-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Behavior
Wywoływanie padaczki pourazowej w mysim modelu powtarzalnego rozlanego urazowego uszkodzenia mózgu
Wywoływanie padaczki pourazowej w mysim modelu powtarzalnego rozlanego urazowego uszkodzenia mózgu
JoVE Journal
Behavior
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Behavior
Inducing Post-Traumatic Epilepsy in a Mouse Model of Repetitive Diffuse Traumatic Brain Injury

Wywoływanie padaczki pourazowej w mysim modelu powtarzalnego rozlanego urazowego uszkodzenia mózgu

Full Text
11,188 Views
07:07 min
February 10, 2020

DOI: 10.3791/60360-v

Oleksii Shandra1, Stefanie Robel1,2,3

1Fralin Biomedical Research Institute at Virginia Tech Carilion, 2School of Neuroscience,Virginia Tech, 3Department of Biological Sciences,Virginia Tech

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Ten systematyczny protokół opisuje nowy zwierzęcy model padaczki pourazowej po powtarzającym się łagodnym urazowym uszkodzeniu mózgu. Pierwsza część szczegółowo opisuje etapy indukcji urazowego uszkodzenia mózgu przy użyciu zmodyfikowanego modelu spadku masy ciała. Druga część zawiera instrukcje dotyczące podejścia chirurgicznego dla jedno- i wielokanałowych systemów akwizycji danych elektroencefalograficznych.

Nasz protokół jest pierwszym, który szczegółowo opisuje mysi model padaczki pourazowej wywołanej łagodnym urazowym uszkodzeniem mózgu. Zastosowanie łagodnego modelu rozlanego urazowego uszkodzenia mózgu naśladuje ważny aspekt patologii urazowego uszkodzenia mózgu u człowieka, który prawie zawsze ma składnik rozproszony. Aby opracować biomarkery i metody leczenia, potrzebne są badania z wykorzystaniem modeli, które odpowiednio odtwarzają aspekty patologii człowieka.

Nasz model urazowego uszkodzenia mózgu ma również potencjał, aby zapewnić wgląd w mechanizmy, które powodują upośledzenie funkcji mózgu po łagodnym urazowym uszkodzeniu mózgu lub wstrząśnieniu mózgu. Po potwierdzeniu braku reakcji na odruch bólowy umieść mysz na podkładce piankowej i umieść głowę myszy pod rurką zrzutu ciężaru. Umieść płaski krążek ze stali nierdzewnej o średnicy 1.3 centymetra i grubości jednego milimetra i wadze 880 miligramów na środku głowy zwierzęcia między oczami a uszami.

Usuń szpilkę w rurze zrzutu ciężarka, aby zwolnić 100-gramowy pręt z wysokości 50 centymetrów. Aby wywołać pozorowane obrażenia u myszy kontrolnych, usuń pręt obciążnika z rurki, aby zapobiec przypadkowemu zwolnieniu szpilki podczas spadku wagi. Po indukcji utraty masy ciała połóż zwierzę na poduszce grzewczej pokrytej sterylnym ręcznikiem chłonnym wyściełanym poliamidem z monitorowaniem aż do pełnego leżenia.

Następnie umieść mysz w czystej klatce, która została podgrzana na poduszce grzewczej z żelem regeneracyjnym i kilkoma zwilżonymi kawałkami karmy na 45 minut. Aby przygotować pole operacyjne do wszczepienia elektrody EEG, umieść czujnik temperatury na podkładce i umieść znieczuloną mysz z uszkodzonym mózgiem na sterylnej serwety na poduszce grzewczej na aparacie stereotaktycznym. Po utrwaleniu głowy za pomocą nauszników nałóż maść nawilżającą na oczy zwierzęcia i użyj kremu do depilacji, aby usunąć włosy ze skóry głowy.

Zdezynfekuj odsłoniętą skórę trzema 20-sekundowymi naprzemiennymi wacikami z powidonu, jodem, chirurgicznym roztworem antyseptycznym i 70% etanolem okrężnymi ruchami. Po usunięciu skóry głowy nałóż małe hemostatyki na otwarte granice skóry, aby rozszerzyć odsłonięty obszar. Następnie za pomocą skalpela delikatnie usuń okostną i przetrzyj czaszkę wodą utlenioną.

Gdy czaszka zostanie oczyszczona z tkanki i zacznie mieć białawy wygląd, osusz kość sterylną gazą lub wacikiem. Do implantacji elektrod użyj wiertła szybkoobrotowego z okrągłym wiertłem stalowym o średnicy 0,5 milimetra z prędkością od 5 000 do 6 000 obrotów na minutę, aby utworzyć sześć otworów na zadziory dla elektrod śrubowych. Po wywierceniu wszystkich otworów umieść sześć elektrod śrubowych w otworach na zadziory i wymieszaj pół miarki proszku cementu dentystycznego z kilkoma kroplami rozpuszczalnika.

Użyj szpatułki, aby mieszać, aż mieszanka cementu dentystycznego będzie lepka, ale plastyczna i wystarczająco sztywna, aby mogła się odpowiednio zagęścić po umieszczeniu na czaszce zwierzęcia. Nałóż cement na całą odsłoniętą powierzchnię czaszki i każdą elektrodę. Po jednej do dwóch minut włącz lutownicę i umieść trzy mocowania głowicy EEG w ramieniu uchwytu stereotaktycznego.

Umieść mocowanie głowicy nad czaszką tak, aby sześć pozycji przewodów drutu odpowiadało położeniu przewodu każdego elektrody śrubowej. Opuść urządzenie tak, aby jego brzuszna część spoczywała na cemencie dentystycznym. Skręć drut każdego przewodu z każdej z elektrod śrubowych z odpowiednim przewodem drutu mocowania głowicy, każdą skręconą parę przewodów, aby zapewnić prawidłowe przewodzenie sygnału i użyj nożyczek, aby przyciąć nadmiar drutu.

