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Modelo de transplante de hindlimb heterotópico parcial em ratos
Modelo de transplante de hindlimb heterotópico parcial em ratos
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JoVE Journal Immunology and Infection
Partial Heterotopic Hindlimb Transplantation Model in Rats

Modelo de transplante de hindlimb heterotópico parcial em ratos

Full Text
3,217 Views
06:19 min
June 9, 2021

DOI: 10.3791/62586-v

Marion Goutard1,2,3, Mark A. Randolph1,2,3, Corentin B. Taveau1,2,3,4, Elise Lupon1,2,3, Laurent Lantieri4, Korkut Uygun1,2,3, Curtis L. Cetrulo Jr.*1,2,3, Alexandre G. Lellouch*1,2,3,4

1Division of Plastic and Reconstructive Surgery,Massachusetts General Hospital, Harvard Medical School, 2Vascularized Composite Allotransplantation Laboratory, Center for Transplantation Sciences,Massachusetts General Hospital, Harvard Medical School, 3Shriners Hospital for Children, 4Service de Chirurgie Plastique, Hôpital Européen Georges Pompidou, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris (APHP),Université de Paris

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Este artigo apresenta um protocolo de transplante de retalho osteomyocutâneo heterotópico em ratos e seus resultados potenciais no acompanhamento a médio prazo.

Apresentamos um modelo cirúrgico confiável e reprodutível de transplante heterotópico de escalada em ratos. Esta técnica é ideal para estudos de curto prazo sobre preservação ou rejeição imunológica em VCA. A descrição passo a passo permitirá que os estagiários dominem rapidamente a cirurgia.

Para começar, faça uma incisão circunferencial na pele acima do tornozelo no terço distal da perna. Esqueleto e cauterizar a artéria safena e o ramo terminal da artéria popliteal usando fórceps bipolares. Cauterize e corte os músculos gastrocnemius, soleus, tibialis anterior e bíceps femoris até que o osso tibial seja exposto.

Faça uma incisão de 2,5 centímetros na linha inguinal direita e disseque a almofada de gordura inguinal. Use um retrátil de anzol para agarrar o ligamento inguinal. Segure a almofada de gordura inguinal distally com fórceps de fixação e retraia a almofada de gordura para expor os vasos femorais.

Disseca os vasos femorais, individualize os ramos de Murphy e ligante com laços de nylon 8/0. Heparinize o rato doador injetando a heparina na veia dorsal peniana usando uma agulha calibre 27,5. Complete a incisão da pele ao redor do quadril.

Use os fórceps bipolares para cauterizar os músculos bíceps femoris e glúteos superficialis, em seguida, cauterizar e cortar o nervo ciático no comprimento do fêmur médio. Exponha o fêmur proximalmente ao nível da crista femoral posterior e liga os vasos femorais com laços de nylon ao nível do ligamento inguinal. Realize uma arteriotomia na artéria femoral logo abaixo da ligadura e dilate para inserir o angiocateter de calibre 24.

Cauterize e corte o músculo restante debaixo do pedículo para expor o lado anterior do fêmur. Use o cortador de osso para cortar a tíbia proximally e corte o fêmur o mais distally possível. Lave a retalho parcial com dois mililitros de soro fisiológico de heparina para obter uma saída venosa clara.

Coloque a plataforma traseira no gelo em uma gaze estéril até a transferência microvascular. Disseque a almofada de gordura inguinal e recline a almofada de gordura inguinal distally para expor os vasos femorais. Use um gancho para retrair o ligamento inguinal e os fórceps de fixação para segurar a almofada de gordura inguinal distally.

Disseque os vasos femorais, individualize os ramos de Murphy, e ligante com laços de nylon como demonstrado. Ligate ambas as naves acima dos vasos epigástricos usando laços de nylon. Coloque os grampos aproximadores proximicamente, dilate a lente do vaso e enxágue com soro fisiológico de heparina.

Faça uma incisão no flanco esquerdo acima do quadril e crie um bolso subcutâneo com um túnel subcutâneo para o vinco inguinal. Coloque a parte proximal do membro parcial e a almofada de gordura inguinal através do túnel subcutâneo para transferência microvascular. Realize as anastomoses venosas e arteriais usando suturas de nylon.

Remova os dois grampos aproximadores e observe a revascularização do membro. Realize um teste de ordenha em ambos os vasos para avaliar a patência de cada anastomose. Faça uma incisão longitudinal da pele no lado medial do membro transplantado e insira o enxerto.

Remova o excesso de pele do enxerto e feche a ferida com suturas separadas e uma sutura em execução usando suturas absorventes 4/0. Sutura juntar as almofadas de gordura inguinal do membro transplantado e o receptor usando duas suturas absorvíveis separadas e fechar o vinco inguinal após o último check-up da anastomose microvascular. A evolução do modelo de retrocesso heterotópico foi monitorada até o final do estudo.

O crescimento capilar foi observado durante a primeira semana pós-operatória, e a retração cutânea apareceu após duas semanas. Falha vascularizada de aotransplante composto pode ocorrer durante a primeira semana pós-operatória devido à trombose microvascular. A trombose venosa foi a causa da eutanásia precoce em 20% dos casos, todos ocorridos antes do quinto dia de pós-operatório.

A pele parecia azul e ficava mais escura a cada dia. A automutilação é uma preocupação séria em enxertos não-sentidos e ocorre frequentemente entre o segundo e o sétimo dia. Se limitado a menos de um terço da superfície do enxerto e diz respeito apenas à pele, o debridamento cirúrgico e a sutura utilizando suturas não absorvíveis podem ser discutidos com o veterinário da equipe.

A prevenção da automutilação depende do uso de uma coleira e costurada no pescoço até o sétimo dia de pós-operatório e limpeza de qualquer sangue ou crosta nas feridas cirúrgicas do animal. Autofagia grave de múltiplas camadas do enxerto leva à eutanásia do animal. Cistos dérmicos apareceram após o pós-operatório 14, às vezes com um centro necrosado cutâneo antes da fístula.

É crucial garantir que a colocação do enxerto não impeça o animal de ser ambulatorial, e que o pedículo não esteja torcido ou apertado durante o inset do enxerto. Nossa equipe realizou estudos de preservação nos membros adquiridos antes do transplante. Os efeitos de diferentes durações do armazenamento estático a frio foram avaliados, bem como diferentes protocolos de perfusão de membros.

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