Summary
Qui, descriviamo il metodo per generare un modello di decidualizzazione artificiale usando il topo ovariectomizzato, un classico esperimento di decidualizzazione endometriale nel campo di ricerca della decidualizzazione endometriale.
Abstract
La decidualizzazione endometriale è un processo di differenziazione unico dell'endometrio, strettamente correlato alle mestruazioni e alla gravidanza. La compromissione della decidualizzazione porta a vari disturbi dell'endometrio, come l'infertilità, l'aborto spontaneo ricorrente e la nascita pretermine. Lo sviluppo e l'uso del modello di decidualizzazione endometriale negli studi riproduttivi sono stati un punto culminante per i ricercatori riproduttivi per molto tempo. Il topo è stato ampiamente utilizzato nello studio della riproduzione e della decidualizzazione. Esistono tre modelli murini ben consolidati per quanto riguarda la decidualizzazione, vale a dire la decidualizzazione naturale della gravidanza (NPD), la decidualizzazione artificiale (AD) e la decidualizzazione in vitro (IVD). Tra questi, AD è considerato un modello affidabile per la decidualizzazione del mouse, che è facile da implementare e vicino a NPD. Questo articolo si concentra su un metodo modificato del processo di generazione e applicazione del modello di decidualizzazione artificiale del topo con ovariectomia per evitare effetti ovarici, che possono ottenere risultati altamente riproducibili con piccole variazioni all'interno del gruppo. Questo metodo fornisce un modello animale buono e affidabile per lo studio della decidualizzazione endometriale.
Introduction
Con lo sviluppo della tecnologia di riproduzione assistita dall'uomo, l'attuale tasso di gravidanza clinica di fecondazione in vitro-trasferimento di embrioni (IVF-ET) ha raggiunto o addirittura superato quello della gravidanza naturale. Nonostante ciò, molte pazienti nella pratica clinica della riproduzione assistita si sottopongono ancora a trasferimenti multipli di embrioni ma non riescono a ottenere la gravidanza come desiderato. Tuttavia, il suo specifico meccanismo molecolare non è ancora chiaro, quindi l'intervento clinico è inefficace, che è una delle sfide significative che la medicina riproduttiva deve affrontare 1,2.
I fattori endometriali rappresentano circa i due terzi delle cause del fallimento della fecondazione in vitro3. L'impianto dell'embrione umano è diviso in tre fasi: posizionamento, adesione e invasione 4,5,6. L'endometrio materno subisce una serie di cambiamenti per andare incontro all'arrivo dell'embrione. La formazione di un "periodo finestra" di impianto fornisce condizioni favorevoli per l'impianto dell'embrione 7,8.
Nella maggior parte dei mammiferi, dopo che la blastocisti aderisce all'epitelio luminale dell'utero, le cellule stromali che circondano la blastocisti iniziano rapidamente a proliferare e differenziarsi, e il rapido rimodellamento del mesenchima cambia la sua forma e funzione, portando all'impianto dell'embrione 5,9,10. Il rapido aumento del volume e del peso del sito consente alla blastocisti di essere incorporata nello stroma uterino, un processo noto come decidualizzazione11. Lo stroma endometriale si differenzia e si rimodella in preparazione alla gravidanza, mentre la transizione delle cellule stromali fornisce spazio e nuove connessioni di segnalazione per le cellule deciduali per svolgere le loro funzioni12,13. Le cellule stromali si trasformano in cellule deciduali e secernono molti fattori iconici come la prolattina (PRL), la proteina legante il fattore di crescita insulino-simile 1 (Igfbp1) e così via. Gli studi hanno dimostrato che la decidualizzazione anormale è una delle ragioni principali del fallimento dell'impianto dell'embrione, ma la causa della decidualizzazione anormale non è ancora chiara e deve essere ulteriormente chiarita 1,14.
Il modello di decidualizzazione artificiale del topo è essenziale per studiare il processo fisiologico e i meccanismi molecolari alla base della decidualizzazione. La decidualizzazione artificiale (AD) si riferisce principalmente al processo di decidualizzazione endometriale stabilito da metodi artificiali per simulare la gravidanza o il ciclo mestruale. In termini di morfologia, c'è poca differenza complessiva tra decidualizzazione della gravidanza e decidualizzazione artificiale15,16. Le ghiandole uterine esistono nell'endometrio prima della formazione decidua e scompaiono dopo la decidualizzazione. Per quanto riguarda l'espressione genica, è stata identificata solo una leggera differenza tra la decidualizzazione naturale della gravidanza (NPD) e l'AD15. Di conseguenza, il modello di decidualizzazione artificiale nei topi può simulare la decidualizzazione della gravidanza per esplorare la patogenesi sconosciuta e il nuovo trattamento delle malattie riproduttive umane.
