Остеокластов Вывод из костного мозга мыши

Краткое содержание

Остеокласты основной клеток костного резорбции в организме. Возможность изолировать остеокластов в больших количествах привело к значительному прогрессу в понимании остеокластов биологии. В этом протоколе, мы опишем метод для изоляции, культивирования и количественного активность остеокластов в пробирке.

Аннотация

Остеокласты высоко специализированные клетки, которые являются производными от моноцитов / макрофагов костного мозга. Их уникальная способность поглощать как органические, так и неорганические матрицы кости означает, что они играют ключевую роль в регуляции скелетных ремоделирования. Вместе остеобласты и остеокласты отвечают за динамического процесса связи в который вовлечены и резорбции кости и образование костной ткани, действующее вместе для поддержания нормального скелета во время здоровья и болезни.

В качестве основного клетки костной резорбции в организме, изменение остеокластов дифференциации или функции может привести к глубоким эффектов в организме. Заболевания, связанные с измененной функции остеокластов может изменяться в тяжести от смертельной заболевания у новорожденных из-за отказа сформировать пространство мозга для кроветворения, чтобы чаще наблюдается патологий, таких как остеопороз, в котором чрезмерное остеокластов резорбции кости предрасполагает к разрушению образования. ЛОР "> Возможность изолировать остеокластов в больших количествах в лабораторных позволило добиться значительных успехов в понимании цикла костного ремоделирования и проложил путь для открытия новых терапевтических стратегий, борьбе с этими заболеваниями.

Здесь мы опишем протокол для изоляции и культивировать остеокластов из костного мозга мыши, который будет давать большое число остеокластов.

Введение

Костного ремоделирования является динамичным и включает муфту формирования костей с костной резорбции ^1. Это жестко регулируется процесс отвечает за поддержание скелет в нормальном гомеостаза, и в ответ на повреждение и болезни.

Остеокласты уникальны, многоядерные клетки, которые способны к резорбции как органические, так и неорганические матрицы кости. Остеокласты выводятся из моноцитов / макрофагов костного мозга ^2-5. Отклонения в функции или образованием остеокластов может привести в различных клинических патологий, в том числе общих заболеваний, как остеопороз.

Способность генерировать остеокластов в пробирке позволило значительному прогрессу в нашем понимании кости биологии ^6. В результате, новые терапевтические агенты для лечения возникающих остеокластов, связанные с заболеваниями, которые ответственны за значительных заболеваний и смертности ⁷ . Гомеостатическое поддержание костной массы и силы требует согласованных действий формирования костной остеобластов и костей резорбции остеокластов ^8,9. Гомеостаза кости изменяется в ряде заболеваний, в том числе постклимактерического остеопороза, в которой увеличена активность остеокластов приводит к патогенным потери костной массы и плотности ^10. С увеличением доступности трансгенных мышиных моделях заболеваний человека, есть еще возможность расшифровать роль остеокластов в человеческой болезни костей ^11-13.

Многочисленные протоколы методов остеокластов культивирования появляются в литературе, с много вариантов описано ^9,12,14. Син и его коллеги описывают аналогичную методику с протоколом, описанным ниже, в их описании osteoclastogenic анализов из мышиных клеток костного мозга. Тем не менее, чтобы освободить клетки костного мозга следующие урожая длинных костей, Син и др. Промывать полость костного мозга с α-MEM полной среде^14. Catalfamo исследован эффект гипергликемии на функцию остеокластов и описывает способ, в котором все клетки мобилизовали путем промывки костного мозга культивировали в течение 24 ч, после чего неадгезивные клетки отбрасывали ^12, техника также используется Бойл и др . ⁹ Эти ранее опубликованные протоколы требуют практику промывки костный мозг, утомительной практики, которая также вводит риск травмы иглой и потере ценного костного мозга, как надо отрезать оба конца кости. Протокол, который мы описываем, реализует использование в ступке с пестиком, чтобы изолировать остеокласты, который подобен способу, описанному макрофагов изоляции по Weischenfeldt и др. ¹⁵

Наш опыт, однако, является то, что изоляция остеокластов и в культуре пробирке, используя ранее опубликованные методы результаты в переменных результатов с точки зрения производства остеокластов, что часто приводитв неспособности развивать остеокластов. Таким образом, мы разработали протокол, который позволяет для последовательного выделения из костного мозга мыши, чтобы получить большое количество многоядерных остеокластов в пробирке, с приблизительной выходом 70-80% клеток, первоначально плакированных формирования макрофаги и впоследствии остеокласты, в присутствии индукционные остеокластов СМИ.

