12 juli 2011
Muis blaaswand injectie is een nuttige benadering voor orthotopically studie blaas stamcellen en kanker biologie. Deze delicate microchirurgische methode kan worden beheerst met een zorgvuldige techniek en praktijk.
Het algemene doel van deze procedure is om cellen in gedefinieerde gebieden van de blaaswand in te brengen. Dit wordt bereikt door eerst een abdominale incisie te maken om de blaas bloot te leggen. De volgende stap van de procedure is het intramuraal inbrengen van de schuine punt van de naald.
De laatste stap van de procedure is het indrukken van de zuiger van de spuit om de gewenste cellen in de blaaswand te injecteren. Een succesvolle implantatie van cellen wordt gekenmerkt door een goed gelokaliseerde bleb die geen vloeistof lekt en stabiel blijft in grootte. Het belangrijkste voordeel van deze techniek ten opzichte van bestaande methoden, zoals transurethrale inoculatie van muizen met cellen, is dat men hiermee kan bepalen waar de cellen zich in de blaas zullen implanteren.
Een visuele demonstratie van de spierinjectie is cruciaal, aangezien de injectietechniek moeilijk aan te leren is. Het kennen van de juiste hoek en de insteekpositie van de naald in de blaas is essentieel voor het succes van de techniek. Selecteer de leeftijd, het geslacht en het ras van de muizen op basis van de behoeften van het experiment.
Muizen van 8 tot 12 weken oud worden gebruikt. Begin met het schoonmaken van het oppervlak van de operatietafel met zeep en water. Neem vervolgens het oppervlak van de operatietafel af met desinfectiedoekjes of antiseptische doekjes. Chirurgische instrumenten moeten vóór de operatie in een autoclaaf worden gesteriliseerd.
Veeg de instrumenten vlak voor gebruik af met 70% ethanol en steriliseer deze opnieuw met een hot bead-sterilisator tussen individuele operaties door. Reinig een Hamilton-spuit van 100 µL die is voorzien van een naald van 30 gauge door herhaaldelijk absolute alcohol op te zuigen, gevolgd door gesteriliseerde fosfaatgebufferde zoutoplossing. Plaats een geanesthetiseerd dier in rugligging op een warmtekussen om behulp van een normale lichaamstemperatuur te behouden.
Houd een voldoende narcose-niveau in stand door de snuit van het dier in een tuit met vervluchtigd isofluraan te plaatsen. Verwijder vervolgens het haar van de buikwand met een trimmer. Gebruik een steriel wegwerpoperatiedoek om de anus af te dekken om fecale contaminatie tijdens de operatie te voorkomen.
Plaats een tweede chirurgisch laken over de onderbuik en creëer een chirurgisch venster. Steriliseer de operatieve plaats door herhaaldelijk Betadine en alcohol aan te brengen, waarbij een dissectiemicroscoop voor vergroting wordt gebruikt. Maak met een schaar een midline incisie in de onderbuik.
Oefen lichte druk uit op de buik om de blaas bloot te leggen. Omdat de blaas gewoonlijk gedeeltelijk of volledig gevuld is, zal druk op de buik bij voorkeur andere organen opzij duwen, waardoor de blaas via de incisie naar buiten kan komen. Als de blaas vol is, oefen dan lichte neerwaartse druk uit op de koepel om deze gedeeltelijk te decomprimeren.
Vul de steriele Hamilton-spuit met 50 µL van de monsteroplossing. Steek de naaldpunt met de schuine zijde naar boven in de wand van de blaas en injecteer de monsteroplossing. Een succesvolle injectie wordt gekenmerkt door een goed gelokaliseerde bleb die geen vloeistof lekt en een stabiele grootte behoudt.
Sluit na de injectie de incisie met wondklemmen. Laat het dier herstellen op een warmtepad. Deze techniek kan in 10 tot 15 minuten worden voltooid als deze correct wordt uitgevoerd.
Het succes kan worden bevestigd via histologische analyse van de blaas op opeenvolgende tijdstippen na injectie.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel bespreekt een microchirurgische techniek voor het injecteren van cellen in de blaaswand van muizen, wat het onderzoek naar blaasstamcellen en kankerbiologie faciliteert. Deze methode maakt een nauwkeurige lokalisatie van de celimplantatie mogelijk, wat een significant voordeel is ten opzichte van traditionele technieken.
Injectie in de blaaswand van de muis maakt nauwkeurige orthotope modellering van de blaasbiologie mogelijk, wat mechanistische studies in stamcel-, gladspier- en kankeronderzoek ondersteunt. Deze techniek vergroot het voorspellende vertrouwen in ziekterelevante systemen door gerichte celtoediening en lokale weefselanalyse mogelijk te maken. De reproduceerbaarheid en anatomische specificiteit maken het tot een essentieel instrument voor vroege ontdekking en de ontwikkeling van preklinische modellen in onderzoekspijplijnen voor urologische aandoeningen.
Deze microsurgische injectiemethode past binnen het continuüm van ontdekking naar preklinisch onderzoek door hypothesegestuurde in vivo studies mogelijk te maken en bij te dragen aan de identificatie van lead-compounds in het onderzoek naar blaasziekten.