Badanie to zostało przeprowadzone zgodnie z zasadami etycznymi Deklaracji Helsińskiej oraz instytucjonalnymi regulacjami regulującymi badania na ludziach. Badanie przeprowadzono zgodnie z zasadami etycznymi Deklaracji Helsińskiej i zatwierdzono przez Komisję Etyczną Szpitala Ludowego Xingtai, Oddział Dermatologii (ID zatwierdzenia: 2021[029]). Wszyscy uczestnicy wyrazili pisemną świadomą zgodę przed udziałem.
Selekcja pacjentów
W ciągu 3 lat, od stycznia 2021 do grudnia 2023, od stycznia 2021 do grudnia 2023 roku przyjęto do szpitala 232 pacjentów z kliniczną diagnozą bielactwa. U wszystkich uczestników zdiagnozowano niesegmentalne bielactwo (typ uogólniony lub lokalny) i sklasyfikowano ich jako stabilne lub postępujące na podstawie braku lub obecności nowych zmian w ciągu 3 miesięcy przed wstąpieniem do programu. Czas trwania choroby i rozmieszczenie zmian zostały zarejestrowane na początku. Kryteria zapisu obejmowały osoby w wieku od 18 do 65 lat z białactwem stabilnym lub postępującym potwierdzonym przez dermatologów za pomocą badań klinicznych, oświetlenia lampy Wooda oraz dermoskopii. Kryteria wykluczenia to ciąża, laktacja, zaburzenia fotoalergiczne, ogólnoustrojowa choroba autoimmunologiczna, ciężka dysfunkcja wątroby lub nerek oraz wcześniejsze stosowanie ogólnoustrojowych kortykosteroidów, leków immunosupresyjnych lub fototerapii w ciągu 3 miesięcy. Wszystkie procedury były wykonywane pod ciągłym nadzorem etycznym, zapewniając pacjentowi komfort i bezpieczeństwo przez cały czas leczenia.
Przegląd badania i sposób leczenia
Ogólny przebieg badania, obejmujący rejestrację pacjentów, przydział grupowy, oceny kontrolne oraz analizę biomarkerów, został zilustrowany na Rysunku 1. Kwalifikujący się uczestnicy zostali przydzieleni w stosunku 1:1 do jednej z dwóch równoległych grup badawczych: grupy monoterapii laserem ekscimerowym 308 nm (sam laser ekscimerowy; n = 116) oraz grupy terapii skojarzonej (laser ekscymerowy 308 nm plus matrina ustna; n = 116). Przydział grupowy przeprowadzono za pomocą komputerowej losowej sekwencji przygotowanej przez niezależnego pracownika badawczego, który nie brał udziału w ocenie wyników; Zadania były umieszczane w sekwencyjnie numerowanych, zapieczętowanych kopertach i otwierane po zapisie w celu ustalenia przydziału leczenia. Przepływ pracy terapeutycznej składał się z trzech głównych faz: (1) oceny i dokumentacji wyjściowej, (2) 12 tygodni aktywnego leczenia zgodnie z wyznaczonym schematem oraz (3) oceny po leczeniu, w tym badań laboratoryjnych immunoglobulin w surowicy i cytokin zapalnych. Każdy pacjent otrzymał ustandaryzowany plan opieki, identyczne interwały obserwacyjne oraz jednolite procedury analizy laboratoryjnej. Zdjęcia kliniczne i ocenę VASI wykonali dermatolodzy nieświadomi przydziału leczenia. Wszystkie zabiegi wykonywano w sali fototerapii dermatologicznej Szpitala Ludowego w Xingtai w kontrolowanych warunkach otoczenia (temperatura pokoju 22–24 °C, wilgotność względna 40%–60%).