Протокол

ПРИМЕЧАНИЕ: Этические заявление: Все исследования с участием позвоночных животных проводили в протоколах соответствии утвержденным Административным панели Стэнфордского на лабораторных животных (APLAC).

1. Подготовка

1. Разрешить 10 мл коммерчески доступного разделения градиент плотности клеток средах (который содержит polysucrose и натрия диатризоат, доводили до плотности 1,077 г / мл), чтобы прийти к комнатной температуре в 50 мл коническую пробирку.
2. Подготовьте проточной цитометрии (FACS) буфер с 1x фосфатным буферным раствором (PBS) и 2% фетальной телячьей сыворотки (FCS). Берут 50 мл аликвоты и поддерживать эту аликвоту при КТ в течение использования во время разделения клеток медиа-ступенчатым градиентом плотности.
3. Есть ведро льда, готового поддерживать изолированную ткань и клетки в ходе процедуры изоляции.

2. Подготовка питательных сред

1. Подготовьте базальную носитель: MEM (минимальной поддерживающей среде), без фенолового красного (500 мл), глутамат (1x), FCS (10x), 10000 ед / мл penicilliн (1x).
2. Фильтр базальной среды с 0,22 мкм фильтр.
3. Подготовка кости индукции макрофагов мозга СМИ:
   1. Возьмем 50 мл базальных средах, полученного на стадии 2.1.
   2. Добавить простагландина Е2 (ПГЕ2, н 352,465 г / моль) при 10 ^-7 М конечной концентрации.
   3. Добавить макрофагов колониестимулирующий фактор (M-CSF) в 10 нг / мл.
   4. Не фильтровать окончательное решение макрофагов костного мозга стимулирующее СМИ.
4. Подготовка остеокластов индукции СМИ:
   1. Возьмем 50 мл базальных средах, полученного на стадии 2.1.
   2. Добавить простагландина Е2 (ПГЕ2, н 352,465 г / моль) при 10 ^-7 М конечной концентрации
   3. Добавить макрофагов колониестимулирующий фактор (M-CSF) в 10 нг / мл.
   4. Добавить RANKL в концентрации 10 нг / мл.
   5. Не фильтровать окончательное решение индукции остеокластов СМИ.

3. костного мозга Изоляция

1. Усыпить один C57BL / 6 мышьс помощью метода ингаляции углерода диоксид, а затем смещением шейных позвонков.
   ПРИМЕЧАНИЕ: Грызуны должны быть умерщвлены обученным персоналом с использованием соответствующего техника, оборудование и средства.
2. Положение и обеспечить мышью на рассечение борту и спрей с 70% спиртом.
3. Рассеките из бедренных костей, голени, плечевые кости и позвоночник.
   1. Начните с мышью в положении лежа на спине. Сделать надрез вертикально вдоль нижней конечности и начинают путем рассечения вдоль длины бедра и голени путем деления вложения мягких тканей. Наконец, вывихнуть кости от колена и тазобедренного сустава, чтобы освободить кости полностью из скелета.
   2. Продолжить, чтобы сделать разрез по длине верхней конечности, чтобы изолировать плечевую кость. Вывихнуть плечевой кости в плече и локтевых суставов рассечением мягких привязанность ткани капсульный.
   3. Наконец, поверните курсор, так что мышь лежит склонны. Делают разрез кожи по всей длине позвоночника, по средней линии. Соблюдайте паравертебральная мягкаяткани на каждой стороне позвоночника и надрезать вдоль костной краю позвоночника, рассечения через паравертебрального массы мягких тканей. С использованием ножниц, сделать горизонтальный разрез через позвоночника у основания шеи, и в конце позвоночника, всего проксимальнее вставки хвоста, освобождая позвоночник от прикрепления мягких тканей.
4. После того, как кости собирают, держать их в FACS буфера на льду.
5. Используйте тонкую бумагу, чтобы очистить мышцы и мягкие ткани от костей.
6. Поместите очищенные кости в ступке с помощью пестика с 3 мл FACS буфера.
7. Измельчите косточки мягко в ступке с помощью пестика.
8. Отберите у окровавленной жидкости и передачи в 50 мл коническую трубку с помощью пропускания раствора через ячейки фильтра 70 мкм.
9. Добавить 5 мл FACS буфера для измельченного кости и сокрушить дальше. Опять же, удалить жидкость с помощью пипетки и передать в 50 мл коническую пробирку через 70 мкм сито.
10. Обычно раздавить TWI костиCE-три раза в свежем буфере FACS, используя ступку и пестик, каждый раз, добавив еще 5 мл свежего буфера FACS, пока жидкость не не окрашивает в красный цвет.
11. Центрифуга решение костного мозга при 200 х г в течение 5 мин при 4 ° С с получением осадок клеток.