NPD, AD e decidualizzazione in vitro (IVD) sono tre metodi per ottenere la decidualizzazione del topo. Il modello NPD dipende dalla gravidanza naturale ed è più vicino allo stato fisiologico materno, compresi gli effetti degli embrioni. Confrontare le differenze tra siti di impianto e non impianto è un approccio più fisiologico e conveniente per studiare la decidualizzazione. Il modello AD è stato sviluppato utilizzando un'iniezione intrauterina di olio di sesamo come stimolante per indurre la decidualizzazione in un topo femmina pseudogravido accoppiato con maschi vasectomizzati per evitare l'impatto degli embrioni. Entrambi i modelli NPD e AD svolgono ruoli essenziali in diversi scopi di ricerca, ma non possono evitare il fallimento dell'accoppiamento e le differenze all'interno del gruppo causate dalle diverse attività del metabolismo ormonale materno. IVD è un metodo che dipende dal trattamento combinato di estrogeni e progesterone a livello cellulare, che richiede condizioni sperimentali più rigorose e capacità operativa. Tuttavia, il modello in vitro non può simulare completamente la risposta deciduale in condizioni fisiologiche15. Pertanto, proponiamo un metodo di induzione semplice e migliorato modificato dall'AD tradizionale per ridurre l'effetto degli ormoni endogeni sulla decidualizzazione. Basato sul garantire il successo dell'induzione della decidualizzazione, è più vicino allo stato fisiologico e più adatto per esperimenti che devono escludere fattori embrionali.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Tutti gli esperimenti sugli animali descritti sono stati approvati dal Comitato per l'uso e la cura degli animali della Scuola medica dell'Università di Nanchino (n. 20171202). Tutte le operazioni seguono le linee guida nazionali e dell'agenzia per la cura e l'uso degli animali.
NOTA: I topi sono stati allevati in un ambiente specifico privo di agenti patogeni (SPF), con una temperatura di 22 °C ± 1 °C, umidità relativa del 50% ± 1%, un ciclo luce/buio di 12 h/12 h e libero accesso al cibo e all'acqua.
1. Ovariectomia del topo
- Sterilizzare gli strumenti chirurgici con uno sterilizzatore ad alta temperatura e alta pressione 1 giorno prima dell'operazione.
- Pesare topi C57BL/6 di 8 settimane e iniettare per via intraperitoneale (i.p) l'1% di pentobarbital di sodio di conseguenza per anestetizzare i topi. La dose utilizzata è di 40 mg/kg17. Questa dose fornisce 40-60 minuti di sedazione, che soddisfa i requisiti di un'ovariectomia. Per l'analgesia preoperatoria, iniettare nei topi 5 mg/kg di meloxicam (s.c.).
NOTA: L'anestesia di successo nei topi può essere indicata dalla scomparsa dei riflessi muscolari profondi e dalla respirazione costante. I segni di anestesia di successo includono nessun battito di ciglia quando si tocca il canto interno, nessuna deglutizione quando si tira la lingua, nessuna piegatura della gamba quando si pizzica la pelle tra le dita dei piedi e nessun rimbalzo quando si aguglia la coda. - Applicare l'unguento protettivo per gli occhi ai bulbi oculari per prevenire la secchezza durante l'anestesia.
- Inizia l'operazione quando i topi sono completamente anestetizzati. Posizionare e fissare i topi in posizione prona sulla superficie operatoria e radersi i peli sulla schiena dopo averli bagnati con acqua saponata. Disinfettare la pelle con etanolo al 70% dopo la rasatura.
- Trova il sito di incisione dell'operazione a 0,5 cm (o 1,0 cm sotto la costola) sul bordo superiore della radice della coscia di entrambi gli arti posteriori paralleli alla colonna vertebrale (Figura 1A).
