2026年6月5日
私たちは、ユークロマチン、ヘテロクロマチン、RNAP IIの再現可能なマッピングを空間解析のために可能にする、三色クロマチン単分子局在顕微鏡(SMLM)染色および分析プロトコルを提示します。このプロトコルにより、クロマチン関連標的を含む高密度核環境での効率的な多色標識が可能となり、信頼性の高い同時検出を可能にします。
私たちの研究は、クロマチンパッキングドメインのエピジェネティック組成と、調節因子がその構造や機能をどのように形成するかを検証しています。このプロトコルは、標的と核のような高密度細胞環境との空間的関係の調査に最も有用です。まず、実験に必要なバッファー容積の最終濃度を3%にする牛血清アルブミンを計量します。牛血清アルブミンを遠心分離機チューブに加えます。
遠心分離機のチューブを45度傾けて牛血清アルブミン結晶を広げ、その後PBSをチューブに加えます。これにより結晶の凝集が防げます。すべての牛血清アルブミン結晶は室温で自然に溶け、揺れや渦巻きを避けるようにしてください。
結晶が完全に溶解したら、トリトンX-100を加えて最終濃度0.2%にします。結晶が残っている場合は、溶液を上下にピペットで何度か上下に動かし、気泡ができないようにゆっくりと混合します。インキュベーターから生きた細胞を取り出せ。培養培地を皿から取り出します。
細胞を洗浄し、PBSを十分に加えてからピペットで取り出します。次に、細胞を覆うのに十分な固定液をピペットで移し、10分間固定させます。バランスを使って、ホウ水素化ナトリウムを計量し、0.1%の焼入れ溶液を準備します。
ホウ水素化ナトリウムを遠心分離機のチューブに加えます。ディテナから固定液をピペットで取り出します。次に、細胞表面を覆うほどのPBSを皿に加えます。
皿をシェイカーに5分間置いて細胞を洗います。次に、遠心分離機管内のホウ水素化ナトリウムに必要な量のPBSを加えます。チューブを渦巻きて消融液を混ぜます。
シェイカーから皿を取り外し、PBSは捨てます。皿の表面を覆うほどのクエンチ溶液を加えます。その後、皿をシェイカーに7分間置き、細胞内の自己蛍光を消滅させます。
遠心分離機管内の残った焼入れ液を適切にラベル付けされた液体廃棄物容器に捨てます。シェイカーから皿を取り出し、次に清焼液を取り出します。次に、表面を覆うほどのPBSを皿に加えます。
皿をシェイカーに5分間置いて細胞を洗います。培養後、PBSを取り出し、さらにPBSで洗うのを2回繰り返します。次に、表面を覆うのに十分なブロッキングバッファーを皿に加えます。
シェーカーで少なくとも1時間培養し、細胞膜を透過させ結合部位を遮断します。一次抗体染色液を準備するには、必要な量のブロッキングバッファーストックを新しい遠心分離機チューブに移します。製造者が指定した最終濃度を達成するために、ブロッキングバッファーに必要な量の一次抗体ストックを加えます。
次に、ブロッキングバッファーを皿の表面を覆うのに十分な一次抗体染色液を交換し、シェイカーで1〜2時間または一晩培養します。一次抗体培養後、一次抗体溶液を洗浄バッファーに置き換えます。その後、皿をシェイカーに5分間置いて細胞を洗います。
さらに2回洗濯を繰り返し、合計3回洗います。推奨濃度に従って二次抗体染色液を準備します。セルを覆うために必要な体積に0.5ミリリットルを加えて、総染色溶液の体積を計算します。
ブロッキングバッファーから計算された体積を新しい遠心分離機チューブに移し、染色溶液を準備します。その後、適切な量の二次抗体ストックをブロッキングバッファーに加え、適切な最終濃度を得ます。二次抗体染色液を含む遠心分離機チューブをアルミホイルで包み、ピペットで上下に混ぜ合わせます。
表面を覆うほどの二次抗体染色液を皿に加えます。皿をシェイカーに40分間置き、蛍光分子を標的した細胞標的に付着させます。蛍光色素の漂白を防ぐために、皿をアルミホイルで覆います。