4. Градиент Разделение клеток костного мозга

1. Аспирата супернатант и ресуспендируют в 10 мл FACS буфера (выдерживают при комнатной температуре).
2. Возьмем 50 мл коническую пробирку, содержащую 10 мл коммерчески доступного разделения градиент плотности клеток средах (RT).
3. Слой раствора костного мозга на разделительной ячейки СМИ градиента плотности. Делайте это медленно с помощью электрического пипетки. Угол наконечник пипетки к внутренней поверхности в верхней части конической трубе и наклона конической трубе до приблизительно 30 °. Использование медленный скоростной режим на пипетки, аккуратно изгнать решение костного мозга, чтобы не нарушить разделения клеток СМИ градиента плотности.
   ПРИМЕЧАНИЕ: В конечном итоге там будетбыть четкое определение между двумя решениями (сотовых решений и плотность разделения градиент клеток решений СМИ).
4. С помощью центрифуги RT, центрифугировать носитель разделения клеток в градиенте плотности и раствор клеток в сбалансированном центрифуге при 200 х г в течение 15 мин. Кроме того, удалить ускорение и замедление на центрифуге, чтобы обеспечить адекватное разделение фаз с помощью разделения клеток медиа градиент в градиенте плотности.
5. После центрифугирования аспирации от мутного средний слой, который содержит клетки костного мозга, представляющих интерес.
6. Передача этих клеток в новую коническую трубку. Добавить 20 мл дополнительного буфера FACS (держали на льду), чтобы промыть клетки.
7. Центрифуга при 200 х г в течение 5 мин при 4 ° С с получением осадок клеток.
8. Ресуспендируют осадок клеток окончательное в 1 мл макрофагов стимулирующего средства массовой информации, чтобы позволить для подсчета клеток с помощью гемоцитометра.

5. Сотовый Подсчет

1. Принимать по 10 мкл раствора и смешать клеткис 10 мкл трипанового синего. Нагрузка 10 мкл полученной смеси на гемоцитометре и получить число клеток на мл раствора.

6. культивирования клеток

1. Поместите 2 мл макрофагов стимулирования среды в каждую лунку 24-луночного планшета.
2. Добавить 200000 клеток в каждую лунку.
   ПРИМЕЧАНИЕ: По нашему опыту, плотность клеток-покрытие является одним из наиболее важных требований, предъявляемых к адекватным в пробирке культивирования остеокластов.
3. Аккуратно агитировать тарелку и поставить в регулярной инкубаторе при температуре 37 ° С.
4. Не изменяйте СМИ в течение 3 дней.
5. После 3-х дней в макрофагов стимулирования СМИ, изменения носителя остеокластов СМИ.
6. Далее измените носитель в день в течение 5-7 дней, после чего, большие, многоядерные остеокласты должны быть видны на планшет для культивирования.

