RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/51300-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Этот протокол Отзывы Электрический клетки с субстратом импеданс зондирование, метод для записи и анализа импеданса спектр прикрепленных клеток для количественной оценки прикрепления клеток, пролиферации, подвижности и клеточном ответе на фармакологических и токсических раздражителей. Обнаружение проницаемости эндотелия и оценки межклеточных и клетка-подложки контактов подчеркнул.
Общая цель следующего эксперимента заключается в использовании измерения импеданса подложки электрической ячейки, известного как eis, для характеристики клеточного поведения. Это достигается путем выращивания клеток на электродах в массиве и проведения измерений в различных режимах для количественной оценки формирования эндотелиального барьера, созревания и функциональных манипуляций, таких как электрические раны и добавление стимуляторов, затем выполняются для проверки подвижности клеток и барьерной функции. Получены результаты, описывающие прикрепление клеток, пролиферацию, миграцию, обнаружение проницаемости эндотелия и оценку контактов клеток, клеток и клеточного субстрата на основе esis.
Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в области клеточной биологии, такие как обеспечение онлайн-генерации количественных данных, характеристика клеток в их естественном состоянии слияния в стандартных условиях клеточной культуры. Как правило, люди, плохо знакомые с этим методом, испытывают трудности, потому что лежащая в основе теория кажется сложной, и вы должны знать о нескольких основных соображениях, прежде чем начать эксперимент. Для начала матрицы должны быть очищены и стабилизированы, чтобы предотвратить дрейф электродов, улучшить воспроизводимость и увеличить коэффициент мощности сигнала.
Поэтому добавьте 200 микролитров 10 миллимолярного EL ine в каждую лунку восьмилуночного массива через 15 минут При комнатной температуре удалите EL цистин двумя сверхчистыми водными промывками, а не фосфатными буферами. Кроме того, не подвергайте электроды воздействию растворов, содержащих сыворотку, перед нанесением покрытия, так как они могут препятствовать усвоению белка. Далее добавьте в каждую лунку по 200 микролитров подогретого 1%-ного желатина и инкубируйте массив в течение получаса при температуре 37 градусов Цельсия.
Чтобы удалить желатин, используйте сверхчистую воду и не допускайте пересыхания поверхностей электродов. Затем заполните лунки 400 микролитрами полной питательной среды, в которой теперь может содержаться сыворотка. Загрузите массив в держатель.
Проверьте девять золотых квадратов. Они должны контактировать с контактами POGO. Аккуратно закрепите массив на месте рукой, затянув регулировочный винт на компьютере.
Откройте измерительное программное обеспечение. Нажмите кнопку «Настройка», а затем проверьте раздел «Сбор данных», чтобы выполнить быстрое измерение импеданса каждой скважины с частотой по умолчанию 4 000 Гц. Значения будут сохранены в разделе комментариев.
Убедитесь, что при проверке точно выбран тип используемого массива EISs в разделе «Конфигурация скважины» на схеме массива. Красным и зеленым цветом обозначены функциональные возможности подключений. Если очистка и кодирование прошли успешно, восемь массивов W one E sys должны зарегистрировать от пяти до шести массивов NANOFARAD и восемь массивов W 10 E.
Таким образом, базовое сопротивление от 50 до 60 нанофарад перед посевом клеток составляет около 2000 Ом. Чтобы смоделировать данные с помощью RB alpha и cm, начните запись MFT с массивом medium failed. Возьмите 15 минут бесклеточных данных и завершите эксперимент, чтобы добавить клетки.
Теперь извлеките массив и засейте по 400 микролитров одноклеточной суспензии в каждую лунку. Чтобы изучить рост клеток, семена 10 000 клеток на квадратный сантиметр для начала с почти слиянием популяционных семян, 60 000 клеток на квадратный сантиметр. После загрузки массива в держатель в разделе «Конфигурация скважин» выберите скважины для измерения.
Затем переходим к параметрам сбора данных и выбираем режим измерения для временного ряда на фиксированной частоте, выбираем SFT, а также выбираем частоту измерения покрытия электрода и модели RB и альфа выбираем MFT и прибор автоматически проводит измерения на всех доступных частотах. По возможности выполняйте измерение в многочастотном режиме. Для этого требуются данные на всех доступных частотах и, таким образом, обеспечивается наибольшее количество инсайтов.
Для анализа микродвижения выберите RTC и отрегулируйте частоту дискретизации. Стандартное временное разрешение составляет один герц, но может быть увеличено для отслеживания быстрых изменений импеданса. Значение может быть увеличено до 25 герц для z тета.
Чтобы последовательно измерить микродвижение из многих лунок, выберите меню справки. Затем выберите пункт меню «Показать экспертную панель инструментов» и получите и многоскважинный RTC. В разделе сбора данных обязательно укажите ограничение по времени в часах.
При использовании этого параметра программное обеспечение будет запрашивать количество циклов после начала сбора данных. При сборе данных с помощью SFT или MFT выберите временной интервал между измерениями, указанный в секундах. Для получения максимального объема данных не устанавливайте флажок.
