-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Подготовка криоэлектроновой микроскопической сетки для исследований с временным разрешением с исп...
Подготовка криоэлектроновой микроскопической сетки для исследований с временным разрешением с исп...
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
Cryo-Electron Microscopic Grid Preparation for Time-Resolved Studies using a Novel Robotic System, Spotiton

Подготовка криоэлектроновой микроскопической сетки для исследований с временным разрешением с использованием новой роботизированной системы Spotiton

Full Text
4,333 Views
08:59 min
February 25, 2021

DOI: 10.3791/62271-v

William C. Budell1, Luis Allegri2, Venkat Dandey1, Clinton S. Potter1, Bridget Carragher1

1The National Resource for Automated Molecular Microscopy,Simons Electron Microscopy Center, New York Structural Biology Center, 2piTree Software

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a protocol utilizing the Spotiton robotic system for the rapid mixing and vitrification of proteins on an electron microscope grid. The technique captures transient protein conformations that standard methods cannot, paving the way for insights into dynamic biological processes.

Key Study Components

Research Area

  • Protein interactions
  • Transient conformations
  • Cryo-electron microscopy

Background

  • Importance of studying rapid protein interactions
  • Challenges in capturing transient states
  • Utility of vitrification in biological research

Methods Used

  • Using the Spotiton system for sample mixing and vitrification
  • Application involves protein and interacting partner on nanowire grids
  • High-speed mixing for capturing intermediates

Main Results

  • Successful vitrification of mixed protein samples in as little as 90 ms
  • Efficient wicking along nanowire grids ensuring sample integrity
  • Clear visualization of ice deposition patterns correlating with mixing outcomes

Conclusions

  • This study effectively demonstrates the utility of Time-resolved Spotiton in observing rapid biological processes.
  • The findings enhance the understanding of protein dynamics and interactions crucial for biological research.

Frequently Asked Questions

What is the Spotiton robotic system?
The Spotiton robotic system is a high-throughput tool designed for the precise mixing and vitrification of biological samples on electron microscope grids.
How does this protocol improve standard grid preparation techniques?
By enabling faster mixing and vitrification, this protocol captures transient protein states that traditional methods may miss.
What applications can this method be used for?
It can be used to study rapid biological processes such as membrane activation, DNA synthesis, and drug-target interactions.
What are the typical results from using Spotiton?
Results typically include clear imaging of dynamic protein interactions and improved quality of vitrified samples.
What challenges are associated with using the Spotiton system?
Maintaining optimal humidity and understanding system operations are critical for successful sample preparation.
How fast can mixing occur with the Spotiton system?
Mixing can occur in as fast as 90 milliseconds, allowing for the capture of rapid interactions.
What is vitrification, and why is it used?
Vitrification is the rapid freezing of biological samples, preserving them in a glass-like state for imaging without ice crystal artifacts.

Протокол, представленный здесь, описывает использование Spotiton, новой роботизированной системы, для доставки двух образцов, представляющих интерес, на самоваривающуюся нанопроволочную сетку, которая смешивается в течение как минимум 90 мс до витрификации в жидком криогене.

Используя роботизированную систему Spotiton, можно смешивать и остеклять интересующий белок с взаимодействующим партнером в сетке электронного микроскопа всего за 90 миллисекунд. Этот протокол позволяет захватывать промежуточные подтверждения белка, которые слишком преходятся, чтобы быть захваченными стандартными методами подготовки сетки. Spotiton с временным разрешением может информировать субсекундные биологические или биохимические системы, такие как активация мембранных каналов, синтез ДНК или РНК или раннее взаимодействие лекарственного средства или антитела с его целевым белком.

Пользователь должен одновременно управлять несколькими компонентами, которые непосредственно влияют на качество сетки. Важно понимать систему перед использованием и иметь терпение при подготовке сеток. Для начала откройте главный клапан на резервуаре подачи азота и убедитесь, что резервуар системы заполнен обезжиженной сверхчистой водой.

Включите компьютер и систему Spotiton на мультидиалетном удлинии. Нажмите на значок на рабочем столе, чтобы открыть пользовательский интерфейс программного обеспечения Spotiton. В меню Инструменты выберите Инициализировать этапы, чтобы инициализировать и размещать трехосевых роботов и вращающуюся головку дозатора в сборе, гарантируя, что наконечники дозатора направлены вниз перед инициализацией и самонаведением.