40分後に、先ほど示したようにPBSウォッシュを2回行います。保存を希望する場合は、保存前に細胞表面を覆うほどのPBSを皿に加えます。液体の蒸発を防ぐためにパラフィルムで包み、その後蛍光色素の漂白を防ぐためにアルミホイルで包みます。
包装した皿は撮影準備が整うまで4度の温度で保存してください。連続染色プロトコルにより、BJ線維芽細胞、HeLa、MCF 10A細胞を含む複数の細胞株に対して代表的な三色クロマチンdSTORM画像が生成されました。解析パイプラインは、ヘテロクロマチンクラスターの位置に固定された、通常の均一なトロイド分布およびランダムな空間分布を表すシミュレーションデータセットを用いて評価されました。
異なる空間的組織パターンは、局在座標をヘテロクロマチン重心に対して解析した際に特徴的な距離ヒストグラムプロファイルを生み出しました。通常の脈絡膜配置で空間的に分離されたマーカーを模擬すると、結合密度が最小限に抑えられ、平坦な分布プロファイルが得られました。通常のランダム構成で重なり合うマーカーパターンをシミュレートすると、基準点からの距離が増すほど結合密度が低下しました。
DBスキャンを用いたヘテロクロマチンドメインの同定により、有効半径に基づいて小、中、大ドメインに分類できるようになりました。定量的距離解析により、RNAポリメラーゼIIおよびH3K27acは小、中、大ドメインのヘテロクロマチン境界付近に局在することが示されました。接合密度解析では、H3K27acおよびRNAポリメラーゼIIの共局在がヘテロクロマチンクラスター境界のすぐ外側でピークを示しました。
このプロトコルを用いて、研究者はクロマチンの一見無秩序な組織構造を調査し、その構造、調節要素、機能的結果との関係を探ることができます。この手順に従い、画像ベースや点クラウド計算解析によって、使用されるイメージング手法に応じて空間データから定量的な構造特徴を抽出できます。研究者は追加のマーカーを最適化し、マルチチャネルデータを活用することで、より高度で包括的な分析を可能にすることで、このラベリング手法を拡張できます。
本記事では、高密度な核環境において堅牢な3色単一分子局在化顕微鏡法(SMLM)を実現し、クロマチン構成要素の高忠実度イメージングを可能にする逐次免疫ラベル化プロトコルを紹介します。この手法には、クロストークと信号劣化を最小限に抑えるために最適化されたバッファー組成、蛍光色素の選択、および抗体バリデーション戦略が含まれています。また、あるターゲットからの局在化情報を空間アンカーとして利用し、ターゲット間の距離、局所密度、およびマルチラベルの共親和性を定量化する計算解析パイプラインを統合しています。本プロトコルは、BJ線維芽細胞、HeLa細胞、およびMCF 10A細胞を用いて実証されており、クロマチン構造の詳細なナノスケール空間解析をサポートします。
本プロトコルは、抗体の到達性と信号安定性が大きな制限となる高密度の核内環境において、ロバストなマルチプレックス超解像イメージングを実現するという、クロマチン研究における極めて重要なボトルネックを解消するものです。ヘテロクロマチン領域に対するエピジェネティックマークや調節因子の定量的なナノスケールマッピングを可能にすることで、エピジェネティック創薬における標的バリデーションのためのメカニズム的なリスク低減ツールを提供します。統合された計算パイプラインは、生のローカリゼーションデータを実用的な空間的指標へと変換し、初期段階の標的仮説検証における予測の信頼性をサポートします。
本手法は、標的仮説の生成からリード化合物の同定に至る創薬の連続的なプロセスに適合し、空間的なクロマチンコンテキストが標的の薬剤投与可能性(ドラッガビリティ)および作用機現に情報を与えます。また、定量的出力を持つ標準化されたマルチプレックス核イメージングデータを提供することで、スクリーニングに適したアッセイ開発を可能にします。計算パイプラインは、クロマチン構造に対する化合物または遺伝的摂動の機能横断的な比較をサポートする、解析可能な空間メトリクスを提供します。