Przygotowanie obszaru leczenia
Przed każdą sesją laserową docelowe odbarwione obszary były delikatnie czyszczone sterylną solą fizjologiczną i osuszane gazą medyczną bez kłaczków. Zbadano skórę z uszkodzeniami, aby potwierdzić brak infekcji, wyrzucenia lub skorupy. Gdy podczas jednej wizyty leczyono więcej niż jedną zmianę, każda zmiana była przygotowywana i leczona kolejno. Zmiany przekraczające pojedyncze pole napromieniowania dzielono na sąsiednie pola napromieniowania, a otaczająca normalna skóra była osłonięta nieprzezroczystą folią blokującą UV dla każdego pola, aby zminimalizować niepotrzebne narażenie. Pacjentom zalecono unikanie środków miejscowych, fotouczulających kosmetyków lub perfum przez 24 godziny przed zabiegiem. Zarówno pacjent, jak i operator nosili okulary ochronne przez cały czas trwania zabiegu.
Procedura napromieniowania laserem ekscymerowym o średnicy 308 nm
Zastosowano monochromatyczny system laserowy z ksenonowo-chlorkiem (XeCl) o średnicy 308 nm. Wszystkie sesje laserowe były wykonywane przez dwóch wykwalifikowanych dermatologów według ustandaryzowanego protokołu, aby zapewnić stałą produkcję energii, odległość napromieniowania oraz powtarzalność. Wyjście urządzenia było weryfikowane za pomocą skalibrowanego miernika mocy UV przed każdym dniem zabiegu, a wszystkie systemy były cotygodniowo kalibrowane przez certyfikowanego technika, aby utrzymać margines błędu poniżej ±5%. Przed pierwszym napromieniowaniem minimalną dawkę rumienia (MED) dla każdego pacjenta określano poprzez stopniowe dawki (100–400 mJ/cm2) na małych obszarach testowych na wewnętrznej stronie przedramienia i ocenę reakcji rumieniaka po 24 godzinach; Wyniki były fotografowane i zapisywane w kartach pacjentów. Reprezentatywna dokumentacja MED oraz tabela dawkowo-dostosowująca dla sesji są dostępne w Tabeli Uzupełniającej 1. MED został zdefiniowany jako najniższa dawka testowa, która powoduje wyraźnie widoczny, jednolity rumień po 24 godzinach. Początkowa dawka leczenia była ustalana na poziomie 80%–90% indywidualnego MED, a kolejne zmiany dawki stosowano według wcześniej zdefiniowanego algorytmu opartego na 24-godzinnej reakcji rumienia przed sesją (zwiększenie o 10%–20% przy nieobecnym lub łagodnym rumieniu, utrzymanie tej samej dawki przy umiarkowanym rumianie i zmniejszenie o 10%–20% przy pęcherzach lub silnym bólu). Początkowa dawka terapeutyczna została ustalona na 150–250 mJ/cm² (około 80%–90% indywidualnego MED). Każda sesja rozpoczynała się od wygodnego siedzenia pacjenta na regulowanym krześle. Rękopis laserowy trzymano prostopadle (90°) do skóry w odległości 10–15 cm, a pola promieniowania okrągłego lub prostokątnego były wyrównane tak, aby całkowicie pokryć odbarwione obszary przy minimalnym nakładaniu się. Napromieniowanie trwało 1–3 sekundy na jedno pole ekspozycji, w zależności od płynności. Dawki były następnie zwiększane o 10%–20% na sesję zgodnie z wcześniejszą odpowiedzią rumieniacą; jeśli wystąpiła umiarkowana rukieć, poprzednia dawka była utrzymywana, natomiast pęcherze lub ból wymagały zmniejszenia o 10%–20%. Maksymalna dawka nie przekraczała 2 000 mJ/cm2. Każda sesja obejmowała wszystkie widoczne zmiany i trwała 10–20 minut, w zależności od zakresu. Zabiegi wykonywano 2 razy w tygodniu, z co najmniej 72 godzinami przerwy między sesjami w łącznym okresie 12 tygodni (24 sesje). Po napromieniowaniu nałożono cienką warstwę sterylnego żelu na bazie aloesu, aby złagodzić miejscowe runienie. Pacjentom zalecono unikanie ekspozycji na słońce przez 48 godzin oraz stosowanie kremu z filtrem o szerokim spektrum (SPF >30) przez cały czas trwania leczenia. Zmiany o >50% repigmentacji utrzymywały się przy tych samych parametrach aż do osiągnięcia stabilnej pigmentacji.