NOTA: Una corretta posizione dell'incisione è essenziale per localizzare rapidamente l'ovaio. - Prendere il sito di incisione come centro e disinfettare l'area di incisione con iodophor 3x, quindi posizionare un drappo chirurgico intorno all'area di incisione.
- Fare un'incisione longitudinale di circa 0,5-1,0 cm usando le forbici. Tagliare la fascia e separare passivamente i muscoli con una pinzetta.
- Trova un pezzo del cuscinetto di grasso bianco nel campo di incisione vicino al polo inferiore del rene attraverso il sottile strato muscolare (Figura 1B).
NOTA: Il cuscinetto di grasso bianco è l'indicatore più ovvio della posizione dell'ovaio. - Bloccare la massa grassa con clip emostatiche e tirare l'ovaia avvolta dal cuscinetto di grasso dall'incisione.
- Bloccare la giunzione dell'ovaio e della tuba di Falloppio con una pinzetta curva e rimuovere l'ovaia lungo il peduncolo ovarico con le forbici. Interrompere l'emorragia utilizzando una penna elettrocoagulante o un ago di una siringa da 1 mL riscaldata sulla lampada ad alcool.
NOTA: Assicurati di preservare la tuba di Falloppio, che è il punto di riferimento anatomico per la successiva iniezione di olio di sesamo nelle corna uterine. - Risciacquare l'incisione chirurgica con soluzione salina normale per prevenire l'adesione dei tessuti, utilizzare una sutura 4-0 per cucire rispettivamente il muscolo e la pelle e disinfettare nuovamente l'incisione chirurgica con iodophor.
- Posizionare i topi in posizione prona nella gabbia e rianimarli in un'incubatrice a 25 °C dotata di una sorgente luminosa e di un sistema di ventilazione per circa 2 ore.
- Presta attenzione ai topi dopo l'operazione, rimettili nel luogo di alimentazione originale da soli fino a quando non si riprendono completamente e dai loro abbastanza acqua e cibo.
2. Riposo postoperatorio e formulazione di estrogeni e progesterone
- Assicurati che i topi riposi per 2 settimane dopo l'ovariectomia.
- In un armadietto ultra-pulito, aggiungere estrogeni (2 ng / μL) e progesterone (0,2 ng / μL) nell'olio di sesamo in provette da centrifuga prive di enzimi RNA.
- Posizionare i tubi della centrifuga in un bagno d'acqua termostatico a 37 °C e agitare continuamente i tubi per accelerare la dissoluzione.
- Dopo completa dissoluzione, dividere la soluzione di olio di sesamo in aliqout da 100 μL per un uso conveniente. Conservare le soluzioni preparate di estrogeni e progesterone in frigorifero a 4 °C.
3. Modello di decidualizzazione artificiale indotta
- Per via sottocutanea (s.c) iniettare 100 ng di estrogeni in 50 μL di olio di sesamo in ciascun topo per 3 giorni, seguiti da 2 giorni di riposo15.
NOTA: Assicurarsi che l'estrogeno e il progesterone siano stati formulati e collocati in luoghi diversi. Qualsiasi contaminazione di estrogeni da progesterone può portare al fallimento. - Iniettare (s.c.) 1 mg di progesterone e 10 ng di estrogeni in 50 μL di olio di sesamo in ciascun topo per altri 3 giorni15.
- Operare i topi per indurre il modello di decidualizzazione artificiale15 6 h dopo la terza iniezione combinata estrogeno-progesterone.
- Trova il corno dell'utero all'estremità inferiore delle tube di Falloppio e inietta lentamente 20 μL di olio di sesamo insieme al corno uterino, spingi indietro il tessuto, sutura l'incisione e consenti al topo di recuperare. L'approccio all'operazione è lo stesso dell'ovariectomia del topo15.
NOTA: Procedere con il secondo intervento chirurgico solo in caso di successo dell'ovariectomia (l'incisione cutanea è ben guarita, l'ovaio è completamente asportato e l'estremità residua della tuba di Falloppio non aderisce ai tessuti circostanti).
NOTA: Per indurre il modello AD, 20 μL di olio di sesamo sono appropriati; più di 20 μL di olio di sesamo penetrano facilmente nell'altro lato. - Iniettare (s.c.) 50 μL di olio di sesamo contenente 1 mg di progesterone e 10 ng di estrogeni (H.) per altri 4 giorni. Cfr. dettagli nella figura 215,18.
