2 de junho de 2016
Este manuscrito descreve uma técnica de modelagem de infarto capsular. Aqui utilizamos uma técnica photothrombotic modificado com baixa intensidade de luz após o mapeamento de destino pré-cirurgia. Usando esta técnica, criamos um modelo de enfarte capsular circunscrito com comprometimento motor persistente.
O objetivo geral desta técnica é criar um modelo de infarto capsular circunscrito com comprometimento motor persistente, utilizando a técnica fototrombótica. Antes de criar o infarto capsular, é necessário identificar a área do membro anterior na cápsula interna, introduzindo um vírus adeno-associado que expressa GFP na área do córtex motor do membro anterior. Comece posicionando uma rata anestesiada em um estereotáxico.
Em seguida, rape a cabeça da rata e esterilize o couro cabeludo utilizando álcool 70% e solução de poviodine e iodo. Injete cloreto de lidocaína 2% sob o couro cabeludo na região da incisão planejada para reduzir a dor intraoperatória. Aplique pomada oftálmica para prevenir o ressecamento dos olhos.
E coloque um campo estéril sobre o animal. Após fazer uma incisão mediana de dois centímetros no couro cabeludo, posicione o braço estereotáxico para identificar a área do membro anterior da córtex motora de acordo com as coordenadas estereotáxicas. Faça um orifício de entrada nesta posição.
Posicione a agulha sobre o orifício perfurado e abaixe a agulha um milímetro através da dura-máter até o córtex motor. Utilize uma microbomba de alta precisão para injetar lentamente um microlitro do vírus. Mantenha a agulha no local por mais 10 minutos para prevenir o refluxo ao longo do trajeto da agulha.
Após decorridos 10 minutos, retire lentamente a agulha. Após limpar o local operatório com irrigação de soro fisiológico, feche a ferida com sutura de nylon 3-0. Em seguida, solte o rato do estereotáxico e transfira-o para uma câmara de recuperação para monitoramento.
Administre analgésico para controle da dor pós-operatória. Após duas a três semanas, sacrifique a rata de acordo com métodos aprovados e seccione o cérebro crioprotegido. Após coloração para GFP, observe os axônios transduzidos pelo AAV-GFP na cápsula interna com um microscópio de fluorescência.
Compare os locais dos axônios transduzidos observados na imagem fluorescente com o atlas do cérebro de rato para determinar com precisão as coordenadas estereotáxicas dos axônios transduzidos. Para preparar a interface neural óptica, use primeiro uma broca de corte para cortar aproximadamente quatro centímetros de uma agulha espinhal 27 gauge com estilo dentro. Em seguida, retire 10 centímetros da bainha de uma fibra óptica.
Insira o pedaço sem revestimento da fibra óptica em um tubo metálico. E prenda o tubo ao redor da fibra. Em seguida, use um prensador para fixar a metade inferior do tubo metálico duas vezes.
O tubo metálico preenche o espaço entre a fibra óptica e o hub da agulha espinhal. Aplique epóxi curável por calor na fibra óptica. Aplique epóxi adicional no espaço vazio do hub.
E insira a fibra óptica na agulha espinal. Cure a resina epóxi por 20 minutos a 100 graus Celsius para fixação estável. Após a cura, corte a fibra óptica que sobressai da agulha espinal e, em seguida, use folhas de lixa diamantada para polir a fibra óptica na ponta da agulha espinal.
Por fim, conecte a parte do conector FCPC do cabo de conexão ao acoplador do sistema a laser verde. Em seguida, utilize um medidor digital de potência e energia óptica para medir a intensidade da luz na ponta da fibra óptica, garantindo a emissão precisa da luz. Coloque uma almofada aquecida sob o corpo do animal para manter a temperatura corporal em 37,5 graus Celsius durante a cirurgia.
Comece anestesiando e preparando a rata para cirurgia como antes. Após fazer uma incisão mediana de dois centímetros, ajuste a altura do prendedor nasal até que o Bregma e o Lambda estejam alinhados no mesmo nível. O alinhamento correto é essencial para direcionar com precisão a cápsula interna.
Posicione o braço estereotáxico para localizar o sítio para fototrombose. Em seguida, faça um furo de dois milímetros nesse ponto. Depois, pola e limpe a ponta da fibra óptica do ONI, então fixe-a ao suporte estereotáxico sem dobrar.
Verifique a ponta do ONI para garantir que está limpa e intacta. Meça a intensidade do laser na ponta da fibra óptica antes da inserção da interface óptica no local-alvo do cérebro do rato. Ajuste a intensidade do laser para 3,5 miliwatts na ponta da fibra óptica.
Agora, posicione o ONI na área-alvo da cápsula interna utilizando a coordenada dorsoventral determinada na primeira seção do protocolo. Em seguida, injete dois miligramas por quilograma de Rubi de Rosa através da veia da cauda e inicie um cronômetro regressivo ajustado para um minuto. Quando o minuto terminar, ligue o laser verde de 532 nanômetros por 90 segundos para criar o infarto.
Após a irradiação, remova cuidadosamente o ONI do cérebro. Após a limpeza do local operatório, feche o ferimento com sutura de náilon 3-0. Em seguida, retire o rato do estereotáxico e transfira-o para uma câmara de recuperação.
Esta imagem mostra a extensão das lesões de infarto sob diferentes intensidades de luz laser, variando de dois a cinco miliwatts, duas semanas após a lesão fototrombótica. As setas indicam a lesão de infarto. A intensidade da luz óptica é considerada estar entre três e quatro miliwatts nesta configuração experimental.
As próximas duas imagens mostram a aparência microscópica do infarto capsular três semanas após a foto-trombose. Nesta seção coronal do cérebro de rato, as cabeças de seta indicam o trajeto da agulha contendo a fibra óptica no tálamo e até a cápsula interna. Essas seções seriadas e sobrepostas coradas mostram a extensão da lesão por infarto na cápsula interna.
As setas indicam a lesão por infarto.
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Este manuscrito descreve uma técnica de modelagem de infarto capsular utilizando uma técnica foto-trombótica modificada. Essa abordagem permite a criação de um modelo de infarto capsular circunscrito que resulta em déficit motor persistente.
Essa técnica fototrombótica permite modelar com precisão o acidente vascular cerebral na substância branca, direcionando-se seletivamente à cápsula interna enquanto preserva a substância cinzenta adjacente. O infarto capsular circunscrito resultante produz déficits motores persistentes, fornecendo um sistema relevante para a doença, útil para a desmistificação mecanicista de candidatos a neuroterapias. O modelo apoia a validação de alvos e a avaliação pré-clínica de intervenções voltadas à patologia da substância branca, abordando uma lacuna crítica na pesquisa sobre acidente vascular cerebral.
O método integra-se ao continuum de descoberta, desde a identificação do alvo até os testes de eficácia pré-clínica, permitindo o aperfeiçoamento iterativo de estratégias neuroterapêuticas.