27 de maio de 2008
Usamos síncrotron tomografia de raios-X no Laboratório Europeu de Radiação Síncrotron (ESRF) para não-invasiva produzir conjuntos de dados 3D tomográficos com um pixel de resolução de 0.7μm. Usando software de renderização de volume, o que permite a reconstrução de estruturas internas em seu estado natural, sem os artefatos produzidos por corte histológico.
Olá. Meu nome é Michelle Ov, do Laboratório de Morcegos da Universidade de Tübingen, e nesta apresentação quero falar sobre a visualização tridimensional não invasiva da organização interna de microartrópodes utilizando tomografia de raios X de sincrotrão com resolução submicrométrica. O sistema modelo com o qual estamos trabalhando é o ácaro orbídeo Aus Long osis, um microartrópode com tamanho corporal variando de 800 mícrons a um milímetro. Esta é uma imagem obtida a partir de um cultivo do nosso laboratório, na qual é possível observar os animais se alimentando de algas.
Para estudar a organização interna de Argos, utilizamos radiação síncrotron de raios X para produzir dados tomográficos VOX no SRF e no Grable. Aqui você vê uma imagem do ESRF com o grande anel de armazenamento e, no canto superior direito, o salão experimental do ID 19, localizado fora do anel. Para as medições, as amostras foram secas por ponto crítico e montadas em pinos de plástico usando cola instantânea. Os experimentos foram realizados a 20,5 keV e foram obtidas 1.500 projeções para as reconstruções.
Aqui você vê a câmera com um chip CCD de alta definição, faixa dinâmica de 14 bits e quatro megapixels. O simulador mostrado na parte inferior desta imagem converte raios X em luz visível. Este é um detalhe do porta-amostras e da mesa de rotação.
A amostra é montada na cabeça do medidor Goya para permitir uma orientação adequada da amostra no feixe. Uma descrição detalhada da configuração experimental é apresentada em nosso artigo de 2007 no Journal of Microscopy. Nesta apresentação, focarei nos analisadores de dados com relação à visualização tridimensional utilizando o software Fiji Studio Max.
Primeiro, vou mostrar como remover os valores cinzentos do fundo para extrair as informações da amostra. No histograma, você vê um pico grande, que pertence principalmente aos valores cinzentos do fundo. Após remover esse pico do histograma, é possível ver a amostra emergindo do cubo cinzento.
A seguir, vou mostrar como rotacionar o objeto utilizando o VG Studio Max com keyframes. O VG Studio Max possui um conjunto de trajetórias de câmera predefinidas. Aqui, utilizo o círculo XY para gerar a rotação ao redor dos eixos verticais, e esta é a animação final.
A grande estrutura na parte traseira do animal corresponde à superfície da cola sintética. Agora vou mostrar como definir um plano de corte virtual para poder observar tridimensionalmente a organização interna da amostra. Existem três orientações nas quais um plano de corte pode ser definido: frontal, sagital e axial.
Aqui utilizo o plano frontal e encontro uma posição de corte em alguma região central do animal, na área da, este plano de corte não precisa ser estático. Novamente, utilizando o key framer, ele pode ser movido ao longo de qualquer eixo. Neste exemplo, uso o recorte predefinido Z para mover o plano de corte ao longo de um eixo longitudinal da amostra, e é assim que a animação final se apresenta passo a passo, podendo-se observar e acompanhar a organização tridimensional de todas as estruturas internas com uma resolução P de apenas 0,7 mícrons.
Além das trajetórias de câmera predefinidas, também é possível gerar caminhos personalizados de câmera. Para isso, escolha o modo de visualização com câmera livre e ajuste a câmera e a distância focal da lente virtual para qualquer posição desejada. Passo a passo, novas posições da câmera podem ser definidas para seguir um trajeto individual de qualquer complexidade.
A janela 3D no canto superior esquerdo mostra o efeito de todos os ajustes da câmera em tempo real. O exemplo final conduz você por um voo virtual que percorre todo o sistema digestivo do animal. Aqui você vê algumas partes do gma, da colliery, do labrum e da rotella.
Estamos nos aproximando e entrando na boca do animal. Aqui você pode ver os PHNs no lado dorsal. Agora estamos passando através do esôfago para entrar nos ventriculares.
Nossos ácaros rivetados possuem dois grandes quer. Essas são estruturas semelhantes com função digestiva. Entramos no seio direito.
Através de sua pequena abertura, é possível observar numerosas células IDE. Essas células desempenham um papel importante na digestão, embora a função e o mecanismo completos ainda não sejam totalmente compreendidos. Retornando aos ventrículos, observamos uma estrutura particular, a válvula Isal, através da qual entramos nos ventrículos há alguns minutos, exatamente na fronteira entre os ventrículos e o cólon.
Você pode ver um bolo alimentar, que está compactado e cercado por uma membrana atrófica. Atrás do bolo alimentar, você vê uma paleta fecal. Estamos passando por esta paleta FE neste momento.
Em seguida, passamos pelo curto intestino médio e entramos no intestino posterior. Aqui você vê o grande e característico micróbio. Finalmente, pode-se observar a superfície interna das placas animais particulares aqui, tal como uma paleta de fe.
Deixamos o sistema digestivo. Agora temos uma breve visão final do lado ventral exterior do animal e observamos as placas do animal, as placas AAL e as placas genitais.
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Este estudo apresenta um método não invasivo para visualizar a organização interna das saídas micro AHR utilizando tomografia de raios X de sincrotrão. A técnica permite imagens tridimensionais de alta resolução, sem os artefatos associados aos métodos histológicos tradicionais.
A visualização 3D não invasiva com resolução submicrométrica permite uma análise estrutural interna detalhada de sistemas biológicos em microescala, sem o corte destrutivo. Essa abordagem auxilia na validação de alvos e na redução de riscos mecanicistas na fase inicial de descoberta, fornecendo dados morfológicos quantitativos em estado nativo. O método aumenta a confiança preditiva para triagem fenotípica e desenvolvimento de ensaios em modelos relevantes para doenças, onde a histologia tradicional falha devido ao tamanho da amostra ou a artefatos de preparação.
O método integra-se aos fluxos de trabalho de descoberta inicial como uma etapa de imagem não destrutiva após o preparo da amostra e anterior ao desenvolvimento de ensaios funcionais, permitindo o design iterativo de estudos de validação de alvos.