4. Raccolta dei campioni
- Eutanasia i topi (n = 6) mediante asfissia di anidride carbonica e raccogliere gli uteri. Osservare la forma degli uteri bilaterali, scattare foto e pesare le corna uterine (Figura 3A, B).
- Fissare 3-5 mm di tessuto uterino con formalina al 10%, incorporare in paraffina e sezionarli. Colorare le sezioni con ematossilina ed eosina per osservare i cambiamenti morfologici19 (Figura 4A).
- Incorporare altri 3-5 mm di tessuto uterino nel composto della temperatura di taglio ottimale (OCT), congelare in azoto liquido e conservare in frigorifero a -80 °C. Congelare il tessuto a 10 μm e rilevare l'attività della fosfatasi alcalina nel tessuto uterino mediante il metodo di accoppiamento azoico20 (Figura 4B).
NOTA: risultati soddisfacenti possono essere ottenuti utilizzando sezioni congelate per rilevare il contenuto di ALP, non sezioni di paraffina. - Estrarre gli RNA totali dell'utero con il reagente Trizol ed eseguire la PCR quantitativa in tempo reale (qPCR) su un sistema di PCR in tempo reale (Table of Materials) con qPCR master mix (Table of Materials) per rilevare l'espressione relativa dell'mRNA del membro 2 della sottofamiglia 2 della famiglia 8 della prolattina (Prl8a2), della fosfatasi alcalina fegato/ossa/rene (Alpl) e della proteina legante il fattore di crescita insulino-simile 1 (Igfbp1)15 mediante normalizzazione ai livelli di mRNA 18S (Figura 4C-E ). Seguire le condizioni PCR: Stadio 1, 95 °C per 30 s; Fase 2, 95 °C per 10 s e 60 °C per 30 s; Ripeti il ciclo 40x. Un elenco completo delle sequenze di primer è fornito nella Tabella 1.
- Analizzare i dati qPCR utilizzando il metodo 2-ΔΔCT e un metodo t-test per l'analisi statistica nel software appropriato. In questo studio, p < 0,05 è stato considerato statisticamente significativo.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Gli indici del modello di decidualizzazione del topo includono la morfologia generale dell'utero, il rapporto di massa dell'utero decidualizzato e non decidualizzato, la morfologia istologica dell'endometrio e il livello di espressione delle molecole marcatrici di decidualizzazione. La morfologia generale dell'utero artificiale decidualizzato dei topi indotto dall'olio è più vicina a quella dell'utero in gravidanza. Il corpo uterino diventa spesso e la cavità uterina diventa più piccola del lato non indotto. Il volume e il peso del corno uterino indotto sono significativamente superiori a quelli del lato non indotto (Figura 3A,B). La colorazione HE del tessuto uterino ha mostrato che le ghiandole scompaiono e le cellule stromali endometriali sul corno indotto si differenziano in cellule deciduali grandi, rotonde, citoplasmatiche e multinucleate con confini cellulari poco chiari. Le sezioni laterali non indotte mostrano la morfologia del tessuto endometriale in uno stato fisiologico normale (Figura 4A). Il risultato del metodo di accoppiamento azoico ha mostrato che il contenuto di fosfatasi alcalina del lato indotto dall'olio era significativamente più alto del lato non indotto (Figura 4B). I risultati della qPCR hanno mostrato che l'espressione di mRNA di Prl8a2, Alpl e Igfbp1 nel corno indotto era significativamente superiore a quella in quello non indotto, suggerendo che l'olio può indurre decidualizzazione artificiale nei topi (Figura 4C-E).