Administracja matryn ustnych
W grupie kombinowanej przygotowano jałowy ekstrakt wodny korzeni Sophora flavescens zgodnie z Chińską Farmakopeją (wydanie 2020)30 i ustandaryzowano do stężenia 5 mg/mL o czystości ≥98%, zweryfikowanej za pomocą wysokowydajnej chromatografii cieczowej (HPLC). Roztwór przechowywano w temperaturze 4 °C w bursztynowych butelkach, aby zapobiec fotodegradacji. Losowe testy partiowe potwierdziły stężenie alkaloidów (5± 0,3 mg/mL) oraz bezpłodność mikroorganizmów. Każdy pacjent otrzymywał roztwór matrynowy doustnie w dawce 0,3 g (60 mL) dwa razy dziennie przez 12 tygodni, synchronizując się z harmonogramem leczenia laserowego. Dawka została dobrana na podstawie wcześniejszych danych farmakologicznych wykazujących skuteczną immunomodulację z korzystnym profilem bezpieczeństwa w przewlekłych dermatozach zapalnych31,32. Pacjenci zostali zainstruowani, aby przyjmować roztwór 30 minut po posiłkach, aby zminimalizować dyskomfort żołądkowo-jelitowy oraz unikać alkoholu, mocnej herbaty i ostrych potraw podczas terapii, aby zmniejszyć obciążenie wątrobą. Łagodne nudności lub zmęczenie łagodzono podaniem niewielkiej ilości ciepłej wody. Przestrzeganie leczenia oceniano za pomocą dziennika leków oraz weryfikacji powrotu butelki podczas każdej wizyty kontrolnej. Bezpieczeństwo oceniano podczas każdej wizyty poprzez uporządkowane badania objawów i dokumentację działań niepożądanych, w tym dyskomfortu przewodu pokarmowego, zmęczenia oraz wszelkich oznak wskazujących na nietolerancję wątroby. W okresie obserwacji nie dopuszczono dodatkowych leków ogólnoustrojowych, miejscowych kortykosteroidów ani immunosupresantów, aby zapobiec zakłócającym efektom.
Ocena odpowiedzi klinicznej
Zmiany pigmentacji oceniono na początku oraz w tygodniach 4, 8 i 12 przez dwóch doświadczonych dermatologów, którzy nie znali informacji o leczeniu. Standaryzowane zdjęcia cyfrowe wykonano przy identycznym oświetleniu i ustawieniach aparatu (odległość 60 cm, ekspozycja 1/60 s, ISO 200). Stopień repigmentacji został zmierzony za pomocą Wskaźnika Oceny Obszaru Bielactwa (VASI). Zmiany zmiany zostały dodatkowo ocenione na cztery kategorie: Doskonałe (≥75% repigmentacja), Dobre (50%–74%), Umiarkowane (25%–49%), Słabe (<25%). Pacjenci wypełnili także 10-punktową skalę wizualnych analogów (VAS) dla satysfakcji i złagodzenia objawów. Podczas każdej wizyty dokumentowano niepożądane zdarzenia, takie jak rumieniat, pieczenie, świąd, pęcherze i przebarwienia.
Pobieranie próbek surowicy
Do analizy biomarkerów pobierano krew obwodową na czo (5 mL) od każdego pacjenta na początku badania oraz pod koniec 12. tygodnia za pomocą probówek rozdzielających surowicę. Próbki pozostawiano do zakrzepnięcia przez 30 minut w temperaturze pokojowej i wirowano w 800 x g przez 10 minut w temperaturze 4 °C. Surowica supernatantowa była alicytatowana do kriovialów o pojemności 0,5 mL i przechowywana w temperaturze −80 °C do czasu analizy. Wszystkie próbki zostały przetworzone w ciągu 2 godzin od pobrania, aby zminimalizować degradację cytokin.