В главном меню нажмите Перейти в безопасное положение, чтобы отправить роботов в безопасное положение. На вкладке Аспират выберите Прайм, чтобы несколько раз промыть головки диспенсера водой из резервуара. Продолжайте до тех пор, пока из кончиков не пойдут два непрерывных потока воды.

На вкладке «Проверка» отправьте первый наконечник на инспекционную камеру и проверьте огонь воды, регулируя амплитуду до тех пор, пока не будут получены дискретные капли. Нажмите кнопку «Запись» на верхнем мониторе камеры, чтобы записать видео стрельбы. Отправьте второй совет на инспекционную камеру.

Воспроизвести видео выстрела наконечника на правом боковом мониторе, в то же время наконечник два выстреливает в верхнюю камеру монитора, что соответствует схеме производства капель из двух дозаторов. Снимите пинцет с крепления на сетке робота с помощью прилагаемого ключа Allen. На соседнем столе поместите тестовую сетку нанопроволоки стороной вверх на краю блока сетки.

Осторожно возьмите ободок сетки и правильно расположите его в пинцете. Затем повторно установите пинцет. На вкладке Cryo нажмите «Подсказка к камере», чтобы переместить первый наконечник в поле зрения камеры верхнего погружения, гарантируя, что Live выбран на верхнем мониторе камеры.

Включите и отрегулируйте верхний индикатор камеры. Позиционируйте наконечник один виден в верхней части монитора камеры, щелкнув мышью внутри монитора. Нажмите «Сетка для камеры», чтобы расположить сетку перед верхней камерой, а затем снова отрегулируйте наконечник одного положения, если это необходимо.

На вкладке Cryo убедитесь, что Остекловатая сетка не выбрана, нажмите «Цель очереди», затем «Погружение». Оцените верхние и нижние изображения, чтобы убедиться, что диспенсеры функционируют нормально. Разбавьте два образца до желаемых концентраций соответствующим буфером, в идеале используя один и тот же для обоих, и заполните криогенную чашу жидким азотом.

Плазма очищает три-четыре нанопроволопроводные сетки, используя пять ватт водорода и кислорода, и 1,5 минуты в качестве отправной точки. Подключите небулайзер и наблюдайте за выходом пара из центрального порта крышки небулайзера. Наблюдайте за монитором влажности в реальном времени в главном окне или откройте трекер влажности окружающей среды в разделе Отчеты и Окружающая среда.

Проверьте уровень влажности в камере и зонах кожуха. Добавьте пять микролитров каждого образца в чашки для образцов. Загрузите чашки для образцов в лоток для хранения с образцом для наконечника один слева и для второго наконечника справа.

Затем отодвиньте лоток обратно в машину, пока она не сядёт. На вкладке Аспират выберите три микролитра для объема, который будет аспирироваться каждым наконечником. Убедитесь, что лоток для образцов надежно установлен, нажмите «Аспират» и наблюдайте, как ступень пипетки перемещает головки дозатора в чашки для образцов.

Проверьте успешное аспирирование обоих образцов, удалив чашки для образцов и наблюдая падение уровня жидкости. На вкладке Проверка отправьте каждый совет на инспекционную камеру, чтобы подтвердить беспрепятственную дозирование. Отрегулируйте амплитуду по мере необходимости, чтобы соответствовать образованию капель с каждого наконечника.

Загрузите только что очищенную плазмой сетку в пинцет, но пока не монтируем пинцет. Убедитесь, что уровень влажности повышен примерно до 90-95% Заполните стаканчик с этаном и проведите заключительный испытательный огонь обоих наконечников перед камерой контроля, подтвердив отсутствие препятствий. На вкладке Cryo нажмите «Подсказка камере».

Проверьте чашку этана. Если образовался этановый лед, растапливаете по мере необходимости дополнительным газообразным этаном. Установите пинцет с сеткой на сцену сетки.

На вкладке Cryo нажмите «Сетка к камере», убедившись, что первый наконечник правильно расположен на верхнем мониторе камеры. Нажмите на Vitrified Grid, Queue Target, затем Plunge. Нажмите OK, когда появится запрос на команду робота сетки, чтобы перепрыгнуть сетку из этана в жидкий азот и выпустить ее на затопленную полку.