Figura 1: L'incisione operativa dell'ovariectomia del topo. (A) Posizione dell'ovariectomia del topo. (B) La posizione dell'ovaio del topo durante l'ovariectomia. (C) Il sito dell'ovaio durante l'ovariectomia. Fare clic qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
Figura 2: La procedura dell'operazione. L'intera procedura comprende l'ovariectomia, il riposo postoperatorio, l'induzione del modello di decidualizzazione artificiale e la convalida fenotipica. Fare clic qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
Figura 3: Generazione del modello di decidualizzazione artificiale del topo. (A) Immagine rappresentativa della decidualizzazione artificiale indotta dal petrolio. L'utero destro non è stato iniettato con olio, chiamato olio (-). L'utero sinistro è stato iniettato con olio, chiamato olio (+). (B) Il peso dell'utero iniettato con o senza olio. p < 0,001. Fare clic qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
Figura 4: Convalida del modello di decidualizzazione artificiale del topo. (A) Quadro rappresentativo della decidualizzazione artificiale indotta dal petrolio. Barra della scala = 1 mm e 100 μm. (B) Il metodo di accoppiamento azoico ha rilevato l'attività della fosfatasi alcalina della decidua artificiale. Barre di scala = 200 μm e 50 μm. (C) Il livello di espressione dell'mRNA Prl8a2 è stato rilevato mediante qPCR. * p < 0,05. (D) Il livello di espressione dell'mRNA Alpl. ** p < 0,01. (E) Il livello di espressione dell'mRNA di Igfbp1. ** p < 0,01. Fare clic qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
| Igfbp1 Mouse qPCR-F | GCCCAACAGAAAGCAGGAGATG |
| Igfbp2 Mouse qPCR-R | GTAGACACACCAGCAGAGTCCA |
| Prl8a2 Mouse qPCR-F | ACCACAACCCATTCTCAGCTGG |
| Prl8a2 Mouse qPCR-R | TGTTCAGGTCCATGAGCTGGTG |
| Alpl Mouse qPCR-F | CCAGAAAGACACCTTGACTGTGG |
| Alpl Mouse qPCR-R | TCTTGTCCGTGTCGCTCACCAT |
| Mouse 18s qPCR-F | ATGGCCGTTCTTAGTTGGTG |
| Mouse 18s qPCR-R | CGGACATCTAAGGGCATCAC |
Tabella 1: Elenco delle sequenze di primer.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
La decidualizzazione nei topi è un processo spontaneo che dipende dalla presenza di embrioni, che è diverso dagli esseri umani. Tuttavia, è stato scoperto che la stimolazione artificiale come l'iniezione uterina di perle di vetro e la lacerazione uterina può indurre la decidualizzazione dell'endometrio anziché degli embrioni. Inoltre, i ricercatori hanno scoperto che molti fattori potrebbero indurre deciduali o partecipare alla decidualizzazione, come l'iniezione di ormoni steroidei, prostaglandine e fattori inibitori della crescita nella cavità uterina21. Rispetto ai metodi di modellazione di cui sopra, il modello murino qui dettagliato con l'ovariectomia, usando l'olio di sesamo come stimolante, può escludere gli effetti degli estrogeni e del progesterone prodotti endogenamente. Pertanto, è economico e facile da usare.
Le ovaie devono essere rimosse in modo pulito per prevenire il tessuto ovarico residuo, che influenzerà la successiva induzione della decidualizzazione. Questo passaggio mira a ridurre gli effetti degli estrogeni endogeni e del progesterone prodotti dalle ovaie. Il danno alla tuba di Falloppio dovrebbe essere evitato perché può essere usato come segno per cercare l'utero quando si inietta l'olio di sesamo nella cavità uterina. Se si verifica adesione addominale o rimozione delle tube di Falloppio, l'operatore deve prestare attenzione a distinguere l'utero dall'intestino.
La perdita di olio si verifica facilmente nel processo di iniezione sottocutanea. Si dovrebbe selezionare la pelle addominale come sito di iniezione sottocutanea ed evitare i capezzoli. È necessario iniettare l'olio ed estrarre lentamente l'ago. Se l'ago non può essere estratto quando il mouse è attivo, si verificano facilmente perdite. Si dovrebbe premere il sito dell'ago con un batuffolo di cotone per un momento per evitare perdite. In questa operazione sono state utilizzate iniezioni esogene di estrogeni e progesterone per mantenere stabili i livelli ormonali dei topi prima dell'operazione di decidualizzazione che induce. Questo metodo di iniezione simulava i cambiamenti ormonali nel periodo di peri-impianto dei topi. Qui, abbiamo indotto la decidualizzazione dopo il secondo picco di estrogeni.