7. Окрашивание тартрат Устойчив кислота фосфатазы (TRAP)

1. Через 5-7 дней в пробирке кульры, аспирация СМИ от культуры хорошо.
2. Вымойте скважин осторожно 1X PBS три раза.
3. Зафиксировать клетки путем добавления 4% -ного раствора параформальдегида и оставить на 1 ч при 4 ° С.
4. В течение этого времени, подготовить ловушки пятно (который коммерчески доступен) путем предварительного нагрева до 37 ° С.
5. После 1 часа в параформальдегиде, аспирация от количества формальдегида и мыть осторожно 3 раза 1x PBS.
6. Добавить 1 мл подогретого TRAP пятно в каждую лунку пластины для окрашенных.
7. Место пластины в термостате при температуре 37 ° С в течение 1 часа, экранированной от света.
8. После 1 часа, аспирация от ловушки пятно.
9. Вымойте лунки 3 раза с подогретым деионизированной воды.
10. Контрастное колодца гематоксилином Гилла (ВНИМАНИЕ) в течение 1-2 мин.
11. Остеокластов изображение, используя яркий микроскопии.
12. Промыть лунки с деионизированной водой до тех пор, адекватной интенсивности цвета пятно достигается, как правило, когда ядра появляются BLUе.

8. остеокластов Резорбция Пробирной

1. Используйте имеющийся в продаже 24-а полистирол культуры блюдо, которое предварительно наносят либо костной основы или неорганического кристаллического фосфата кальция покрытием.
2. Поместите 2 мл макрофагов стимулирования сред в каждую лунку.
3. Добавить 200000 свежеизолированных клетки костного мозга, полученные в конце стадии 2, в каждую лунку.
4. Аккуратно перемешивать пластину перед помещением его в термостате при 37 ° С в течение 3-х дней.
5. На 3-й день, изменения носителя остеокластов дифференцировки.
6. Выполните ежедневные изменения медиа с остеокластов дифференцировки в течение 5-7 дней.

9. Количественная оценка остеокластов резорбции деятельности

1. Через 5-7 дней культуры в остеокластов дифференцировки на минерализованной подложки в пробирке, анализировать минерализованной поверхности, как описано ниже, для оценки способности остеокластов с образованием resorptiна ямах, индикатор активности остеокластов.
2. Аспирируйте СМИ от резорбции планшета для анализа и добавить 100 мкл 10% раствора хлорной извести в каждую лунку.
3. Инкубируйте клетки с 10% -ным раствором хлорной извести в течение 15 мин при комнатной температуре.
4. Промыть лунки 3 раза дистиллированной водой.
5. Аспирируйте от оставшуюся воду и стряхните воду с плиты и дайте высохнуть на воздухе в течение 3-5 часов.
6. Контрастное пластины с коммерчески доступной Von Kossa окрашивания комплекта для обеспечения более легкого визуализации оон-рассасывается подложки.
7. Используйте яркий микроскопии для получения изображений представительных частей резорбированной поверхности.
8. Использование программного обеспечения для анализа изображений, вычислить процент резорбированной поверхности, чтобы позволить для количественного определения активности остеокластов резорбтивного.

Результаты

Цель этого метода было легко изолировать большое число остеокластов в пробирке, как правило, в течение одной недели. Успешное выделение большого количества остеокластов была подтверждена с помощью тартрат устойчивостью кислую фосфатазу окрашивание (фиг.1А). Большие остеокластов визуализируются как больших фиолетовых клеток с несколькими ядрами (как правило, ≥ 3 ядер). Используя этот протокол, он является общим для изоляции остеокластов с целых 30 ядер в остеокластов (рис 1b). <...

Обсуждение

Возможность легко изолировать и вырастить большое количество остеокластов в пробирке был ответственен за помощь для углубления понимания биологии кости и остеокластов-опосредованных заболеваний. Это было определение RANKL, что приведет к этому, когда он был недавно идентифицирован в качестве основного регулятора образование остеокластов, дифференцировки и выживания ^16-18.

Это был наш опыт, что выращивание в пробирке остеокластов из костного мозга в значительной с...

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье

Имя	Компания	Каталожный номер	Комментарии
MEM, без глютамина, без фенола красного	Gibco	51200-038
M-CSF, рекомбинантная мышь	Gibco	PMC2044
рекомбинантный мышиный транс/RANK L/TNFSF11 (E. coli экспрессирован)	R& D Systems	462-TEC-010
Простагландин E2	Sigma-Aldrich
Histopaque-1077	Sigma-Aldrich	10771
Кислая фосфатаза, лекоциты (TRAP) набор	Sigma-Aldrich	387A
Остеопроба костные резорбционные пластины, 24 луночные пластины	Corning Life Sciences	3987