Изучите изображения сетки, чтобы решить, следует ли ее сохранить или выбросить. Если сетка сохраняется, предварительно охладите щипцы с тонким наконечником, осторожно возьмите сетку за край и поместите ее в слот для сетки, начиная с первого слота слева от выемки и идущей по часовой стрелке. Используйте средство просмотра экспериментов для просмотра и сравнения изображений сетки с верхней и нижней камер, а также настроек машины и измерений влажности во время погружения, выбрав Отчеты и Эксперимент.

Здесь показаны изображения сеток, полученных в течение одного сеанса Spotiton с временным разрешением путем смешивания РНК-полимеразы в олигомере ДНК пары оснований 105, несущем промоторную последовательность в течение 150 миллисекунд до витрификации. Из шести сеток только одна демонстрирует неоптимальное виляние. Картина осаждения льда на остеклованной сетке тесно связана с картиной осажденной жидкости, наблюдаемой на верхнем изображении камеры.

Эффективное впитывание смешанных образцов происходит вдоль покрытых нанопроволокой сетчатых стержней, где образец редко перетекает в квадраты, прилегающие к тем, в которые он приземлился. В заполненных льдом квадратах лед обычно самый толстый в отверстиях в центре квадрата и становится тоньше в отверстиях ближе к решетке сетки. Отверстия, непосредственно прилегающие к решетке сетки, часто пусты из-за близости к нанопроволокам.

Правильная подготовка и обработка нанопроволочных решеток обеспечит хорошую толщину льда на сетках смешанных образцов. Система Spotiton также позволяет пользователю депонировать два образца отдельно на одной сетке, что позволяет сбор несмешанного элемента управления во время одного сеанса обслуживания сети. Spotiton позволил захватить первые промежуточные продукты в экспрессии бактериальных генов в режиме реального времени.

Поскольку они формируются в субсекундном масштабе времени, их структуры были неизвестны до сих пор.

Explore More Videos

Биология Выпуск 168 Разрешенные по времени короткоживущие молекулярные состояния крио-ЭМ витрификация пьезораздатравание нанопроволочные сетки роботизированное движение

Related Videos

Электрон Cryotomography бактериальных клеток

14:23

Электрон Cryotomography бактериальных клеток

Related Videos

26.3K Views

Корреляционно микроскопии для 3D Структурный анализ динамических взаимодействий

13:43

Корреляционно микроскопии для 3D Структурный анализ динамических взаимодействий

Related Videos

14.6K Views

Использование Tomoauto: протокол для высокой пропускной автоматизированной Cryo-электронной томографии

11:33

Использование Tomoauto: протокол для высокой пропускной автоматизированной Cryo-электронной томографии

Related Videos

11.5K Views

Миниатюрных Пробоподготовка для просвечивающей электронной микроскопии

09:04

Миниатюрных Пробоподготовка для просвечивающей электронной микроскопии

Related Videos

20.8K Views

Быстрая подготовка сетки для криоэлектроно-микроскопии с временным разрешением

10:05

Быстрая подготовка сетки для криоэлектроно-микроскопии с временным разрешением

Related Videos

4.8K Views

Получение ламелей из биологических образцов стекловидного тела с помощью двухлучевого сканирующего электронного микроскопа для криоэлектронной томографии

07:00

Получение ламелей из биологических образцов стекловидного тела с помощью двухлучевого сканирующего электронного микроскопа для криоэлектронной томографии

Related Videos

4.3K Views

Криоэлектронная микроскопия с одной частицей: от образца к структуре

11:52

Криоэлектронная микроскопия с одной частицей: от образца к структуре

Related Videos

9.8K Views

Микроструктурирование просвечивающих электронных микроскопических сеток для прямого позиционирования клеток в рабочих процессах криоэлектронной томографии цельноклеточной криоэлектронной томографии

09:53

Микроструктурирование просвечивающих электронных микроскопических сеток для прямого позиционирования клеток в рабочих процессах криоэлектронной томографии цельноклеточной криоэлектронной томографии

Related Videos

7.8K Views

Получение частиц ядра нуклеосом в комплексе с факторами репарации ДНК для определения структуры криоэлектронной микроскопии

07:59

Получение частиц ядра нуклеосом в комплексе с факторами репарации ДНК для определения структуры криоэлектронной микроскопии

Related Videos

2.3K Views

Подготовка образцов для криотомографии клеток млекопитающих in situ

08:17

Подготовка образцов для криотомографии клеток млекопитающих in situ

Related Videos

3.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code