La chiave del successo di questa operazione è la quantità di olio di sesamo iniettato. Troppo olio di sesamo penetrerà nella cavità dell'altro corno dell'uteri. L'olio di sesamo insufficiente porterà a una diminuzione della risposta di decidualizzazione o a una decidualizzazione irregolare lungo l'utero, con conseguenti differenze sperimentali inaspettate. Durante l'operazione, si dovrebbe inserire l'ago della siringa nella cavità uterina quando si inietta olio di sesamo e tirare delicatamente avanti e indietro per assicurarsi che l'ago sia nella cavità uterina. Parte della cavità uterina può essere vista come trasparente se iniettata con successo. Si dovrebbe bloccare delicatamente la puntura di spillo con una pinzetta per circa 10 s per assicurarsi che sia chiusa, il che può impedire la fuoriuscita di olio di sesamo dopo aver estratto l'ago. Allo stesso tempo, spingere delicatamente il corpo uterino verso il basso con l'ago per far sì che l'olio di sesamo si diffonda uniformemente nella cavità uterina.
Il trattamento post-operatorio e la rianimazione sono altre chiavi del successo di questo modello. In primo luogo, mantenere un ambiente sterile per l'incisione durante l'operazione è essenziale. Prima che i topi rianimano, disinfettare l'incisione dell'operazione con iodophor e coprirla con un pezzo di garza medica per ridurre l'incidenza dell'infezione. Dopo l'operazione, i topi devono metabolizzare gli anestetici per 2-3 ore per recuperare. Durante questo periodo, i topi devono essere collocati in un'incubatrice a 25 ° C per recuperare più velocemente ed evitare l'ipotermia causata dalla disinfezione con alcol al 70% e iodoporo. Si dovrebbe prestare attenzione alla guarigione entro pochi giorni dopo l'operazione e gestire i tipi di complicazioni operative nel tempo, come incisione cracking, gonfiore, ulcerazione, e così via.
Prl8a2 e Alpl sono i marcatori di decidualizzazione più classici. Igfbp1 è anche la proteina principale nelle cellule decidualizzate nei topi ed è considerato il marker specifico della decidualizzazione nei topi. I livelli di espressione di Prl8a2, Alpl e Igfbp1 mRNA nel corno uterino indotto da olio sono significativamente aumentati rispetto al lato di controllo senza iniezione di olio. Inoltre, l'attività della fosfatasi alcalina sul lato indotto dall'olio è significativamente più alta rispetto al lato di controllo. Tutti questi risultati indicano il successo del modello di decidualizzazione artificiale15.
Il modello di decidualizzazione artificiale del topo può essere utilizzato per convalidare le molecole patogene dell'infertilità e fornire un buon modello di convalida per diagnosticare e trattare l'infertilità associata a decidualizzazione endometriale anormale. Questo modello è utile per studiare le malattie riproduttive, come l'aborto ripetuto e il fallimento ripetuto dell'impianto. È usato per studiare il ruolo dei fattori materni nell'impianto e nell'invasione dell'embrione. Questo modello AD ha una buona sicurezza, un alto tasso di successo e risolve l'influenza degli ormoni endogeni. Tuttavia, è un processo che richiede tempo e molto impegnativo. Ottimizzeremo ulteriormente i nostri metodi sperimentali per facilitare la ricerca.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Gli autori non hanno nulla da rivelare.
Acknowledgments
Gli autori desiderano riconoscere il sostegno della National Nature Science Foundation of China (82001629, XQS), del Youth Program of Natural Science Foundation della provincia di Jiangsu (BK20200116, XQS) e del Jiangsu Province Postdoctoral Research Funding (2021K277B, XQS).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Estrogen | Sigma | E2758 | Hormone supplement |
| Progesterone | Sigma | P0130 | Hormone supplement |
| Sesame oil | Sigma | S3547 | Hormone supplement |
| Sodium pentobarbital | Dainippon Sumitomo Pharma Co.,Ltd. | Anaesthesia | |
| Meloxicam injection | Qilu Animal Health Products Co., Ltd | Analgesia | |
| Alkaline phophatase stain kit(kaplow's/azo coupling method) | Solarbio | G1480 | Alkaline phophatase stain |
| Eosin | Servicebio | G1005-2 | HE stain |
| Hematoxylin | Servicebio | G1005-1 | HE stain |
| ChamQ Universal SYBR qPCR Master Mix | Vazyme | Q711-02 | qPCR |
| 70% ethanol | Lircon | ZH1120090 | Disinfect |
| Iodophor | Runzekang | RZK-DF | Disinfect |
| Erythromycin Eye Ointment | Guangzhou Baiyunshan | Mice eyeball protect | |
| 4-0 suture | Ethicon | W329 | Incision suture |
| 10% formalin | Yulu | L25010118 | Tissue fix |
| Optimal cutting temperature compound | Sakura | 4583 | Ssection |
| Trizol reagent | Ambion | 15596018 | qPCR |
References
- Carson, S. A., Kallen, A. N. Diagnosis and management of infertility: A review. JAMA. 326 (1), 65-76 (2021).