Zegnij każdą przylutowaną parę przewodów wokół mocowania głowicy. Gdy wszystkie pary zostaną zgięte, przykryj cały drut świeżym cementem dentystycznym, pozostawiając odsłoniętą tylko czarną część mocowania głowy. Uwolnij hemostatyki przytrzymujące płaty skóry i nałóż środek antyseptyczny z chlorheksydyną na obszar wokół implantu, aby uniknąć infekcji.

Następnie przenieś zwierzę z aparatu na wagę, aby zmierzyć wagę zwierzęcia jako odniesienie do przyszłego monitorowania przed umieszczeniem zwierzęcia w czystej klatce na ciepłej poduszce grzewczej z monitorowaniem, żelem regeneracyjnym i kilkoma zwilżonymi kawałkami karmy. Na tym rysunku pokazano spontaniczny napad padaczkowy u myszy 97 dni po wielokrotnym spadku masy ciała urazowym uszkodzeniu mózgu zarejestrowanym za pomocą trzech mocowań EEG na głowę skonfigurowanych tak, jak pokazano w tym protokole wideo. Pokazano tu spontaniczny, niekonwulsyjny napad elektrograficzny zarejestrowany u myszy 65 dni po powtarzającym się urazie mózgu spowodowanym spadkiem wagi.

Na tym rysunku spontaniczny napad padaczkowy u myszy 23 dni po wielokrotnym urazie mózgu spowodowanym spadkiem masy ciała zarejestrowano za pomocą jednego montażu EEG na głowie. Moc spektralna typowego napadu wskazuje, że największa gęstość mieści się w zakresie od 10 do 40 Hz ze szczytem na 15 Hz. Protokół ten przedstawia ramy czasowe wystąpienia napadów u zwierząt po powtarzającym się spadku masy ciała, urazowym uszkodzeniu mózgu, demonstrując częstość występowania napadów u niektórych zwierząt i podkreślając znaczenie uzyskiwania ciągłych, a nie przerywanych nagrań.

Właściwe umieszczenie stalowego dysku, staranne wszczepienie elektrod śrubowych i staranne przewodów mają kluczowe znaczenie dla udanego długoterminowego eksperymentu. Po monitorowaniu EEG zwierzęta z uszkodzeniem mózgu, u których rozwijają się drgawki, można oddzielić od tych, u których nie występują, w celu późniejszej analizy ich różnic komórkowych, molekularnych i fizjologicznych. Stratyfikacja zwierząt z padaczką pourazową od tych, które doznały urazowego uszkodzenia mózgu, ale nie rozwijają napadów, ma kluczowe znaczenie dla opracowania interwencji i biomarkerów.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Padaczka pourazowa model mysi urazowe uszkodzenie mózgu łagodne urazowe uszkodzenie mózgu biomarkery wstrząs mózgu implantacja elektrody EEG protokół chirurgiczny upośledzenie funkcji mózgu indukcja spadku masy ciała urazy pozorowane odzyskiwanie poduszki grzewczej procedury sterylności przygotowanie czaszki

Related Videos

Ustalenie modelu napadów padaczkowych indukowanych pentylenotetrazolem u myszy

02:15

Ustalenie modelu napadów padaczkowych indukowanych pentylenotetrazolem u myszy

Related Videos

882 Views

Technika wywoływania napadów pourazowych w modelu mysim za pomocą urazu urazowego spowodowanego spadkiem masy ciała

01:47

Technika wywoływania napadów pourazowych w modelu mysim za pomocą urazu urazowego spowodowanego spadkiem masy ciała

Related Videos

441 Views

Modelowanie powtarzających się wstrząsowych urazów głowy w modelu mysim

04:13

Modelowanie powtarzających się wstrząsowych urazów głowy w modelu mysim

Related Videos

494 Views

Indukcja łagodnego urazowego uszkodzenia mózgu w modelu mysim

04:52

Indukcja łagodnego urazowego uszkodzenia mózgu w modelu mysim

Related Videos

535 Views

Model powtarzającego się wstrząsu głowy u myszy

05:42

Model powtarzającego się wstrząsu głowy u myszy

Related Videos

12.4K Views

Mysi model pojedynczego i powtarzalnego łagodnego urazowego uszkodzenia mózgu

04:19

Mysi model pojedynczego i powtarzalnego łagodnego urazowego uszkodzenia mózgu

Related Videos

11.6K Views

Model rozpałki indukowany pentylenotetrazolem

07:06

Model rozpałki indukowany pentylenotetrazolem

Related Videos

34.7K Views

Nowatorski i translacyjny szczurzy model wstrząsu mózgu łączący siłę i rotację z mikrodializą mózgową in vivo

08:45

Nowatorski i translacyjny szczurzy model wstrząsu mózgu łączący siłę i rotację z mikrodializą mózgową in vivo

Related Videos

9.2K Views

Wykorzystanie bezprzewodowego systemu wideo-EEG do monitorowania wyładowań padaczkowych po bocznym urazowym uszkodzeniu mózgu wywołanym płynem

09:16

Wykorzystanie bezprzewodowego systemu wideo-EEG do monitorowania wyładowań padaczkowych po bocznym urazowym uszkodzeniu mózgu wywołanym płynem

Related Videos

26.3K Views

Przygotowanie i wszczepienie elektrod dla elektrycznie zapalających myszy VGAT-Cre w celu wygenerowania modelu padaczki skroniowej

09:29

Przygotowanie i wszczepienie elektrod dla elektrycznie zapalających myszy VGAT-Cre w celu wygenerowania modelu padaczki skroniowej

Related Videos

2.8K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code