Теперь нажмите старт и укажите, где должны храниться данные. Прогон останавливается нажатием клавиши Finish. При нажатии на паузу сбор данных остановится, но экспериментальные часы продолжат ход.
Теперь снимите массив и под ламинарным проточным колпаком проведите манипуляции с лунками. Вернув массив в держатель, нажмите «Проверить соединение», чтобы проверить электрические соединения, а затем возобновите эксперимент, чтобы продолжить сбор данных. Если клетки не нуждаются в стерильности после манипуляции, то такой стимул, как тромбин, может быть добавлен непосредственно в лунку во время сбора данных.
Такие внесенные вариации можно отметить на экспериментальных часах, нажав кнопку «Отметить» и добавив комментарий. Другой вариант – электрическая намотка клеток. Настройки для этого требуют некоторой настройки, чтобы сократить время раны, и это не эффективно слишком долго, и вы можете повредить электроды.
Просто начните с настроек по умолчанию, предоставленных программным обеспечением, и двигайтесь дальше. Перейдите в раздел Настройка электропарада ран и включите намотку. Теперь выберите скважины для намотки в соответствии с конфигурацией скважины.
Будут ранены только проверенные скважины. При нажатии на кнопку «Активировать» появляется всплывающее окно с запросом на ранение. После ранения убедитесь, что сигнал падает до значения электрода, практически свободного от ячеек.
Если ранение в целом не повторялось для работы с данными, воспользуйтесь опцией экспорта данных и выберите Excel. Однако RB и альфа-моделирование могут быть выполнены из программного обеспечения. Исходя из данных MFT, помните, что моделирование допустимо только для слоев ячеек слияния.
И не забудьте добавить ссылку без ячеек. Начните с автоматического выбора бесклеточного опорного напряжения с помощью функции поиска в разделе моделирования и анализа частотного сканирования. Примите значение с помощью set.
Затем нажмите модель, чтобы начать расчеты. Не пугайтесь, если это займет несколько минут. Во время типичного эксперимента клетки переходят из фазы роста в фазу плато.
Когда они достигают слияния, изображения во время этого процесса получаются непосредственно с электрода. Следующим этапом является формирование и созревание EC-барьера. Затем для изучения миграции клеток используется электрическое ранение.
За характерным падением сигнала до исходного уровня следует восстановление состояния слияния. Наконец, реакция на раздражители отслеживается в режиме реального времени. Здесь был применен вазоактивный агент тромбин.
Это вызывало сокращение клеток и, следовательно, временное открытие небольших щелей в барьере, что вызывало снижение сопротивления импедансу, а измерения емкости дают дополнительную информацию о адгезии клеток и сопротивлении росту при наиболее чувствительном измерении. Частота отражает качество и функцию клеточного барьера и учитывает сопротивление парацеллюлярному и трансцеллюлярному потоку тока. Когда элементы присоединяются к электродам, они пропорционально ограничивают протекание тока и падение емкости.
Эта фаза обеспечивает общее измерение покрытия электрода и лучше всего количественно измеряется при регистрации емкости на частоте выше 40 килогерц. Сопротивление дает четкое представление о том, как хорошие клетки могут блокировать ток и, следовательно, качество клеточного барьера. Поэтому клетки разных ходов и разных типов имеют разное сопротивление.
Наши RB и альфа помогают различать адгезии клеточных клеток и клеточного матрикса. RB — это удельное сопротивление контактов ячеек ячейки с текущим потоком, или обратное измерение проницаемости. Альфа — это мера вклада импеданса от электродных переходов ячейки.
Оба значения RB и альфа могут быть рассчитаны в программном обеспечении ISIS. Небольшие колебания сигнала сопротивления могут быть вызваны тонкими движениями в слое клеток слияния или микродвижениями. Они могут быть измерены с помощью одной Е-матрицы на наиболее чувствительной частоте и проанализированы с помощью быстрого преобразования Фурье в рамках программного обеспечения EIS.
Например, можно сделать электрическую рану размером 250 микрон, которая закроется в течение нескольких часов, чтобы изучить миграцию клеток. Импедансная спектроскопия также хорошо подходит для анализа влияния добавляемых веществ. Как отмечалось ранее, тромбин делает клеточный барьер гиперпроницаемым, снижая напряжение базальных клеток с помощью ингибитора ARO киназы, эффект тромбина может быть уменьшен При попытке этой процедуры важно помнить, что ESIS чрезвычайно чувствителен к изменениям в клеточной среде, таким как температура, pH, истощение среды и так далее.
После его разработки. Этот метод проложил путь исследователям в области ологии к изучению тенденций и эффектов вазоактивных агентов на конфлюенсирующие клеточные культуры в режиме реального времени.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
08:51
Related Videos
27.7K Views
03:45
Related Videos
798 Views
09:11
Related Videos
11.2K Views
10:51
Related Videos
16.8K Views
07:43
Related Videos
23.1K Views
07:56
Related Videos
643 Views
04:53
Related Videos
1.5K Views
09:03
Related Videos
4.3K Views
09:38
Related Videos
877 Views
08:19
Related Videos
14.8K Views