RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Начните с химически закрепленной суспензии опухолевых клеток.
Добавьте оптимальную концентрацию опухолесвязывающего иммуноглобулина G, который связывается с поверхностными антигенами опухолевых клеток, образуя иммунные комплексы или IC.
Перенесите IC в культуральную пластину, содержащую адгезивные дендритные клетки. Инкубировать.
Дендритная клетка распознает IC, интернализует ее и перерабатывает в пептидные фрагменты.
Фрагменты загружаются на молекулы основного комплекса гистосовместимости класса II или MHC-II и представляются на поверхности клетки вместе с костимулирующей молекулой CD86.
Удалите носитель. Добавьте буфер для диссоциации клеток и энергично используйте пипетку, чтобы отсоединить клетки.
Переложите клетки в пробирку.
Центрифугируйте и ресуспендируйте клетки в блокирующем растворе, чтобы блокировать неспецифические взаимодействия.
Наложение с помощью меченного флуорофором коктейля антител, нацеленного на MHC-II и CD86.
Добавьте ДНК-связывающий краситель и кратковременно инкубируйте, чтобы окрашивать ядра мертвых клеток.
С помощью проточной цитометрии идентифицировать живые клетки, совместно экспрессирующие MHC-II и CD86, подтверждая IC-опосредованную активацию дендритных клеток.
Сначала зафиксируйте клетки в 1,8% буферизованном параформальдегиде на 10 минут при комнатной температуре. Засейте клеточную суспензию в каждую лунку U-образной 96-луночной пластины. Затем добавьте различные разведения опухолесвязывающих антител в каждую лунку. После этого инкубируйте клетки на льду в течение 15-20 минут.
После инкубации промойте клетки 150 микролитрами фосфатно-солевого буфера, затем центрифугируйте при 400-кратном избежании в течение 5-10 минут при 4 градусах Цельсия. После центрифугирования изгнать надосадочную жидкость и дважды промыть клетки. Растворите клетки в 100 микролитрах буфера FACS, содержащего флуорконъюгированное вторичное антитело. Далее выдержите тарелку на льду в течение 15 – 20 минут.
Через 15-20 минут добавьте 200 микролитров буфера FACS для промывания клеток. Центрифугируйте планшет при 400-кратном передозировке г в течение 5-10 минут. Сцедите надосадочную жидкость. Проведите проточную цитометрию для анализа связывания опухоли, а также для определения минимальной концентрации иммуноглобулина G, необходимой для покрытия клеток.
После того, как клетки покрыты минимальной концентрацией иммуноглобулина G, добавьте меченный CFSE иммунный комплекс опухоли к дендритным клеткам, полученным из моноцитов, в соотношении 1:5. Затем инкубируйте смесь в течение 12-16 часов в течение ночи в полной среде. Выполните FACS-анализ активации дендритных клеток, полученных из моноцитов.
Related Videos
08:36
Related Videos
7.8K Views
08:08
Related Videos
10.2K Views
12:54
Related Videos
2.2K Views
12:17
Related Videos
17.7K Views
04:57
Related Videos
983 Views
08:31
Related Videos
13.9K Views
09:04
Related Videos
13.7K Views
08:35
Related Videos
11.9K Views
11:48
Related Videos
11.8K Views
06:56
Related Videos
14.2K Views