-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuroscience
Indukowanie tworzenia się skrzepów krwi w mózgu myszy za pomocą światłoczułego barwnika
 Indukowanie tworzenia się skrzepów krwi w mózgu myszy za pomocą światłoczułego barwnika
Encyclopedia of Experiments
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
Encyclopedia of Experiments Neuroscience
Inducing Blood Clot Formation in the Mouse Brain Using a Photosensitive Dye

Indukowanie tworzenia się skrzepów krwi w mózgu myszy za pomocą światłoczułego barwnika

Protocol
331 Views
03:31 min
July 8, 2025
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Transcript

Weźmy znieczuloną mysz z oknem czaszkowym z cienką warstwą czaszki, aby umożliwić wizualizację mózgu przy minimalnej inwazyjności.

Pod mikroskopem zidentyfikuj tętnicę na podstawie przepływu krwi z większych do mniejszych naczyń.

Wstrzyknij światłoczuły barwnik do żyły ogonowej, która dociera do mózgu poprzez krążenie.

Wzbudz barwnik światłem, aby wyemitować fluorescencję, umożliwiając monitorowanie przepływu krwi.

Zwiększ natężenie światła, aby wywołać tworzenie się skrzepów, znane jako zakrzepica.

Barwnik pochłania światło o dużej intensywności, reaguje z tlenem i wytwarza reaktywne formy tlenu, które uszkadzają komórki śródbłonka.

Uszkodzone komórki uwalniają mediatory, które powodują przyleganie płytek krwi, inicjując tworzenie się skrzepów. Fibryna we krwi pomaga uwięzić dodatkowe komórki krwi, tworząc skrzep

.

Skrzep, wykryty przez nagromadzenie poprzedzającego go barwnika, utrudnia przepływ krwi do mózgu.

Zamknij nacięcie, zastosuj antybiotyki, aby zapobiec infekcji i podaj leki przeciwbólowe, aby zmniejszyć ból i umożliwić powrót do zdrowia.

Po ustawieniu myszy pod mikroskopem przygotuj świeżą różę bengalską w sztucznym płynie mózgowo-rdzeniowym w ilości 20 miligramów na mililitr. Przefiltruj, wysterylizuj mieszaninę i wyrzuć ją po zakończeniu eksperymentu. Musi być zawsze używany na świeżo.

Teraz, skanując okno czaszki za pomocą lasera o długości fali 561 nanometrów, wstrzyknij 0,1 mieszaniny przez żyłę ogonową. W ciągu 5 sekund barwnik powinien być łatwo widoczny w unaczynieniu czaszki. Po wstrzyknięciu wystarczającej ilości barwnika wybierz naczynie o wielkości od 40 do 80 mikronów do zakrzepicy. Tętnice można odróżnić od żył na podstawie przepływu większych do mniejszych naczyń i odwrotnie.

Teraz przygotuj się do laserowego naczynia na żądanie. Wydłuż czas przebywania do tego, co jest odpowiednie dla używanego systemu. Zwiększ moc lasera do 100% i ustaw kolekcję obrazów na jedną klatkę na sekundę z maksymalną prędkością skanowania. Skanuj mysz, aż utworzy się skrzep zszywki. Zwykle zajmuje to około pięciu minut. Idealnie byłoby, gdyby skanowano tylko jedno pole widzenia, aby utworzyć skrzep. Wybierz odpowiedni cel. Jeśli nie tworzy się skrzep, spróbuj użyć większej ilości barwnika.

Po utworzeniu się skrzepu usuń mysz z obszaru obrazowania i przygotuj się do zakończenia operacji pod mikroskopem preparacyjnym. Najpierw ostrożnie zdejmij pierścień, sprawdzając, czy nie ma krwawienia. Jeśli wystąpi jakiekolwiek krwawienie, eksperyment musi zostać przerwany.

Następnie za pomocą szwu 6-0 zamknij nacięcie. Następnie nałóż antybiotyk na linię nacięcia. W celu złagodzenia bólu należy podawać podskórne wstrzyknięcia buprenexu przez trzy dni. Po podaniu pierwszego wstrzyknięcia buprenexu należy umieścić mysz w komorze rekonwalescencji i monitorować ją do momentu rozpoczęcia chodzenia. Następnie włóż go z powrotem do domowej klatki, którą należy wyczyścić. Obrazowanie podłużne jest szczegółowo opisane w protokole tekstowym.

Related Videos

Wzbogacony fibryną i wrażliwy na tPA model udaru fototrombotycznego

09:42

Wzbogacony fibryną i wrażliwy na tPA model udaru fototrombotycznego

Related Videos

3.2K Views

Modelowanie udaru u myszy: ogniskowe zmiany korowe spowodowane fotozakrzepicą

06:07

Modelowanie udaru u myszy: ogniskowe zmiany korowe spowodowane fotozakrzepicą

Related Videos

7.3K Views

Terapia fotodynamiczna za pośrednictwem róży bengalskiej w celu zahamowania Candida albicans

04:48

Terapia fotodynamiczna za pośrednictwem róży bengalskiej w celu zahamowania Candida albicans

Related Videos

3.5K Views

Wizualizacja przepływu krwi w mózgu podczas niedokrwienia u myszy za pomocą znacznika fluorescencyjnego

01:16

Wizualizacja przepływu krwi w mózgu podczas niedokrwienia u myszy za pomocą znacznika fluorescencyjnego

Related Videos

132 Views

Modelowanie udaru fotozakrzepowego w modelu mysim: technika oświetlenia laserowego przez czaszkę myszy po podaniu barwnika światłoczułego w celu wywołania fotozakrzepicy

04:09

Modelowanie udaru fotozakrzepowego w modelu mysim: technika oświetlenia laserowego przez czaszkę myszy po podaniu barwnika światłoczułego w celu wywołania fotozakrzepicy

Related Videos

3K Views

Wizualizacja skrzepliny mózgowej u myszy za pomocą obrazowania metodą mikrotomografii komputerowej

02:05

Wizualizacja skrzepliny mózgowej u myszy za pomocą obrazowania metodą mikrotomografii komputerowej

Related Videos

320 Views

Wizualizacja zakrzepów mózgowych myszy za pomocą obrazowania fluorescencyjnego w bliskiej podczerwieni

01:45

Wizualizacja zakrzepów mózgowych myszy za pomocą obrazowania fluorescencyjnego w bliskiej podczerwieni

Related Videos

312 Views

Fotozakrzepowe niedokrwienie: minimalnie inwazyjny i powtarzalny fotochemiczny model zmiany korowej do badań nad udarem u myszy

08:40

Fotozakrzepowe niedokrwienie: minimalnie inwazyjny i powtarzalny fotochemiczny model zmiany korowej do badań nad udarem u myszy

Related Videos

36.4K Views

Fotozakrzepica różana bengalska za pomocą konfokalnego obrazowania optycznego in vivo: model udaru pojedynczego naczynia

08:07

Fotozakrzepica różana bengalska za pomocą konfokalnego obrazowania optycznego in vivo: model udaru pojedynczego naczynia

Related Videos

15.6K Views

Ogniskowe niedokrwienie wywołane fotozakrzepicą jako model uszkodzenia rdzenia kręgowego u myszy

08:27

Ogniskowe niedokrwienie wywołane fotozakrzepicą jako model uszkodzenia rdzenia kręgowego u myszy

Related Videos

14.5K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code