- Yatsenko, S. A., Rajkovic, A. Genetics of human female infertility dagger. Biology of Reproduction. 101 (3), 549-566 (2019).
- Sang, Y., Li, Y., Xu, L., Li, D., Du, M. Regulatory mechanisms of endometrial decidualization and pregnancy-related diseases. Acta Biochimica et Biophysica Sinica. 52 (2), 105-115 (2020).
- Ng, S. W., et al. Endometrial decidualization: The primary driver of pregnancy health. International Journal of Molecular Sciences. 21 (11), 4092 (2020).
- Birgit, G., Brosens, J. J. Cyclic decidualization of the human endometrium in reproductive health and failure. Endocrine Reviews. 35 (6), 851-905 (2014).
- Owusu-Akyaw, A., Krishnamoorthy, K., Goldsmith, L. T., Morelli, S. S. The role of mesenchymal-epithelial transition in endometrial function. Human Reproduction Update. 25 (1), 114-133 (2019).
- Paulson, E. E., Comizzoli, P. Endometrial receptivity and embryo implantation in carnivores-commonalities and differences with other mammalian species. Biology of Reproduction. 104 (4), 771-783 (2021).
- Kelleher, A. M., Milano-Foster, J., Behura, S. K., Spencer, T. E. Uterine glands coordinate on-time embryo implantation and impact endometrial decidualization for pregnancy success. Nature Communications. 9 (1), 2435 (2018).
- Tian, J., et al. Attenuated monoamine oxidase a impairs endometrial receptivity in women with adenomyosis via downregulation of FOXO1dagger. Biology of Reproduction. 105 (6), 1443-1457 (2021).
- Large, M. J., DeMayo, F. J. The regulation of embryo implantation and endometrial decidualization by progesterone receptor signaling. Molecular and Cellular Endocrinology. 358 (2), 155-165 (2012).
- Dunn, C. L., Kelly, R. W., Critchley, H. O. Decidualization of the human endometrial stromal cell: an enigmatic transformation. Reproductive BioMedicine Online. 7 (2), 151-161 (2003).
- Zhu, H., Hou, C. C., Luo, L. F., Hu, Y. J., Yang, W. X. Endometrial stromal cells and decidualized stromal cells: Origins, transformation and functions. Gene. 551 (1), 1-14 (2014).
- Jose, R. M., et al. Endometrial and decidual stromal precursors show a different decidualization capacity. Reproduction. 160 (1), 83-91 (2020).
- Pan-Castillo, B., et al. Morphophysical dynamics of human endometrial cells during decidualization. Nanomedicine. 14 (7), 2235-2245 (2018).
- Wang, C., et al. Comparative analysis of mouse decidualization models at the molecular level. Genes. 11 (8), 935 (2020).
- De Clercq, K., Hennes, A., Vriens, J. Isolation of mouse endometrial epithelial and stromal cells for in vitro decidualization. Journal of Visualized Experiments. (121), e55168 (2017).
- Kerger, H., et al. Microvascular oxygen delivery and interstitial oxygenation during sodium pentobarbital anesthesia. Anesthesiology. 86 (2), 372-386 (1997).
- Filant, J., Spencer, T. E. Endometrial glands are essential for blastocyst implantation and decidualization in the mouse uterus. Biology of Reproduction. 88 (4), 93 (2013).
- Sheng, X., et al. The mitochondrial protease LONP1 maintains oocyte development and survival by suppressing nuclear translocation of AIFM1 in mammals. EBioMedicine. 75, 103790 (2022).
- Grogg, E., Pearse, A. G. Coupling azo dye methods for histochemical demonstration of alkaline phosphatase. Nature. 170 (4327), 578-579 (1952).
- Labarta, E., et al. Analysis of serum and endometrial progesterone in determining endometrial receptivity. Human Reproduction. 36 (11), 2861-2870 (2021).
