RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/56641-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Эта рукопись описывает простой и быстрый экспериментальной процедуры для определения белок белковых взаимодействий на основе измерения Люцифераза деятельности.
Общая цель этой процедуры заключается в количественном обнаружении белок-белковых взаимодействий в переходной системе экспрессии. Эта мера может помочь ответить на ключевые вопросы в области транзакций quan-сигналов, например, как количественно контролировать направления белков белка после химической обработки или обработки окружающей среды. Основное преимущество этой техники заключается в том, что она использует люминометр или ПЗС-камеру для обнаружения люциферной активности, которая представляет интенсивность направления белка белка, что делает результаты более точными.
Чтобы начать эту процедуру, добавьте один миллилитр раствора, содержащего пятипроцентный гипохлорит натрия и ноль целых одну десятую одного процента тритона х сто, в одну целую пять миллилитров микроцентрифужной пробирки, содержащей семена. Дайте раствору отдохнуть пять минут, чтобы простерилизовать семена. Затем пять раз промойте семена стерильной водой.
Суспензируйте промытые семена в двухстах микролитрах стерильной воды. Тонкими кончиками аккуратно поместите отдельные семена на поверхность покрытой среды MS агара. Храните пластины при температуре четыре градуса Цельсия в течение трех дней, чтобы синхронизировать прорастание.
После этого средние пластины выдерживают при нормальных условиях роста в течение десяти дней. Перенесите прорастающую рассаду в почву, следя за тем, чтобы не повредить корни. Накройте лоток прозрачной пластиковой крышкой на ночь для поддержания влажности.
Выращивайте растения в контролируемой комнате для выращивания в течение семи недель, когда они будут готовы к проникновению агробактерий tumefaciens. Для начала доставим сто пятьдесят нанограммов плазмид в компетентный штамм клеток GV3101 с a-tumefaciens. Поместите пробирки, содержащие культуру a-tumefaciens, в шейкер и инкубируйте в течение четырех часов.
С помощью стеклянного стержня перенесите культуру из пробирок в среды LB. Культуру a-tumefaciens и LB в среде агара при температуре 28 градусов Цельсия в течение четырех дней. Затем приготовьтесь к инокуляции одной колонии a-tumefaciens с каждой пластины в отдельную пробирку, содержащую три миллилитра жидкой среды LB.
Встряхните при 280 RBM при 28 градусах Цельсия в течение 24 часов, чтобы размножить культуру. Затем переведите 75 микролитров бактериальной культуры в 15 миллилитров свежей жидкой среды LB, содержащей 15 микрограммов на миллилитр канамицина и 50 микрограммов на миллилитр рифампицина. Культивируйте бактерии при 220 об/мин при 30 градусах Цельсия в течение примерно 8 часов, пока OD600 не составит от 0,5 до 1.
После этого переложите культуру в центрифужные пробирки объемом 15 миллилитров. Центрифугируйте при 4000-кратном давлении и четырех градусах Цельсия в течение 15 минут. Выбросьте надосадочную жидкость и снова суспендируйте поддон в 15 миллилитрах раствора для трансформации.
Центрифугируйте при 4000-кратном давлении и 4 градусах Цельсия в течение 15 минут. Затем повторите этап суспензии и центрифугирования еще раз. Выбросьте надосадочную жидкость и снова суспендируйте поддон в 5 миллилитрах раствора для трансформации.
Дайте поддону отдохнуть в течение двух часов при комнатной температуре в темное время суток. Затем либо добавьте раствор трансформации в OD600 равным 0,5, либо объедините два образца с равным объемом для тестирования взаимодействий парных белков. С помощью иглы объемом в один миллилитр шприца инфильтрируйте взвешенные клетки в четвертый-седьмой листы.
После этого сразу же накройте растения черной пластиковой крышкой на 12 часов. Во-первых, растения должны быть очень здоровыми, чтобы обеспечить успех. Во-вторых, убедитесь, что вы не повредите листья в процессе проникновения.
Держите лоток в темноте в течение 12 часов. Затем выращивайте растения в нормальных условиях в течение 2-4 дней до обнаружения активности люциферазы. Чтобы начать метод визуализации, отсоедините инфильтрированный лист.
Выложите весь листок на тарелку с агаровой средой MS. С помощью пульверизатора объемом 50 миллилитров распылите рабочий буфер люциферона на адаксиальную сторону листьев. Затем подержите в темноте 5 минут, чтобы погасить автофлуоресценцию хлорофилла.
Используйте ПЗС-аппарат с меньшим световым охлаждением, охлажденный до отрицательных 30 градусов Цельсия, для получения изображений с временем экспозиции 50 миллисекунд и временем обнаружения люминесценции 1 минута. После этого вырезаем фрагменты листьев из зоны инфильтрации листьев N-бентамианы. Погрузите осколки в 100 микролитров деионизированной воды в лунки на 96-луночную белую пластину.
Добавьте десять микролитров рабочего буфера люциферона. Дайте тарелке отдохнуть 5 минут. Затем выполните любую желаемую специфическую обработку для изучения динамики взаимодействия белков и измерьте люминесценцию непосредственно с помощью коммерческого люминометра.
Здесь показана демонстрация люциферной активности для представления взаимодействий COP 1 SPA 1. Люциферная активность, которая регистрируется с помощью люминесценции, визуализируется ПЗС-камерой. Взаимодействие COP 1 с SPA 1 приводит к мутации функциональной люциферазы в меди.
Затем определяется активность люциферазы при лечении жасмином 8 с течением времени. Взаимодействия COP 1 SPA 1, представленные активностью люциферазы, постепенно снижаются в темноте. Лечение жасмином 8 еще больше снижает эти взаимодействия.
После освоения эта техника может быть выполнена за 1 неделю, после того как растения будут готовы, если она выполнена должным образом. Пытаясь выполнить эту процедуру, важно помнить о поддержании здоровья растений. Осторожно проникайте в листья и правильно включайте элементы управления.
После своего развития эта технология открывает путь для исследователей в области сигнальных транзакций для быстрого изучения динамики взаимодействия белковых белков. После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее представление о том, как выращивать растения табака, внедрять агробактерии в листья табака и обнаруживать активность люциферов.
Related Videos
10:39
Related Videos
19.9K Views
08:21
Related Videos
25.6K Views
04:02
Related Videos
746 Views
23:21
Related Videos
41.9K Views
11:10
Related Videos
21.4K Views
07:02
Related Videos
25.2K Views
05:28
Related Videos
2.5K Views
13:29
Related Videos
7.7K Views
14:34
Related Videos
4K Views
11:33
Related Videos
1.8K Views