynamic insights.
What are the potential applications of this research?
This research can be applied to studies involving mitochondrial biology, genetics, and cellular metabolism research.
What concentration of SYBR Gold is recommended?
Lower concentrations are recommended to avoid extensive nuclear staining and enhance specificity for mitochondrial labeling.

このプロトコルは、市販のDNAゲル染色を有するミトコンドリアヌクレオイドの特異的標識、超分解能構造照明顕微鏡(SR-SIM)による生細胞のタイムラプスシリーズの取得、およびヌクロイド運動の自動追跡を記述する。

このプロトコルは、生細胞におけるミトコンドリアヌクレオイドの特異的標識と、その運動の高分解能における定量的研究を可能にする。蛍光色素によるインキュベーションは、蛍光タンパク質の必要性をバイパスするだけで、関連するアーティファクトや制限を回避し、トランスフェクト不可能な細胞にプロトコルを適用することができます。優等核の染色を達成するためには、SYBR Goldを使用し、最適化した条件下では何も使用しないでください。

さもなければ、全細胞DNAが染色され得る。ラベリング手順の1日前に、35ミリメートルペトリ皿中の培地2ミリリットルで5番目のHeLa細胞に10回10回培養する。翌朝、2ミリリットルのPBSで細胞を洗浄してから、フェノール赤自由培養液1ミリリットルと適切な2Xラベリング溶液の1ミリリットルを添加する。

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