30 октября 2014 г.
Мы описываем протокол для мечения обонятельных сенсорных нейронов in vivo с помощью электропорации и последующего конфокального лазерного сканирования или многофотонной микроскопии для визуализации морфологии нейронов и их развития с течением времени.
Общая цель этой процедуры — пометить обонятельные сенсорные нейроны in vivo для визуализации морфологии и развития аксонов. Это достигается путем предварительного порирования фторсодержащего четырехсвязанного декстрана в одиночные обонятельные сенсорные нейроны. Второй шаг — подождать 24 часа, чтобы краситель распространился в аксональные отростки сенсорных нейронов.
Затем головастика обезболивают и с помощью многофотонной микроскопии получают трехмерное изображение обонятельной луковицы. Заключительным этапом является повторное исследование меченого нейрона у одного и того же животного через заданные промежутки времени. В конечном счете, реконструкция клеточной морфологии позволяет визуализировать изменения в морфологии аксонов.
Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в области нейробиологии, например, как аксоны растут по направлению к целевым областям в переднем мозге и как формируются синапсы. Перед экспериментом. Убедитесь, что установка для электропорации состоит из стереомикроскопа с большим рабочим расстоянием и оснащена флуоресцентным освещением и наборами фильтров для красителя.
Для электропорации используется либо специальная одноэлементная электропорация, либо универсальный генератор квадратных импульсов, подключенный к осциллографу. Подключите выходы электропорации к держателю для пипетки и электроду для ванны. Убедитесь, что держатель пипетки и электрод для ванны содержат серебряные провода, покрытые тонким слоем хлорида серебра.
Затем установите держатель пипетки на микроманипулятор для точного позиционирования. После этого изготовьте микропипетки для электропорации с босиликатными стеклянными капиллярами с внутренней нитью. Установите параметры поляра микропипетки для получения более длинного хвостовика и микропипетки с меньшим отверстием наконечника с высоким сопротивлением пипетки для электропорации одиночных элементов.
Затем измерьте сопротивление пипетки непосредственно с помощью специальной электропораторной ячейки. При этой процедуре растворяют фторо-четырехсвязанный декстран в лягушачьем рингере в концентрации трех миллимоляров. Разделите этот исходный раствор на небольшие аликвоты и храните один впрок в морозильной камере.
Затем заполните микропипетку от одного до пяти микролитров раствора декстрана. Осторожно проведите микропипеткой, чтобы удалить остатки пузырьков воздуха с наконечника пипетки. Затем установите микропипетку в держатель пипетки.
Убедитесь, что серебряная проволока внутри пипетки соприкасается с раствором красителя. Теперь поместите небольшой кусочек салфетки в чашку Петри и залейте ее небольшим количеством воды, содержащей 0,02% трики. Далее обезболите предварительно метаморфического головастика в воде, содержащей 0,02% трики.
Подтвердите правильную анестезию, прикоснувшись к ней и убедившись, что она не реагирует. Затем аккуратно переложите головастика к покрытой тканью чашке Петри. Убедитесь, что электрод соприкасается с влажной тканью, и расположите наконечник микропипетки близко к обонятельному органу головастика с помощью микроманипулятора.
После этого проникают в кожу, покрывающую обонятельный орган. С помощью наконечника пипетки осторожно продвигайте наконечник в центрально расположенный слой сенсорных нейронов главного обонятельного эпителия или носового эпителия MRO. Теперь запустите импульсы положительного квадратного напряжения, чтобы передать краситель в сенсорные нейроны с помощью одного полюса напряжения или последовательности из нескольких импульсов.
Затем визуализируйте успешную экструзию красителя и электропорацию с помощью флуоресцентного стереомикроскопа. Краситель быстро распространяется по телу клетки и дендритам после успешной электропорации. После повторения процедур для второго органа обоняния головастика переложите головастика в стакан, наполненный пресной водой, для восстановления и позвольте электропорированному красителю распространиться на сенсорные нейроны и обонятельную луковицу.
Не менее чем через 24 часа после электропорации обезболить головастика в воде, содержащей 0,02% трики. Далее аккуратно перенесите головастика в камеру для визуализации. Вырежьте небольшой прямоугольник из полоски парама.
Затем накройте головастика парамом, оставив передний хвостовой головной мозг через вырезное окно. Закрепите параметр иголками на блюде, не травмируя головастика, и убедитесь, что головастик погружен в достаточное количество воды, содержащей 0,02% трики. Затем установите камеру визуализации на столик вертикального многофотонного микроскопа или конфокального микроскопа.
Получите трехмерную стопку изображений обонятельной луковицы и убедитесь, что процедура визуализации не превышает 10–15 минут. После этого верните головастика в обычную воду в отдельную емкость и не допускайте его попадания света. На этом изображении четыре палубные нити, соединенные с различными флюорочетверами, были электропорированы в четырех удаленных друг от друга местах обонятельного органа: боковые обозначены зеленым цветом, промежуточные обозначены желтым медиальным цветом и носовой сошник обозначены оранжевым.
Это позволяет визуализировать вспомогательную обонятельную луковицу и три основных проекционных поля основной обонятельной луковицы. На этом изображении показаны трехмерные реконструкции различных моделей роста аксонов одиночных обонятельных сенсорных нейронов, наложенных на структуру обонятельной луковицы, и здесь приведен пример одного аксона обонятельного нейрона, проецирующегося в обонятельную луковицу и образующего хохлатую арборизацию в сферическом клубочнике. Как видно здесь, в Opus Levu, эти аксоны регулярно раздваиваются, прежде чем соединиться с одним, двумя или несколькими gmer.
Это репрезентативный пример отдельного обонятельного сенсорного нейрона, многократно исследованного с помощью покадровой визуализации in vivo, показывающего непрерывные изменения в морфологии аксонов. После просмотра этого видео у вас должно быть хорошее понимание того, как маркировать обонятельные сенсорные нейроны с помощью электропорации и как контролировать их развитие с помощью визуализации in vivo TimeLapse.
В этой статье представлен протокол in vivo маркировки обонятельных сенсорных нейронов с использованием электропорации, за которой следуют методы визуализации, такие как конфокальная лазерно-сканирующая и мультифотонная микроскопия. Метод позволяет визуализировать морфологию нейронов и ее развитие в течение времени.
This protocol enables direct visualization of axonal growth and morphological dynamics in a living vertebrate model, providing a physiologically relevant system for studying neuronal wiring mechanisms. By allowing longitudinal tracking of single axons in vivo, it supports mechanistic de-risking in target validation for neurodevelopmental disorders. The approach offers predictive value in assessing compound effects on axonal guidance and synaptic integration early in discovery.
The method fits within the discovery continuum from target hypothesis testing to lead optimization by providing structural and functional readouts on neuronal connectivity.