Ilościowa identyfikacja immunoglobuliny w surowicy
Stężenia IgG, IgA i IgM w surowicy zostały określone za pomocą zautomatyzowanej immunonefelometrii zgodnie z instrukcjami producenta. Krzywe kalibracyjne przygotowywano przy użyciu seryjnego rozcieńczania standardów referencyjnych. Każdy test zawierał surowicę kontrolną jakości w wysokich i niskich stężeniach. Pomiary wyrażano w g/L i powtarzano 2 razy, aby zapewnić zmienność wewnątrz testu < 5%. Precyzja i kalibracja instrumentu były weryfikowane codziennie za pomocą standardów sterowania możliwych do śledzenia. Wyniki były rejestrowane elektronicznie i przeglądane przez dwóch niezależnych techników, którzy nie znali informacji o pacjencie.
Pomiar cytokin zapalnych
Profilowanie cytokinowe obejmowało IFN-γ, TNF-α, IL-1β, IL-6, IL-17 i IL-10, ilościowo zidentyfikowane za pomocą platformy multiplex enzymatycznie powiązanej z immunosorbentem (ELISA). Przygotowanie odczynników przebiegało według standardowego protokołu producenta. Krótko do każdej dołki pokrytej przeciwciałami dodano 100 μL rozcieńczonej surowicy i inkubowano przez 2 godziny w temperaturze 37 °C. Po przemyciu solą fizjologiczną z buforem fosforanowym zawierającym 0,05% Tween-20 (PBST) dodano 100 μL biotynowo-indykowanego przeciwciała wykrywającego i inkubowano przez 1 godzinę. Następnie studnie inkubowano z peroksydazą streptawidyny-chrzanu przez 30 minut, a następnie wywoływano kolor na podłożu tetrametylobenzydynowym (TMB) przez 10 minut w ciemności. Reakcję zatrzymano przy użyciu 50 μL kwasu siarkowego o stężeniu 2 mol/L, a absorpcję zmierzono na poziomie 450 nm za pomocą czytnika mikropłyt. Krzywe standardowe były generowane z szeregowych rozcieńczeń rekombinowanych cytokin, a stężenia wyrażano jako pg/mL. Wszystkie próbki były mierzone w duplikacie. Aby zapewnić powtarzalność, współczynnik zmienności między testami (CV) utrzymywano poniżej 10%. Puste dołki zawierały bufor testowy bez surowicy, a doły kontrolne zawierały matrycę wolną od cytokin przetwarzaną identycznie jak próbki i równoważną standardowi 0 pg/mL, aby potwierdzić specyficzność testu. Wszelkie próbki hemolizowane lub lipemiczne zostały wykluczone z ostatecznej analizy.
Analiza statystyczna
Dane były wprowadzane do dedykowanej elektronicznej bazy danych i weryfikowane pod kątem dokładności przez dwóch niezależnych menedżerów danych. Wielkość próby oszacowano na podstawie oczekiwanego rozmiaru efektu (d Cohena = 0,5) z α = 0,05 i mocą (1–β) = 0,8, co dało minimum 100 uczestników na grupę. Aby kontrolować wielokrotne porównania cytokin, zastosowano korektę Bonferroniego tam, gdzie było to stosowne. Zastosowano wielowymiarową regresję liniową tam, gdzie było to konieczne, aby uwzględnić potencjalne czynniki zakłócające, takie jak wiek, płeć, czas trwania choroby oraz obszar zmiany wyjściowej. Rozkład normalny zmiennych ciągłych został zweryfikowany za pomocą testu Shapiro–Wilka. Statystyki opisowe przedstawiano jako średnią ± odchylenia standardowego (SD) dla danych rozkładu normalnego lub jako mediana (zakres interkwartylowy, IQR) dla danych skośnych. Zmiany przed i po leczeniu analizowano za pomocą testów t w parach, natomiast porównania między grupami analizowano za pomocą testów t z niezależnej próby lub testów Mann–Whitney U, w zależności od stosowności. Dane kategoryczne porównano z chi-kwadratem lub testem dokładnym Fishera. Korelacje między poziomami cytokin, immunoglobulinami a poprawą pigmentacji oceniano za pomocą współczynnika korelacji Pearsona. Wszystkie analizy przeprowadzono z użyciem SPSS v26.0 (RRID: SCR_002865), a statystycznie uznano dwustronne p < 0,05.